20 maart 2018
Evaluatie van de potentie van milieu chemische stoffen en drugs, enzymatisch worden bioactivated op tussenproducten genereren covalente DNA adducten, is een belangrijk gebied in de ontwikkeling van kanker en de behandeling ervan. Methoden worden beschreven voor samengestelde activering aan formulier die DNA, evenals de technieken voor de detectie en kwantificering adducten.
Het algemene doel van dit protocol is de beschrijving van methoden die gebruik maken van de reacties gekatalyiseerd door cytochroom p450 en aanvullende biotransformatie-enzymen om de potentie van chemicaliën of geneesmiddelen voor hun activering tot metabolieten die covalente DNA-adducten vormen, te onderzoeken. Deze methode kan helpen om de belangrijkste vragen op het gebied van de ontwikkeling van kanker en de behandeling ervan te beantwoorden. Het grote voordeel van deze techniek is dat het u een type methode laat zien om de potentie van omgevingschemicaliën of geneesmiddelen om covalente DNA-adducten te vormen, die de initiatie van kankerontwikkeling vertegenwoordigen, te evalueren.
De implicaties van de techniek die de carcinogene potentie van chemicaliën bepaalt. De omgevingspotentie, toxicanten en geneesmiddelen bepalen ook relatief eenvoudige methoden voor de vorming van covalente DNA-adducten gevormd door dergelijke verbindingen. Hoewel deze methode inzicht kan geven in de initiatie van de ontwikkeling van kanker en de behandeling ervan, kan deze ook worden toegepast in andere wetenschappelijke vakgebieden.
Zoals studies van moleculaire mechanismen, van DNA-schade en orale studies over enzymatische activering en de toxicatie van chemicaliën. Ik hoorde voor het eerst het idee voor deze methode toen ik processen onderzocht die betrokken waren bij de initiatiefase van chemische carcinogenese. Bereid eerst het incubatiemengsel voor door alle verbindingen en enzymsystemen toe te voegen tot een eindvolume van 0,75 milliliter bij vier graden Celsius.
Dit is om de carcinogeen met het DNA te incuberen in aanwezigheid van cytochroom p450. Voeg vervolgens microsomen of zuiver recombinant p450 in supersome toe aan het mengsel. Voeg vervolgens 7,5 microliter 0,1 millimolair ellipticine-geneesmiddel opgelost in DMSO en 42,5 microliter water toe om het eindvolume op 0,75 milliliter aan te passen.
Meng vervolgens de componenten door de buis gedurende vijf seconden te vortexen. Direct daarna, incubeer de buis gedurende 30 tot 60 minuten bij 37 graden Celsius met het deksel open. Meng vervolgens fenol of fenol-chloroform in een verhouding van een op een met het incubatiemengsel in een Eppendorf-buis.
Dit zal de eiwitverontreiniging van het DNA in het incubatiemengsel verwijderen. Roer vervolgens het mengsel om een emulsie te vormen. Draai vervolgens het mengsel drie minuten bij een omgevingstemperatuur van 1600 keer g.
Zodra de centrifugatie voorbij is, gebruik een pipet om de bovenste waterfase over te brengen naar een nieuwe polypropyleenbuis. Gooi vervolgens de eiwitinterface samen met de organische fase weg. Meng vervolgens de waterfase met een equivalent volume fenol en chloroform in een verhouding van een op een.
Herhaal vervolgens de centrifugatie. Voeg vervolgens gelijke volumes chloroform toe aan de verzamelde waterfase en centrifugeer opnieuw. Bezinken vervolgens het DNA uit de waterige fase door twee volumes koude ethanol aan te voegen, gehandhaafd op min 20 graden Celsius.
Meng vervolgens de oplossing goed. Om de DNA-adducten te labelen, meng de bicine-bufferoplossing met radioactief gelabelde ATP-oplossing om de DNA-adducten te labelen. Voeg het labelmengsel toe aan NP1-oplossing of butanolverrijkingsmengsel.
Laat het mengsel 30 minuten op kamertemperatuur staan. Breng vervolgens ongeveer 20 microliter van het hele monster aan op de PEI-cellulose TLC-plaat. Nadat het monster op de PEI-cellulose TLC-plaat is aangebracht, laat de plaat zich ontwikkelen in D1-richting om de adducten op te ruimen.
