May 28th, 2021
Het doel van dit protocol is om de evolutie en expressie van kandidaatgenen te onderzoeken met behulp van RNA-sequencinggegevens.
Dit protocol schetst bio-informatische stappen voor het onderzoeken van de moleculaire evolutie en expressie van kandidaatgenen. Hier geven we grondige instructies zodat iedereen met minimale bio-informatische ervaring dit protocol kan doorlopen. Deze pijpleiding kan worden toegepast op elk organisme en elke genfamilie.
Een veelvoorkomend probleem bij het uitvoeren van bioinformatica is dat shellscripts mislukken. Wanneer u dit protocol probeert, moet u ervoor zorgen dat u de meest recente software hebt, lees de foutbestanden en controleer de handleiding zorgvuldig. Meld u om te beginnen aan bij het computerclusteraccount op een terminal of PuTTY-toepassingsvenster.
Download op de terminal SRA Toolkit versie 2.8.1 met Wget en voltooi vervolgens de installatie van het programma. Zoek NCBI naar het SRA-toetredingsnummer voor de gewenste monsters en verkrijg vervolgens de RNA-sequentiegegevens in het terminalvenster. Verkrijg twee FASTQ-bestanden voor het type gekoppelde bestanden.
Zoek het referentiegenoom online als er een bestaat. Als u een referentieassemblage wilt verkrijgen, typt u wget in het terminalvenster en plakt u het koppelingsadres. Kopieer indien beschikbaar ook het GTF-bestand en het proteïne FASTA-bestand voor het referentiegenoom.
Indexeer het genoom, breng vervolgens de lees- en berekeningsexpressie voor elk monster in kaart. Wijzig de naam van het resultatenbestand in iets beschrijvend en genereer een matrix van alle tellingen. Open een internetbrowservenster en ga naar NCBI GenBank.
Typ in de zoekbalk de naam van het interessegen en de naam van nauw verwante soorten die zijn gesequenced. Selecteer eiwit aan de linkerkant van de zoekbalk en klik vervolgens op Zoeken. Pak de reeksen uit door op Verzenden naar te klikken en selecteer Vervolgens Bestand.
Selecteer FASTA onder Opmaak en klik vervolgens op Bestand maken. Verplaats FASTA-bestand met homologen naar het computercluster met behulp van een lokaal terminalvenster of FileZilla. Zoek vervolgens naar kandidaatgenen met BLAST+Maak op het computercluster een BLAST-database van het genoom of transcriptoomge translateeerde eiwit FASTA.
BLAST de homologe gensequenties van NCBI naar de database van de soort van belang, bekijk vervolgens het uitvoerbestand met behulp van de opdracht meer. Kopieer unieke gen-ID's van de interessesoort naar een nieuw tekstbestand. Extraheer de sequenties van kandidaatgenen.
Als u genannotatie wilt bevestigen met Behulp van Reciprocal BLAST, gaat u naar het BLAST Local Alignment Search Tool, selecteert u BLASTP, plakt u de kandidaatsequenties, selecteert u de niet-redundante eiwitsequentiedatabase en klikt u op BLAST. Open MEGA, klik op Uitlijnen, bewerk vervolgens Build Alignment, selecteer Een nieuwe uitlijning maken en klik op OK. Selecteer Eiwit. Wanneer het venster Uitlijning wordt geopend, klikt u op Bewerken.
Klik op Sequenties invoegen uit bestand en selecteer de FASTA met eiwitsequenties van kandidaatgenen en waarschijnlijke homologen. Selecteer Alle reeksen. Zoek het armsymbool en beweeg er overheen.
Het zou moeten zeggen uitlijnen sequenties met behulp van spieralgoritme. Klik op het armsymbool en klik vervolgens op Eiwit uitlijnen om de sequenties uit te lijnen Parameters bewerken of klik op OK om standaardparameters te gebruiken. Dit protocol werd toegepast op weefsels van Hydra vulgaris, een zoetwater ongewerveld die behoort tot de fylum Cnidaria.
Opsin genen werden onderzocht om inzicht te krijgen in de evolutie van ogen en lichtdetectie bij dieren. Sequenties voor opsin-gerelateerde genen van H.vulgaris en andere soorten werden geëxtraheerd in een FASTA-bestand van de NCBI GenBank. De opsinegenen werden uitgelijnd in MEGA, waardoor het mogelijk was om Hydra-opsines te identificeren die een geconserveerd lysine-aminozuur misten dat nodig was om een lichtgevoelig molecuul te binden.
Een boom met maximale waarschijnlijkheid werd gegenereerd met behulp van opsin-sequenties van Hydra vulgaris en andere soorten. De fylogenie suggereert dat opsinegenen evolueren door afstammingsspecifieke duplicaties bij cnidarianen, en mogelijk door tandemduplicatie in H.vulgaris. Vervolgens werd een differentiële expressieanalyse uitgevoerd in edgeR om de absolute expressie van opsinegenen te onderzoeken.
Om te bepalen of een of meer opsinen up-gereguleerd zijn in het hypostoom, of hoofd, werden paarsgewijs vergelijkingen van hypostoom versus de lichaamskolom, ontluikende zone, voet en tentakels uitgevoerd. Er werd vastgesteld dat 1.774 transcripties verschillend werden uitgedrukt tussen het hypostoom en de lichaamskolom. De genen die in meerdere vergelijkingen up-gereguleerd waren, werden bepaald en er werd een functionele verrijking in Blast2GO uitgevoerd.
Ten slotte werd de absolute expressie van opsingenen onderzocht in verschillende weefsels tijdens verschillende stadia van ontluiken en tijdens verschillende tijdspunten van regeneratie. Visuele inspectie van de uitlijning en boom zal bevestigen of kandidaatgenen tot de familie van belang behoren. Genen die te verschillend zijn in volgorde of een groep buiten al het andere, maken waarschijnlijk deel uit van een andere genenfamilie.
Resultaten van dit protocol kunnen worden beschouwd als hypothesegenererend. Deze pijplijn kan kandidaatgenen markeren om functioneel te bestuderen in toekomstige studies. Na het verkennen van Hydra opsin expressie, gebruiken we nu vergelijkbare technieken om gerelateerde genen tussen soorten te onderzoeken om overeenkomsten en verschillen in functie te identificeren.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Dit protocol onderzoekt de moleculaire evolutie en expressie van kandidaat-genen door gebruik te maken van RNA-sequencing data, specifiek gericht op opsine-genen in Hydra vulgaris. De studie toont een bioinformatica-pijplijn die op verschillende organismen kan worden toegepast.
This bioinformatics pipeline enables systematic investigation of gene family evolution and expression, supporting target validation through mechanistic de-risking in early discovery. By integrating phylogenetic analysis with RNA-seq quantification, it provides predictive confidence for prioritizing candidate genes with conserved or divergent functions across species. The approach aids portfolio triage by identifying mechanistically informed hypotheses before committing resources to functional studies.
The method integrates into the discovery continuum from target identification through lead optimization, enabling hypothesis-driven progression from sequence analysis to functional prioritization.