Snelle detectie van virulentie en typering van Helicobacter pylori met behulp van Quantum Dot-labeltechnologie

Ons onderzoek richt zich op de ontwikkeling van diagnostische reagentia voor in vitro immunochromatografie. We streven ernaar om quantum dot-labeling te gebruiken om specifieke antigeen-antilichaambinding mogelijk te maken voor nauwkeurige HP-detectie. We hebben ontdekt dat het gebruik van quantum dot-technologie voor HP-typeringsdetectie echt kan helpen bij de precieze behandeling van deze bacterie.

We zullen de problemen oplossen van traditionele technologie die niet in staat is om de virulentie van Helicobacter pylori te onderscheiden en gecompliceerde operaties heeft door middel van quantum dot-technologie. Bij het beoordelen of Helicobacter pylori geïnfecteerd is, kunnen we de sterkte van virulentie onderscheiden en geïndividualiseerde behandelplannen bieden.

[Docent] Verzamel om te beginnen bloed in een separatiegelbuisje en zorg ervoor dat hemolyse wordt voorkomen. Als het testen van het serum binnen vier uur niet mogelijk is, bewaar het monster dan maximaal drie dagen bij een temperatuur tussen twee en acht graden Celsius. Voor langdurige opslag sluit u het monster af en bewaart u het maximaal een jaar onder min 20 graden Celsius. Breng de monsters op kamertemperatuur en meng ze grondig voor gebruik. Haal de reagensset en de kwaliteitscontrolematerialen eruit en laat ze in evenwicht komen tot kamertemperatuur. Centrifugeer nu de volbloedmonsters gedurende 1.467 minuten bij 10 G. Schakel nu het instrument en de operationele computer in. Start de bijbehorende software en log in op de software. Controleer of het lotnummer van de beveiligde digitale of SD-kaart overeenkomt met dat van de reagenskit. Plaats de SD-kaart in het instrument en selecteer de ID-chip lezen in de applicatie voor automatische matching. Selecteer in de applicatie de testmodule. Kies initialisatie-instellingen om het instrument te initialiseren en wacht tot het proces is voltooid. Ga naar het reagensgebied van het instrument en verwijder de sleuf van de testkaart. Open nu de reagenskit en selecteer het gewenste aantal testkaarten. Open vervolgens de foliepleisters van de testkaarten en plaats ze in de gleuf volgens de aangegeven richting. Plaats de kaartsleuf terug in het reagensgebied van het instrument. Selecteer in de testmodule bidirectionele LIS. Ga naar de module voor handmatige invoer, klik op informatie-invoer en voer de specifieke materiaalinformatie voor kwaliteitscontrole in. Klik op het genereren en plaats de kwaliteitscontrolematerialen in het daarvoor bestemde monsterrek, zodat u verzekerd bent van de juiste volgorde en oriëntatie. Klik op test starten om QC-testen te starten. Selecteer nu in de testmodule handmatige invoer om bidirectionele LIS weer te geven. Plaats de testmonsters in het daarvoor bestemde monsterrek en zorg voor de juiste volgorde en oriëntatie. Klik op test starten. Zodra het testen is voltooid, werpt het instrument de gebruikte testkaarten automatisch uit en gooit de operator ze weg als medisch afval. De piekdiagrammen van twee negatieve monsters vertoonden geen significante signalen bij X1-Urease, X2-CagA of X3-VacA, wat de negatieve resultaten van Helicobacter pylori bevestigde, terwijl de sterke piek bij de X4-C-lijn geldige testresultaten aangaf. Twee monsters die positief waren voor urease vertoonden sterke signaalpieken bij X1, wat de infectie met Helicobacter pylori type twee bevestigde, terwijl X2 en X3 op baseline of laag signaal bleven, wat wijst op negatieve CagA- en VacA-antilichamen. Drie monsters die positief waren voor urease en ook positief voor CagA en/of VacA vertoonden hoge pieken bij X1, X2 en X3, wat wijst op infectie met helicobacter pylori type één. Werkingskarakteristiek van de ontvanger, of ROC-curves, voor individuele biomarkers en gecombineerde indicatoren toonden aan dat het combineren van vijf indicatoren met G17-, PGI-, PCI-, PGR- en Helicobacter pylori-antilichaamtypering de diagnostische prestaties verbeterde met de hoogste gevoeligheid en specificiteit.