8 juli 2020
microRNA's zijn betrokken bij de pathogenese van IgA-nefropathie. We hebben een betrouwbare methode ontwikkeld voor het detecteren van microRNA-expressieniveaus in de nieren van een IgA-nefropathiemuismodel (HIGA-muizen). Deze nieuwe methode zal het gemakkelijker maken om te controleren op betrokkenheid van miRNA's bij IgA-nefropathie.
Deze methode kan worden gebruikt om eenvoudig de verandering van microRNA's in IGA-nefropathie te verifiëren met behulp van een klein diermodel, waardoor het mogelijk wordt om IGA-nefropathie te bestuderen zonder een menselijke nierbiopsie. Het protocol kan nieuwe inzichten bieden in de genetica van IGA-nefropathie, wat mogelijk kan helpen bij de ontdekking van nieuwe diagnostische en therapeutische methoden voor de nierziekte. Na controle of de muis goed verdoofd is, gebruik chirurgische schaar en pincetten om een middenlijnsnede van drie tot vier centimeter in de buikwand van de muis te maken en beide kanten van de nier te identificeren.
Snij de ribben en het middenrif in om het hart bloot te leggen. Na het snijden van het rechter atrium, injecteer PBS in het linker ventrikel totdat de kleur van de nier verandert in bleek geel, wat aangeeft dat het hele lichaam van de muis is geperfundeerd met PBS. Snijd de nierarterie, niervene en urineleider door en verwijder de nier.
Homogeniseer de 30 milligram niermonsters met behulp van een siliconen homogenisator en 700 microliter fenol guanidine-gebaseerd lyseragens op kamertemperatuur. Breng het lysate over naar de biopolymeerversnipperende spinkolom en centrifugeer het gedurende twee minuten bij 15.000 G op kamertemperatuur. Ga verder met RBNA-zuivering volgens de richtlijnen in het manuscript.
Na de laatste wassing, voeg 30 microliter nuclease-vrij water toe aan de op silica membraan gebaseerde spinkolom en centrifugeer het gedurende een minuut bij 8.000 G om het RNA elueren. Voor cDNA-synthese, bereid een master mix voor met twee microliter nucleïnezuurmix, twee microliter reverse transcriptase mix en vier microliter buffer in een totaal van acht microliter per monster. Voeg acht microliter van de master mix toe aan elk putje van een achtputtenbuisje.
Verdun totaal RNA in nuclease-vrij water. Voeg vervolgens 12 microliter van de totaal RNA oplossing toe aan elk putje van het buisje. Plaats de monsters in de thermocycler en incubeer ze gedurende 60 minuten bij 37 graden Celsius, gevolgd door vijf minuten bij 95 graden Celsius.
Om kwantitatieve real-time PCR uit te voeren, bereid de master mix volgens de richtlijnen in het manuscript voor en voeg vervolgens 22,5 microliter van de master mix toe aan elk putje van een 96-wels reactieplaat. Voeg 2,5 microliter van het bereide cDNA toe aan elk putje. Plaats de reactieplaat in het real-time PCR-instrument.
Programmeer het vervolgens voor een initiële activering bij 95 graden Celsius gedurende 15 minuten, gevolgd door 40 cycli van denaturatie bij 94 graden Celsius gedurende 15 seconden, annealing bij 55 graden Celsius gedurende 30 seconden en extensie bij 70 graden Celsius gedurende 30 seconden. Kwantificeer genexpressie met behulp van de delta-delta CT-methode. Dit protocol werd gebruikt om de expressieniveaus van microRNA's in de nieren van HIGA-muizen te onderzoeken, waarbij de nieren van Balb/c-muizen als controle werden gebruikt.
De expressieniveaus van drie IGA-nefropathie-geassocieerde microRNA's werden gemeten. Relatieve microRNA-expressieniveaus van de twee groepen werden vergeleken met behulp van een T-test met een P van minder dan 0,05 als statistisch significant. miR-155-5p werd 3,3 keer hoger tot expressie gebracht in de HIGA-groep vergeleken met de controlegroep, en miR-21-5p werd 1,58 keer hoger tot expressie gebracht.
miR-1461-5p expressie verschilde niet significant tussen de twee groepen. Bij het uitvoeren van dit protocol is het belangrijk om een masker, handschoenen en een pet te dragen en om de laboratoriumtafel en gereedschappen schoon te houden om te voorkomen dat nuclease in de omgeving het experiment beïnvloedt. Deze experimentele methode wordt momenteel in praktisch gebruik genomen in ons laboratorium.
Het doel is om nieuwe diagnostische en therapeutische methoden voor IGA-nefropathie te ontwikkelen.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert een betrouwbare methode voor het detecteren van microRNA-expressieniveaus in de nieren van een muismodel voor IgA-nefropathie. De methode maakt het mogelijk om de betrokkenheid van microRNA's bij IgA-nefropathie te onderzoeken zonder dat menselijke nierbiopsieën noodzakelijk zijn.
Dit protocol stelt biopharma R&D-teams in staat om de microRNA-expressie te profileren in een gevalideerd muismodel voor IgA-nefropathie, ter ondersteuning van targetvalidatie en mechanistische risicoreductie in programma's voor nierziekten. Door een reproduceerbare methode te bieden voor het detecteren van veranderde miRNA-niveaus zonder menselijke biopten, faciliteert het de vroege ontdekking van biomarkers en therapeutische targets met een verbeterde voorspellende betrouwbaarheid. De aanpak sluit aan bij inspanningen in de ontdekkingsfase om ziektemechanismen te onderzoeken en kandidaten te prioriteren voor preklinische ontwikkeling.
De methode past binnen het voortraject van de vroege ontdekking, waarbij zij hypothesetoetsing bij targetvalidatie ondersteunt en kwantitatieve resultaten genereert voor screenings- en analyseworkflows die beslissingen over lead-identificatie informeren.