25 juli 2022
Hier wordt een gedetailleerd immunohistochemisch protocol gepresenteerd om functioneel relevante caspasen in complexe weefsels te identificeren, valideren en targeten.
Dit protocol biedt een gedetailleerde immunohistochemische methode om functioneel relevante caspasen in complexe weefsels te identificeren, valideren en targeten. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het mogelijk is om celtypespecifieke apoptotische en niet-apoptotische caspase-9-functies te ondervragen en kan worden toegepast op andere complexe weefsels en caspasen van belang. Het begrijpen van de functies van caspasen kan helpen om de huidige kennis in celbiologie uit te breiden en kan ook voordelig zijn om potentiële therapeutische doelen te identificeren vanwege hun betrokkenheid bij ziekte.
Begin met het kwantificeren van de caspase-niveaus met behulp van confocale microscopiebeelden van gekleurde retinale secties. Sleep hiervoor de afbeeldingsbestanden van 405, 470, 555 en 640 kanalen naar de console van Fiji. Klik op de tabbladen afbeelding, kleur en samenvoegkanalen om kleuren aan de bestanden toe te wijzen.
Comprimeer vervolgens de Z-stapel door op de afbeeldingsstapel en het Z-project te klikken. Selecteer het projectietype als maximale intensiteit. Open de interface van het kanaal door op de afbeelding te klikken, gevolgd door het gereedschap van het kleurkanaal.
Open vervolgens de helderheids- en contrastinterface. Als u de parameters per kanaal wilt selecteren, gaat u naar het tabblad van het kanaal en kiest u één kanaal. Plaats de cursor op de achtergrond en annoteer de pixelwaarde.
Plaats vervolgens de cursor op de caspase-tot expressie gebrachte cel en annoteer de pixelwaarde. Als u de parameters wilt testen, gaat u naar de interface voor helderheid en contrast en klikt u op Selecteren. Sluit de minimaal weergegeven waarde of de pixelwaarde van de caspase-uitgedrukte cel aan.
Sluit vervolgens de maximaal weergegeven waarde of de achtergrondpixelwaarde aan voordat u op OK klikt. Kies de willekeurige beelden van geblindeerd weefsel en herhaal de selectie van parameters per kanaal om de parameters voor alle kanalen te testen. Zodra de parameters zijn ingesteld, opent u de afbeeldingsbestanden en comprimeert u de Z-stapel.
Voeg de helderheids- en contrastparameters voor het caspasekanaal en het isolectine voor het vasculaire markerkanaal toe. Gebruik het puntgereedschap en kwantificeer het aantal positieve vasculaire gebieden met behulp van colocalisatie van de vasculaire marker met caspase-expressie als de uitlezing van positieve gebieden. Gebruik vervolgens haken als de marker van positieve neuronale gebieden en kwantificeer het aantal positieve vasculaire gebieden.
Annoteer de waarden in een spreadsheet per afbeelding en gemiddelde de waarden per sectie. Gemiddelde van de sectiewaarden, die de uitlezing per oog zijn. Het protocol identificeerde de cellulaire lokalisatie van de caspasen en de neuronale retinale lagen waarin de caspasen tot expressie komen.
De retinale doorsnede maakte de visualisatie van retinale kernen in de retinale ganglionlaag of RGL, internucleaire laag of INL mogelijk, en de buitenste nucleaire laag of ONL wanneer gekleurd met haken. In de doorsnede leken de retinale bloedvaten losgekoppeld en gescheiden van de plexiforme lagen tussen de RGL en INL en tussen de INL en ONL. Retinale doorsneden identificeerden ook de sterk gereguleerde caspase-9, een dag na retinale ader occlusie.
De caspase-9-remming was effectiever in het verminderen van neuronale caspase-7-expressie in endotheelcel knock-out muizen die de functionele relevantie van endotheel caspase-9 valideerden. De representatieve analyse toonde aan dat de remming van caspase-9-activiteit farmacologisch de caspase-7-expressie na retinale ader occlusie blokkeerde. Het succes van de techniek is afhankelijk van zorgvuldige weefselvoorbereiding en IHC- en microscopische beeldvorming om consistentie, validiteit en betrouwbaarheid van de gegevens te garanderen.
Deze methode kan worden gecombineerd met western blotting-analyse voor semi-kwantitatieve vergelijking van caspase-signalering. De techniek bood de stappen om de werkzaamheid van een therapeutische aanpak gericht op actieve caspase-9 in RVO te onderzoeken. Deze aanpak kan ook worden toegepast op andere weefsels, waaronder de hersenen.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert een gedetailleerd immunohistochemisch protocol voor het identificeren, valideren en targeten van functioneel relevante caspasen in complexe weefsels. De methode maakt een specifieke analyse mogelijk van de apoptotische en niet-apoptotische functies van caspase-9, wat leidt tot meer inzicht in de celbiologie en potentiële therapeutische targets in ziektecontexten.
Kwantitatieve immuunkleuring van caspase-9 in retinaal weefsel maakt nauwkeurige analyse van apoptotische en niet-apoptotische pathways mogelijk, wat bijdraagt aan mechanistische risicoreductie in de vroege ontdekkingsfase. Deze benadering vergroot het voorspellend vertrouwen voor targetvalidatie en informeert risico-gecorrigeerde beslissingen voor verdere ontwikkeling binnen portfolio's voor neurodegeneratieve en vasculaire aandoeningen. De aanpasbaarheid van de methode aan andere weefsels positioneert deze als een herbruikbare capaciteit voor discovery-programma's over verschillende indicaties heen.
Dit protocol voor immunokleuring en kwantificering is geïntegreerd van vroege ontdekking tot preklinisch onderzoek en ondersteunt targetvalidatie, leadidentificatie en de ontwikkeling van translationele biomarkers.