8 maart 2024
Dit protocol maakt het mogelijk om menselijke pluripotente cellen te differentiëren tot darmorganoïden. Het protocol bootst de normale menselijke ontwikkeling na door cellen te differentiëren in een populatie van definitief endoderm, endoderm van de dikke darm en vervolgens darmepitheel. Dit maakt het protocol geschikt voor het bestuderen van zowel darmontwikkeling als toepassingen voor ziektemodellering.
Deze methode biedt stapsgewijze instructies voor het genereren van door de mens geïnduceerde pluripotente stamcel-afgeleide darmorganoïden door differentiatie in definitief endoderm, vervolgens in het epitheel van de dikke darm en ten slotte in de overdracht naar 3D-kweekomstandigheden. Resultaten verkregen uit door de mens geïnduceerde pluripotente stamcel-afgeleide darmorganoïden tonen een grotere vertaalbaarheid aan dan gegevens van eencellige culturen, terwijl ze ook praktischer zijn dan primaire weefsel-afgeleide organoïden, die moeilijk op lange termijn in cultuur te houden kunnen zijn. Gebruik bij het genereren van menselijke darmcellen uit gedifferentieerde iPSC's een serologische pipet van 5 milliliter om de celmonolaag los te maken van elk putje van de plaat met 6 putjes.
En bundel de cellen in een enkele buis van 15 milliliter voor centrifugatie. Resuspendeer de pellet in darmgroeimedium aangevuld met groeifactoren. En voeg het juiste volume extracellulaire matrix toe op basis van het aantal putjes dat wordt geplateerd.
Voeg 30 microliter van de celsuspensie toe aan het midden van het juiste aantal putjes van een plaat met 48 putjes. Ervoor zorgen dat de ECM in het midden van de put wordt geplaatst, is erg belangrijk voor de stabiliteit van dat monster op lange termijn. Als de ECM de wand van de put raakt, kan deze instorten en kunnen de monsters verloren gaan.
Plaats de plaat minimaal 5 minuten in de celkweekincubator. Wanneer de extracellulaire matrix is uitgehard, voegt u 300 microliter vers darmgroeimedium aangevuld met groeifactoren toe aan elk putje en plaatst u de plaat terug in de celkweekincubator. Gebruik na 48 uur een lichtmicroscoop om de putjes te controleren op organoïdevorming.
Na 7 dagen kweken zuig je de kweekmedia op en vervang je deze door ijskoud DPBS. Gebruik een serologische pipet van 5 milliliter om de organoïden en de extracellulaire matrixbol mechanisch los te maken van de plaat. Bundel vervolgens de organoïden in een enkele centrifugebuis van 15 milliliter.
Verzamel de organoïden door centrifugeren en zuig het supernatans op tot aan de bovenkant van de zichtbare ECM-laag. Suspendeer de pellet opnieuw in 15 milliliter ijskoude DPBS en centrifugeer de cellen opnieuw. Na het opzuigen van het supernatans zoals gedemonstreerd, suspendeert u de pellet opnieuw in 1 milliliter ijskoude PBS en gebruikt u een P200-pipet om de intacte organoïden handmatig te verstoren.
Bevestig een volledige dissociatie van de organoïden. Draai de gedissocieerde organoïden en suspendeer ze opnieuw in het vereiste volume van de extracellulaire matrix voordat ze op een nieuwe plaat met 48 putjes worden geplateerd, zoals gedemonstreerd. Zet het bord vervolgens 5 minuten terug in de couveuse.
Haal na 5 minuten de plaat uit de incubator en voeg intestinale basale media met groeifactoren en ROCK-remmer toe. Wissel elke 2-4 dagen van medium. Om een ontstekingsreactie in de darmorganoïden op gang te brengen, vervangt u het supernatans in elk putje van de organoïdecultuur door 300 microliter vers bereid basaal medium aangevuld met 40 nanogram per milliliter TNF-alfa.
Breng de plaat vervolgens 48 uur terug naar de celkweekincubator om een pro-inflammatoire omgeving na te bootsen. Genexpressie kan worden gevolgd in de loop van humane IPSC-differentiatie met behulp van pluripotentiemarkers die sterk tot expressie komen op dag 0 en snel worden neerwaarts gereguleerd tijdens het proces van definitieve endodermdifferentiatie. Op dag 2 van differentiatie zouden definitieve endodermgenen tot expressie moeten worden gebracht en zou de expressie op dag 3 moeten pieken.
Tijdens de specificatie van de achterste darm moet de expressie van CDX2 en HNF4alfa worden geïnduceerd en in de loop van de tijd toenemen. 48 uur na de overdracht van 2D-celvellen zouden de celvellen zich automatisch moeten organiseren in meer gecomprimeerde 3D-sferoïde structuren die aanvankelijk klein zijn, maar die geleidelijk in omvang en complexiteit toenemen in de komende 7-10 dagen van de kweek. De organoïden mogen niet worden gepasseerd voordat ze een duidelijke organoïde sferoïde morfologie hebben bereikt met duidelijk epitheel en met het lumen naar het midden van de structuur gericht.
Wanneer de structuren dit stadium bereiken, kan immunocytochemie worden uitgevoerd om de expressie van darmmarkers, zoals villine en CDX2, te bevestigen. Om ontsteking te modelleren, kan TNF-alfa gedurende 24-48 uur aan het weefselkweekmedium worden toegevoegd, wat doorgaans resulteert in de expressie van pro-inflammatoire markers in combinatie met de neerwaartse regulatie van intestinale epitheelmarkers. Door de mens geïnduceerde pluripotente stamcel-afgeleide darmorganoïden kunnen worden gebruikt voor het ontdekken van geneesmiddelen, ziektemodellering, genbewerking, een studie van de micro-omgeving van de tumor en transcriptomische en proteomische en epigenetische profielen van elke ziekte van belang.
Deze methode kan veel laboratoria helpen om darmorganoïden als modelsysteem vast te stellen, waardoor ze een extra methode voor hun onderzoek krijgen.
Dit onderzoek beschrijft een protocol voor het differentiëren van humane pluripotente stamcellen tot intestinale organoïden, waarbij de normale menselijke ontwikkeling wordt nagebootst. De methode produceert effectief definitief endoderm, hindgut-epitheel en uiteindelijk functionele intestinale structuren, die geschikt zijn voor het bestuderen van de intestinale ontwikkeling en ziektemodellen.
Uit hiPSC afgeleide intestinale organoïden bieden een schaalbaar, reproduceerbaar en menselijk relevant modelsysteem voor vroege drug discovery en het onderzoeken van ziektemechanismen. Hun vermogen om de complexe architectuur van het darmepitheel te recapituleren, maakt voorspellend vertrouwen mogelijk bij targetvalidatie en mechanistische risicoreductie voor gastro-intestinale ziekteportfolio's. Dit platform ondersteunt translationele continuïteit van discovery tot preklinisch onderzoek, wat risicogecorrigeerde beslissingen over verdere ontwikkeling faciliteert.
Dit organoïdenplatform slaat een brug tussen vroege ontdekking, lead-identificatie en preklinische validatie door een mens-relevant, reproduceerbaar systeem te bieden voor hypothesetesten en mechanistische studies.