4 augustus 2022
De combinatie van laser capture microdissectie en microfluïdische RT-qPCR biedt anatomische en biotechnische specificiteit bij het meten van het transcriptoom in enkele neuronen en glia. Het toepassen van creatieve methoden met de biologische benadering van een systeem voor psychiatrische ziekten kan leiden tot doorbraken in begrip en behandeling, zoals de neuro-inflammatie antireward hypothese bij verslaving.
Het protocol is zeer gevoelig en maakt het mogelijk om genexpressieprofiel met hoge doorvoer vast te leggen bij een enkele celresolutie. De techniek biedt zowel anatomische ruimtelijke als moleculaire specificiteit bij eencellige resolutie. Na het oogsten van de hersenen, het selecteren van de afzonderlijke cellen en het voorbereiden van het mRNA, injecteert u controlelijnvloeistof in de qPCR-chip voor priming.
Plaats de qPCR-chip in het microfluïdische mengapparaat. Selecteer het Prime-script en voer het programma uit. Verwijder na voltooiing van het programma de geprimeerde qPCR-chip en pipetteer zes microliter van de reactie van de PCR-monsterplaat in de overeenkomstige monsterput in de geprimeerde qPCR-chip.
Pipetteer nu zes microliter van de reactie van de PCR-testplaat in de overeenkomstige testput in de geprimeerde qPCR-chip. Steek vervolgens de chip in het microfluïdische mengapparaat. Selecteer het load mix script en voer het programma uit.
Schakel het microfluïdische RT-qPCR-platform in en warm de lamp op. Verwijder de qPCR-chip uit het microfluïdische mengapparaat en verwijder de beschermende sticker van de onderkant van de chip. Open het microfluïdische RT-qPCR-platform en laad de qPCR-chip in het platform.
Start de software voor gegevensverzameling door op Een nieuwe run starten te klikken. Controleer de chipcode en het chiptype. Klik dan op volgende.
Selecteer het chiprun-bestand en blader door de bestandslocatie voor de opslag van de gegevensverzameling. Klik vervolgens op Toepassingstype en selecteer Genexpressie. Selecteer ROX voor een passieve referentie, één sonde en EVAGreen voor sondetype.
Klik om het thermische cyclusprogramma te selecteren en selecteer Biomark HD GE:Fast 96x96 PCR+Melt v2. pcl-bestand. Download de data-analysesoftware.
Start de software om het microfluïdische RT-qPCR-experiment te analyseren. Klik op Chip Run en open de ChipRun. bml-bestand dat door de experimentator is gemaakt.
Er verschijnt een venster met de experimentele details, waaronder de passieve referentie, sonde en pcr-thermisch programma. Klik op het tabblad Chip Explorer op Sample Plate Setup (instellen van voorbeeldplaat) en maak een nieuwe voorbeeldplaatsjabloon. Kopieer en plak de voorbeeldlabels in de softwarespreadsheet volgens het experimentele ontwerp.
Voer de monsternaam en de RNA-concentratie in die voor de standaardmonsters is gebruikt. Wijs nu het voorbeeld toe door op kaart te klikken in het taakmenu en SBS96-Left.dsp te selecteren. Selecteer vervolgens Detailweergaven om deze wijzigingen in het bestand bij te werken en klik op Analyseren.
Selecteer Detector Plate Setup en maak een nieuwe testplaat. Selecteer het juiste containertype en de juiste indeling. Plak de testnamen volgens het experimentele ontwerp en klik op Analyseren.
Klik in het deelvenster analyse-instellingen op Gebruiker en stel de aanpassing in op automatisch. Bekijk nu handmatig elke reactie in de 96x96-chip. Visualiseer de versterkings- en smeltcurven om te bepalen of elke reactie het verwachte qPCR-patroon volgde.
Als de versterkings- of smeltcurve niet overeenkomt met wat wordt verwacht, faalt die reactie dan. Na QC exporteert u de gegevens door bestand te selecteren, op exporteren te klikken en de gegevensset op te slaan als een csv-bestand. Aangezien het geëxporteerde csv-bestand zowel een pass fail matrix als een matrix met onbewerkte CT-waarden heeft, gebruikt u de pass fail matrix om alle mislukte cellen in de dataset te vervangen door NA. Download de recente versie van open Source R-software en download vervolgens de R Studio-toepassing.
