17 januari 2020
We presenteren een assay voor eenvoudige kwantificering van metalen geïntroduceerd voor monsters bereid met behulp van geïmmobiliseerde metaal affiniteit chromatografie. De methode maakt gebruik van hydroxynaphthol blauw als de colorimetrische metalen indicator en een UV-VIS-spectrofotometer als de detector.
Onze methode is significant, omdat het de gemiddelde biochemicus in staat stelt om snel te bepalen of monsters geïsoleerd met behulp van geïmmobiliseerde metaal affiniteit chromatografie zijn besmet met overgang metalen. Het belangrijkste voordeel is het gemak waarmee de test kan worden uitgevoerd. De test maakt gebruik van instrumentatie en technieken gemeenschappelijk voor de meeste biochemie laboratoria, en het kan gemakkelijk en snel worden geïmplementeerd.
Terwijl in dit artikel passen we deze methode toe voor monsters geïsoleerd met een nikkel-NTA kolom, kan de methode worden gebruikt met een andere metaal affiniteit hars. Eerste keer gebruikers moeten proberen deze methode met een nikkel voorraad oplossing van bekende concentratie. Hiermee worden ze vertrouwd gemaakt met de werkstroom, voorbeeldkleuren en harsen die in spectrale wijzigingen worden weergegeven.
Het aantonen van de procedure zal Cole Swain zijn, een technicus van mijn laboratorium. Om te beginnen schakelt u de UV-Vis spectrofotometer in en warm u deze op. Bepaal de chromatografiefracties die moeten worden getest met behulp van een diodearray UV-Vis spectrofotometer met optische absorptie op 280 nanometer om het eiwit te kwantificeren.
Verkrijg een monsterbuffer van 10 tot 100 millimolar met een PH tussen 7 en 12, zoals Tris, HEPES, MOPS en fosfaatbuffer. Bereid een volumeoplossing van 12% van de HNB-dispersie in de monsterbuffer voor met behulp van 120 milligram HNB-reagens voor elke bereide milliliter voorraadoplossing. Stel de spectrofotometer in om gegevens te verzamelen op 647 nanometer.
Gebruik een kwarts cuvette gevuld met de monsterbuffer om de spectrofotometer leeg te maken. Bereid een controleoplossing voor in een cuvette met 50 microliter HNB-voorraad per milliliter van het totale testvolume. Laat de bediening minimaal drie minuten bij kamertemperatuur uitbroeden.
Meet en noteer de absorptie op 647 nanometer voor het controlemonster. Bereid de testmonsters voor door 150 microliter HNB-bouillon te mengen met 2850 microliter van op de juiste manier verdunde eiwitfracties met de monsterbuffer. Laat het monster minimaal drie minuten incuberen bij kamertemperatuur.
Herhaal de spectrumopname voor elke te meten fractie. In het geval dat onvoldoende verdunning wordt verkregen, is de gehele spectrale band op 647 nanometer verdwenen. Terwijl met een te sterke verdunning, het monster is niet te onderscheiden van de controle.
Om de concentratie van metaal in elk monster te bepalen, vindt u eerst het verschil van elke monsterabsorptie op 647 nanometer van de HNB-regeling. Bepaal de metaalconcentratie in micromolar met behulp van de formule waarbij DF de verdunningsfactor is voor de testfractie, delta A-B-S 647 is de absorptieverandering op 647 nanometer, 3,65 keer 10 tot negatief 2 de extinctiecoëfficiënt van HNB en ik is het optische pad van Cuvette in centimeters. In deze studie wordt hier het spectrum van vrije HNB bij neutrale PH in representatieve spectra van fracties getoond die voor nikkelion uit de isolatie van MSP1E3D1 worden gessayd.
Een verminderde absorptie op 647 nanometer ten opzichte van de HNB-controle werd waargenomen, wat overeenkwam met de vorming van HNB-complexen in aanwezigheid van een overgangsmetaal. Om de toepassing van deze test aan te tonen, werden twee met zijn getagde membraansteiwitten, MSP1E3D1, MSP2N2 en een roman, drie-heme, c-type cytochrome GSU0105, uit geobacterulfuren, geanalyseerd. Het eiwit- en nikkeliongehalte van elke fractie voor GSU0105 werd aanzienlijk van elkaar verschoven, terwijl de fracties voor MSP1E3D1 en MSP2N2 die het meeste eiwit bevatten ook het hoogste nikkelgehalte hadden.
Het is ook geïllustreerd dat het metaalgehalte niet gelijkmatig kan worden verdeeld over fracties verzameld met behulp van een gemobiliseerde metaal affiniteit chromatografie. Het is het belangrijkste om adequaat en consequent meng de blanco in alle monsters en zorgen voor gelijke incubatietijden voor de blanco in alle monsters. Eiwitfracties van bijzonder belang kunnen verder worden geanalyseerd met atomaire absorptiespectrometrie of ICPMS om metaalverontreiniging te bevestigen en te testen op gechelated of sterk gebonden eiwitmetaalionen.
Naast overgangsmetaaluitlogingsdetectie kan deze techniek worden gebruikt om bindende affiniteiten in overgangmetaalionen naar eiwitten te meten. HNB en eventuele nikkel aanwezig in monsters zijn irriterend voor de ogen en de huid respectievelijk. Tijdens de methode moet standaard beschermingsmiddelen worden gebruikt, met inbegrip van handschoenen en oogbescherming.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een eenvoudige analyse voor het kwantificeren van metalen in monsters die zijn voorbereid met behulp van geïmmobiliseerde metaalaffiniteitschromatografie. De methode maakt gebruik van hydroxynaphthol blue als colorimetrische indicator en hanteert een UV-Vis-spectrofotometer voor detectie.
Metaaluitloging uit kolommen voor geïmmobiliseerde metaalaffiniteitschromatografie (IMAC) introduceert overgangsmetaalcontaminanten die de enzymactiviteit kunnen remmen en de betrouwbaarheid van assays in biofarmaceutisch onderzoek en ontwikkeling kunnen compromitteren. Dit protocol biedt een eenvoudige, toegankelijke methode voor het kwantificeren van dergelijke contaminatie met behulp van algemeen beschikbare UV-Vis spectrophotometrie en hydroxynaphthol blue (HNB), waardoor routinematige kwaliteitscontrole mogelijk is zonder gespecialiseerde instrumentatie. Door nanomolaire gevoeligheid te leveren met standaard laboratoriumapparatuur, ondersteunt de assay de data-integriteit in vroege stadia van targetvalidatie en workflows voor eiwitzuivering.
De methode vormt de schakel tussen IMAC-zuivering en daaropvolgende biochemische of biofysische karakterisering, en dient als controlepunt voor de zuiverheid van het monster voorafgaand aan enzymkinetiek, bindingsassays of structurele studies.