24 augustus 2018
Hier presenteren we een protocol aan te tonen een hemorragische schok model in varkens die gebruikmaakt van de aorta occlusie als brug naar de definitieve zorg in trauma. Dit model heeft toepassing in het testen van een breed scala van chirurgische en farmacologische therapeutische strategieën.
Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van traumazorg, inclusief strategieën voor de behandeling van niet-compressibele rompbloeding. Het grote voordeel van deze techniek is dat het kan helpen bij het testen van relevante endovasculaire reanimatiestrategieën in een klinisch realistische grootdiermodel met een fysiologie die die van mensen nabootst. De implicaties van deze techniek strekten zich uit tot de behandeling van hemorragische shock, wat een leidende oorzaak is van voorkombare sterfte bij trauma.
Over het algemeen zullen mensen die nieuw zijn in deze methode worstelen, omdat het chirurgische expertise en kennis van kritische zorgfysiologie vereist. Na het bevestigen van een geschikt niveau van sedatie met een beet in de achterste ledemaat, gebruikt u een conventionele laryngoscope voorzien van een verlichte Miller-blad van 12 inch om de punt van de blad door de orofarynx van het geanesthetiseerde varken te laten passeren. Zorg ervoor dat u het mondslijmvlies of de tanden niet beschadigt, breng de bladpunt langzaam naar de epiglottis, hef de epiglottis op met het blad en ga verder voorbij de larynxinlaat tot een duidelijk zicht op de larynx is verkregen.
Plaats een 6,5 of 7 Franse endotracheale buis met een stylet tussen de stembanden, in de luchtpijp en blaas de ballonmantel op met 10 tot 15 kubieke centimeters lucht om lekkage rond de mantel of aspiratie van de maaginhoud te voorkomen. Verbind vervolgens de endotracheale buis met de mechanische ventilator via een ademhalingsfilter en bevestig de buis rond de maxilla met katoentape. Voor een canuleringsprocedure van de femorale slagader en ader, schuur de operatielocaties vijf minuten lang met een grote hoeveelheid povidonjodium en plaats de steriele chirurgische handdoeken rond de operatielocaties om de steriliteit van de operatievelden te behouden.
Gebruik een scalpel voorzien van een steriele chirurgische blad nummer 10 om de inguinale kreuk te identificeren en maak een verticale acht centimeter incisie in de rechter lies, vier centimeter boven en vier centimeter onder de rechter inguinale kreuk. Disseceer door het onderhuidse weefsel en plaats twee Weitlaner-retractoren in de incisie. Gebruik Mixter-rechte hoektang en een elektrocauter om door het bindweefsel en de spier te disseceren tot het neurovasculaire bundel duidelijk zichtbaar is en vervolgens voorzichtig de slagader te disseceren, waarbij u de laterale zenuw dient te behouden.
Gebruik een hoekige introduceernaald van 20 gauge om de slagader te puncteren en breng een ronde, 0,35 inch geleidedraad door het lumen van de hoekige naald. Wanneer de geleidedraad op zijn plaats is, trekt u de naald terug over de geleidedraad, terwijl u lichte druk uitoefent op de arteriotomie om bloeding te voorkomen, en brengt u een 14 Franse inbrengslang over de geleidedraad aan. Canuleer vervolgens de linker femorale slagader en ader zoals zojuist is aangetoond.
Voor canuleringsprocedure van de halsslagader en de buitenste halsslagader, gebruikt u een bladschaafje nummer 10 om een verticale incisie van zes centimeter te maken ongeveer twee centimeter lateraal van de middellijn aan de linkerkant van de nek. Gebruik elektrocauter om door het onderhuidse weefsel te disseceren tot de sternocleidomastoïde spier zichtbaar is, en disseceer langs de laterale rand van de spier om de linkerbuitenste halsslagader bloot te leggen. Canuleer vervolgens het vat met een 8 Franse katheter zoals zojuist is aangetoond.