Gebruik voor mediane centrering de R-software om de mediane CT-waarde te berekenen die is berekend op basis van alle CT-waarden voor een individueel monster en trek vervolgens alle individuele CT-waarden af van deze mediane waarde om een minus delta CT-waarde te krijgen. Voor de normalisatie van het huishoudgen berekent u de gemiddelde expressie van de huishoudgenen voor elk monster en gebruikt u deze waarde om de individuele CT-waarden af te trekken. Als u een minus delta delta CT-waarde wilt genereren, voert u de code uit in de R-software.
Upload de genormaliseerde gegevensset naar R en analyseer de gegevens met behulp van de schaalfunctie, genereer de geschaalde gegevens en gebruik vervolgens de R-heatmapfunctie of afzonderlijke software om een heatmap te genereren. Als u de gegevensset wilt ordenen voor andere functionaliteit, berekent u de Pearson-correlaties tussen elk gen, gevolgd door de smeltfunctie. Exporteer en upload deze gegevens naar een gencorrelatienetwerksoftware.
Neuronen vertoonden verhoogde expressie van NeuN en microgliale monsters vertoonden significante expressie van de microgliale markers Cd34 en Cx3xr1. De Th+neuronale monsters vertoonden een significant verhoogde expressie van Th in vergelijking met Th-neuronale en microglia monsters. De Th-neuronen vertoonden een significante expressie van Gcg, wat suggereert dat Th-neuronale monsters zijn verrijkt met neuronen die Glp1 als neurotransmitter gebruiken.
Lineaire discriminate-analyse toonde aan dat deze drie celtypen verschillende genexpressieprofielen hadden voor alle 65 genen. Cellulaire subfenotypen van Glp1 verrijkte neuronmonsters door middel van een alcoholontwenningstijdreeks werden weergegeven met behulp van heatmaps. Het subfenotype A, dat het inflammatoire gencluster één sterk tot expressie brengt, neemt in verhouding toe op het acht uur durende ontwenningstijdstip en bereikt een maximum bij 32 uur terugtrekking.
Het inflammatoire subfenotype wordt genormaliseerd om onder controle te blijven door 176 uur terugtrekking. Subfenotype B, dat gaba-receptorgencluster twee sterk tot expressie brengt, toont een algehele onderdrukking in de expressie van dit gencluster door de 176-uurs ontwenningsconditie. De genexpressie van individuele monsters werd gecombineerd tot gemiddelden, zodat de expressie van genclusters en de eiwitlocatie van dat gentranscript gedurende de tijdreeks konden worden gevisualiseerd.
Deze techniek kan worden toegepast op elk biologisch systeem of weefsel om de cellulaire reactie op een ziekte of een verstoring te begrijpen. Dat is om de moleculaire respons bij eencellige resolutie te ontcijferen met betrekking tot de ruimtelijke en de anatomische architectuur van het weefsel.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie maakt gebruik van laser capture microdissectie en microfluïdische RT-qPCR om transcriptomen in individuele neuronen en glia te analyseren. Er wordt nadruk gelegd op de hoge sensitiviteit en specificiteit van de methode, die ons begrip van psychiatrische aandoeningen in verband met neuro-inflammatie kan verbeteren, in het bijzonder in de context van verslaving.
Single-cell genexpressieprofilering met anatomische specificiteit maakt mechanische risicoreductie mogelijk bij de ontdekking van neuropsychiatrische targets, in het bijzonder voor verslavings- en antireward-paden. Deze benadering biedt inzicht met een hoge resolutie in neuro-inflammatoire drijvers, wat de voorspellende betrouwbaarheid ondersteunt op het snijvlak van moleculaire pathologie en gedragsfenotypes. De integratie van deze methoden in vroege discovery-pipelines verbetert de triage van het portfolio en de translationele continuïteit voor de ontwikkeling van geneesmiddelen voor het centraal zenuwstelsel.
Deze methode slaat een brug tussen vroege ontdekking en preklinisch onderzoek door middel van high-throughput, anatomisch precieze genexpressieanalyse in weefsels van het centrale zenuwstelsel.