Analyse van elektrocardiogrammen en gedrag bij muizen van zwangerschap tot lactatieperiode

Ons onderzoek richt zich op de fysiologische veranderingen bij moeders van zwangerschap tot borstvoeding, en hoe deze het gedrag van de moeder en de ontwikkeling van haar pups beïnvloeden. We proberen te bepalen hoe de fysiologie van een moeder zich aanpast om de gezonde groei en ontwikkeling van haar nakomelingen te ondersteunen. Het implementeren van territoria bij drachtige muizen maakt het mogelijk om het ECG continu te volgen van zwangerschap tot lactatie, wat inzicht geeft in automatische activiteit tijdens een reproductieve gebeurtenis. Deze methode resulteert in meer natuurlijke gedragsobservaties en gelijktijdige ECG-opnames bieden een duidelijk inzicht in de veranderende fysiologie van de moeder.

Ons onderzoek heeft de operatiemethoden en muisobservatiemethoden verbeterd, waardoor het mogelijk is om muizen gedurende een lange tijd te volgen.

Ons onderzoek helpt ons te begrijpen hoe de fysieke reactie van de moeder tijdens zwangerschap en borstvoeding in termen van automatische activiteit. Ons onderzoek kan leiden tot verbeterde moederlijke zorg en ondersteuning voor de ontwikkeling van pups, en kan inspireren tot nieuwe benaderingen om voortplanting te bestuderen, niet alleen bij dieren, maar ook bij mensen.

In de toekomst zijn we van plan om te onderzoeken waar de moeders die kindermoord of verwaarlozing hebben gepleegd in de natuurlijke omgeving verschillen hebben in autonome activiteit en moederlijk gedrag van zwangerschap tot borstvoeding in vergelijking met normale moeders. We zijn van mening dat dit protocol ook nuttig zal zijn om de factoren achter verwaarlozing en kindermoord te begrijpen.

[Docent] Plaats om te beginnen de verdoofde muis in buikligging op de paneelverwarming. Maak met een schaar een huidincisie tussen de oren en steek vervolgens een tang in de incisie om de huid en de spier rond de nek en de buikzijde te scheiden, waardoor er ruimte ontstaat voor plaatsing van de telemeter. Steek nu de telemeter door de incisie tussen de oren en plaats deze in de gecreëerde ruimte aan de ventrale zijde. Gebruik een tang om de positieve en negatieve draden van de telemeter te rollen en te bundelen en plaats deze draden in de nekruimte. Gebruik voor het sluiten van de incisie een naald van 13 millimeter en een hechtdraad van 20 centimeter. Plaats vervolgens de muis in rugligging. Maak met een schaar een kleine incisie rond de huid van het sleutelbeen en scheid de spieren van de nekhuid. Haal met een tang de positieve en negatieve draden uit de achterkant van de nek. Scheid vervolgens voorzichtig de speekselklieren om het V-vormige uiterlijk van de sternocleidomastoïde spier bloot te leggen. Pas daarna de lengte van de negatieve draad aan om de sternocleidomastoïde spier nabij het sleutelbeen te bereiken en verwijder voorzichtig de loden slang van de negatieve kabel. Steek nu de hechtnaald met een hechtdraad van 10 centimeter door de V-vormige bocht van de sternocleidomastoïde spier om een lus te maken. Rijg de roestvrijstalen elektrode van de negatieve draad door deze lus en plaats deze onder de spier bij het sleutelbeen. Knoop de lus lichtjes vast om de roestvrijstalen elektrode vast te zetten zonder de sternocleidomastoïde spier te beschadigen. Plaats verder een tweede hechtdraad aan de craniale zijde van de spier en bind deze om de slang van de negatieve draad om deze vast te zetten. Snijd daarna rond het xiphoid-proces en scheid voorzichtig de huid van de spier tussen het xiphoid-proces naar het sleutelbeen. Verleng vervolgens de positieve voorsprong om het xiphoid-proces te bereiken. Verwijder de loden slang van de positieve draad en zorg ervoor dat de opgerolde roestvrijstalen elektrode binnenin wordt uitgerekt met een fijn pincet. Gebruik vervolgens een naald van 18 gauge om een tunnel onder de spier rond het xiphoid-proces te maken. Plaats vervolgens de roestvrijstalen elektrode in een naald en haal deze door de spier rond het xiphoid-proces. Nadat de naald is verwijderd, gebruikt u een hechtnaald met een hechtdraad van 10 centimeter om de opgerolde roestvrijstalen elektrode lichtjes aan de spier rond het xiphoid-proces te hechten. Om de positieve draad verder vast te zetten, plaatst u een tweede hechtdraad aan de craniale zijde van de processus xiphoid en bindt u deze rond de slang van de positieve kabel. Sluit met een hechtnaald met een hechtdraad van 20 centimeter alle incisies. Plaats de muis na implantatie in een schone kooi. Plaats om te beginnen de muis met de telemeter in de kooi en plaats de kooi op de T-basis die fungeert als ontvanger voor muistelemetrie. Schakel de opneembare computer in en gebruik de geïnstalleerde softwaretoepassing voor gegevensanalyse om elektrocardiogramgegevens van de muis te verzamelen. Neem vervolgens met behulp van de labkaarttoepassing op de opneembare computer het elektrocardiogram op. Als u de elektrocardiogramgegevens wilt analyseren, start u LabChart en opent u het gegevensbestand voor de opnameperiode. Klik op de HRV-knop en pas de instellingen voor beatdetectie dienovereenkomstig aan om de hartslagvariabiliteit te analyseren. Klik vervolgens op de HRV-knop en selecteer de weergave Beat Classifier. Kies alle beats in de Beat Classifier-weergave en selecteer de Rapportweergave met de HRV-knop. Kopieer de gegevens uit de rapportweergave en plak deze in Excel voor verdere analyse. Elektrocardiogramanalyse toonde aan dat de hartslag geleidelijk afnam, terwijl het ademhalingsfrequentie-interval geleidelijk toenam van GD 17 naar PD 21. Uit de HRV-analyse bleek dat de lage tot hoge frequentieverhouding sterk toenam van PD 0 naar PD 21.