Voor de linkergemeenschappelijke halsslagader blootstelling, disseceer de mediale rand van de sternocleidomastoïde spier, tot het carotisdriehoek, die de halsslagader, de nervus vagus en de interne halsslagader bevat, wordt waargenomen. Canuleer de halsslagader zoals eerder aangetoond, met een 5 Franse katheter. Voor de contralaterale dissectie, isoleer de rechterbuitenste halsslagader en de rechtergemeenschappelijke halsslagader, zoals gedemonstreerd voor hun laterale tegenhangers.
Gebruik vervolgens een 9 Franse inbrengslang om de rechterbuitenste halsslagader te canuleren en plaats een vier millimeter carotisslagaderflowsonde rond de rechtergemeenschappelijke halsslagader. Breng vervolgens de longslagaderkatheter in door de 9 Franse inbrengslang 15 tot 18 centimeter in de rechterbuitenste halsslagader. Zodra de katheter op zijn plaats is, blaas de ballon op met niet meer dan 1,5 kubieke centimeters lucht.
Breng de katheter vooruit en observeer de monitor om de overgang van de druk van de rechter atrium naar de rechter ventrikel, naar de longslagader, naar de longslagaderwedgedruk te evalueren. Blaas vervolgens de ballon leeg en bevestig dat een longslagadertrace terugkeert naar de monitor. Voor cystostomiebuisplaatsing, gebruikt u een bladschaafje nummer 10 om een vijf centimeter lagere buikmiddenincisie te maken en extracorporeel de urineblaas te brengen.
Maak met behulp van elektrocauter een kleine opening in de blaas en zuig de urine eruit en gebruik een 4-0 polypropyleennaad om een tijdelijke purse string-afsluiting van de blaas uit te voeren. Plaats een 18 Franse foleykatheter in het blaaslumen en gebruik een spuit van 10 kubieke centimeter om de ballon op te blazen. Vervolgens knoopt u de naad om de katheter binnen het blaaslumen te bevestigen.
Voor het inbrengen van een aortaballonkatheter, brengt u een 0,035 inch, 260 centimeter Amplatz stijve geleidedraad door de 14 Franse inbrengslang in. Bevestig de locatie ervan in de supraceliaca aorta met behulp van echografie. Breng vervolgens de ballonocclusiekatheter over de geleidedraad in de supraceliaca aorta.
Na het berekenen van het totale bloedvolume, gebruikt u een geautomatiseerde pomp om 35% van het totale bloedvolume gedurende 20 minuten te hemorrheren in standaard bloedopvangzakken voor opslag bij vier graden Celsius. Wanneer al het bloed is opgeslagen, blaas de aortaballonocclusiekatheter op met 9 tot 12 kubieke centimeter lucht, of totdat geen verdere daling van de distale gemiddelde arteriële druk na een extra ballonopblazing wordt opgemerkt. Na 40 minuten occlusie, gebruikt u de geautomatiseerde pomp om het dier te reanimeren, met volbloed
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol demonstreert een model voor hemorragische shock bij varkens, waarbij aortocclusie wordt gebruikt als overbrugging naar definitieve traumazorg. Het is toepasbaar voor het testen van diverse chirurgische en farmacologische strategieën.
Grote diermodellen voor hemorragische shock met behulp van aortocclusie vormen een translationele brug voor het evalueren van endovasculaire interventies bij trauma. Deze benadering maakt mechanische risicoanalyse en voorspellende beoordeling van reanimatiestrategieën mogelijk voorafgaand aan de klinische translatie. Het model ondersteunt portfoliobeslissingen door fysiologische reacties en interventiedrempels die relevant zijn voor de menselijke traumazorg te verduidelijken.
Dit model voor hemorragische shock bij varkens plaatst het testen van endovasculaire hulpmiddelen op het snijvlak van discovery-biologie en preklinische validatie, ter ondersteuning van lead-identificatie en mechanische risicoreductie.