Zodra de plaat is opgedroogd, laat de plaat zich ontwikkelen in D3- en D4-richting. Om zich in D3 te ontwikkelen, gebruik lithiumformiaatbuffer bij pH 3,5 met ureum. Voor D4-ontwikkeling, gebruik Tris-HCl-buffer met lithiumchloride en ureum.
Om eventuele problemen bij het ontwikkelen in D4-richting te voorkomen, ontwikkel de platen ook in D5-richting. Ten eerste wordt de P32-postlabelingtechniek gebruikt om de efficiëntie van microsomale p450-gemedieerde biogeactiveerde ellipticine bij het vormen van DNA-adducten te bestuderen. Resultaten tonen de vorming van covalente DNA-adducten in de deoxyguanosine van de kalfsthymus-DNA in de aanwezigheid van zowel rat als humane levermicrosomen aan; er worden echter geen adducten gevormd in de controlegroep.
Vervolgens wordt het potentieel van het peroxidasenzym-afhankelijke geactiveerde ellipticine bestudeerd. De afbeelding toont de vorming van covalente DNA-adducten in kalfsthymus-DNA in aanwezigheid van mierikswortelperoxidase, boviene lactoperoxidase en humane myeloperoxidase. In feite worden DNA-adducten ook gevormd uit de lever-DNA wanneer de ratten worden behandeld met 40 milligram per kilogram lichaamsgewicht ellipticine in vivo.
Interessant is dat het humane cytochroom p450-enzym CYP3A4 ook een sterk potentieel vertoont om ellipticine efficiënt te oxideren tot metabolieten zoals 12-hydroxyellipticine en 13-hydroxyellipticine. Deze metabolieten kunnen gemakkelijk aan het DNA binden om de adducten te vormen. Vervolgens worden nuclease P1 en n-butanolverrijkingsmethoden gebruikt om de vorming van DNA-adducten bij activering van 3-nitrobenzantron met cytosolische reductase zoals NQ01 uit rat en mens te bestuderen.
De resultaten tonen de vorming van maximaal vijf DNA-adducten van de kalfsthymus-DNA verkregen uit de rat, humane levercytosol en ook muizenlever. Eenmaal onder de knie, kan deze techniek in twee dagen worden uitgevoerd als deze correct wordt uitgevoerd. Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om de stabiliteit van de gebruikte enzymatische systemen te onthouden.
De enzymactiviteit kan afnemen als deze niet op ijs wordt bewaard. Na de ontwikkeling ervan, heeft deze techniek de weg gebaand voor onderzoekers op het gebied van biochemie, de biochemie van chemische carcinogenese om de aard van het fenomeen van de initiatiefasen van kankerontwikkeling in organismen te onderzoeken. Na het bekijken van deze video, zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u de potentie van omgevingschemicaliën of geneesmiddelen kunt evalueren om enzymatisch geactiveerd te
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol beschrijft methoden voor het evalueren van de potentie van milieuchemische stoffen en geneesmiddelen die enzymatisch biogeactiveerd kunnen worden om covalente DNA-adducten te vormen, welke cruciaal zijn bij de ontwikkeling van kanker. De beschreven technieken maken de detectie en kwantificering van deze DNA-adducten mogelijk, waardoor inzicht wordt verkregen in hun carcinogene potentieel.
Het kwantificeren van de vorming van covalente DNA-adducten door enzymatisch geactiveerde carcinogenen en geneesmiddelen is essentieel voor validatie van targets in een vroeg stadium en mechanistische risicoanalyse in oncologie- en toxicologie-pipelines. Deze benadering maakt een voorspellende beoordeling van genotoxische risico's mogelijk, wat bijdraagt aan portfolio-triage en risico-gecorrigeerde beslissingen over verdere ontwikkeling. De integratie van deze assays in discovery-workflows verhoogt het vertrouwen in de selectie van verbindingen en informeert translationele strategieën.
Deze methode slaat een brug tussen vroege ontdekking, lead-identificatie en preklinische veiligheidsbeoordeling door een mechanistisch verband te leggen tussen het metabolisme van verbindingen en DNA-schade.