9 februari 2024
Adeno-geassocieerd virus wordt geproduceerd in suspensiecelkweek en gezuiverd door centrifugatie met dubbele jodixanoldichtheidsgradiënt. Er zijn stappen opgenomen om de totale virusopbrengst te verhogen, het risico op virusneerslag te verminderen en het uiteindelijke virusproduct verder te concentreren. De verwachte uiteindelijke titers bereiken 10tot 12 virale deeltjes/ml en zijn geschikt voor preklinisch in vivo gebruik.
We gebruiken een gerichte evolutiebenadering om adeno-geassocieerde virale capits met een hoger tropisme te identificeren voor menselijke doelceltypen. Door middel van dit onderzoek willen we recombinante adeno-geassocieerde virale vectoren produceren met verbeterde doelceltransductie en klinische relevantie binnen het gebied van gentherapie. Onze groep heeft onlangs verschillende AAV-serotypen uit de lever gedeviseerd door capside-residuen op te nemen die origineel zijn voor een AAV-serotype dat van nature een verminderd levertropisme bezit.
Indien dit met succes wordt uitgebreid naar aanvullende serotypen, biedt dit de basis om de noodzakelijke klinische dosis RAAV te verlagen door perifere injectie en nadelige resultaten voor de patiënt te verminderen. De IODIXanol-zuiveringsmethode is weliswaar kosteneffectief, maar moeilijk op te schalen. Bovendien wordt in downstream-toepassingen de gerichte evolutiebenadering uitgevoerd met diermodellen of in vitro.
Het is dus mogelijk dat capside geïsoleerd door gerichte evolutie in vivo doelen bij mensen niet in dezelfde mate transduceert als in preklinische modellen. Dit protocol is betaalbaar en toegankelijk voor kleinere labs. Bovendien levert deze methode een zeer zuiver, recombinant adeno-geassocieerd virus op dat kan worden gebruikt voor stroomafwaartse preklinische in vivo-toepassingen.
Deze studie richt zich op de gerichte evolutie van adeno-geassocieerde virale (AAV) capsiden om hun tropisme voor specifieke menselijke celtypen te verbeteren. Het onderzoek heeft tot doel recombinante AAV-vectoren te ontwikkelen die de transductie van doelcellen verbeteren, wat essentieel is voor gentherapie-toepassingen.
De productie via suspensiecultuur en zuivering met een iodixanol-dichtheidsgradiënt van rAAV maakt een hoogzuivere levering van vectoren mogelijk voor preklinische in vivo studies, wat de voortgang van de gentherapie-pipeline ondersteunt. Dit serotype-onafhankelijke protocol faciliteert de generatie van diverse AAV-capsiden, inclusief die welke zijn ontwikkeld voor een gewijzigd tropisme, en biedt een reproduceerbare basis voor translationele vectorontwikkeling. De toegankelijkheid van de methode en de consistentie van de opbrengst zijn cruciaal voor optimalisatie van vectoren in een vroeg stadium en voor portfoliotriage.
Dit protocol slaat de brug tussen vroege ontdekking en preklinische validatie door hoogwaardige rAAV te leveren voor zowel mechanistische studies als translationeel onderzoek. Het is gepositioneerd als een kerncapaciteit voor vector engineering, screening en in vivo proof-of-concept workflows.