17 oktober 2025
Dit protocol beschrijft een effectieve methode voor het kwantificeren van het verschil in DNA-schade veroorzaakt door type I- en type II-remmers in FLT3-mutante cellen door de toepassing van de komeettest.
We gebruiken de komeettest om systematisch de genotoxiciteit van type I en type II FLT3-remmers op 32D FLT3-mutante cellen te evalueren, waarbij kritieke gegevens worden verkregen voor klinische optimalisatie in AML. Tijdens de procedures zal een onjuist gebruik van een microchirurgisch hulpmiddel het objectglaasje veranderen, wat resulteert in monsterverlies. Onderzoek wijst uit dat AC220 als type II-remmer ernstigere DNA-schade toebrengt aan FLT3-mutante cellen, wat cruciale inzichten oplevert voor het ontwikkelen van combinatietherapieën door gebruik te maken van de kwetsbaarheid voor DNA-schade om therapeutische resistentie te overwinnen.
Onderzoek het werkingsmechanisme van FLT3-remmers bij de behandeling van AML en ontwikkel strategieën voor dual-drug of multi-drug combinatietherapie op basis van FLT3-remmers. Bereid om te beginnen een mengsel van 10 op één van agarose met een laag smeltpunt en celsuspensie in buisjes van 1,5 milliliter met behulp van een pipet en meng voorzichtig. Doseer 55 microliter aliquots van het agarosecelmengsel op komeetdia's met behulp van een pipet die in een hoek van 45 graden wordt gehouden.
Plaats vervolgens de glaasjes bedekt met het mengsel gedurende 30 minuten op vier graden Celsius in een donkere omgeving. Dompel de gestolde objectglaasjes onder in een voorgekoelde lysisoplossing en incubeer ze minstens een uur bij vier graden Celsius, waarbij de objectglaasjes tegen licht worden beschermd. Verwijder na de lysis de objectglaasjes uit de lysisoplossing.
Zuig met een pipetpistool voorzichtig zoveel mogelijk restvloeistof op rond de peddel. Plaats de objectglaasjes vervolgens in een alkalische elektroforesebuffer en laat ze in het donker een uur bij vier graden Celsius voorbalanceren. Plaats nu de objectglaasjes in de elektroforesekamer.
Om de objectglaasjes volledig onder te dompelen, voegt u voldoende voorgekoelde alkalische elektroforese-oplossing toe. Laat elektroforese gedurende 30 minuten op 24 volt met een constante stroom draaien met behulp van een vooraf uitgebalanceerde buffer om DNA-schade te verminderen. Gebruik na de elektroforese een pipetpistool om de alkalische elektroforesebuffer rond het objectglaasje op te zuigen.
Dompel de dia's vijf minuten onder in dubbel gedestilleerd water en dompel de dia's vervolgens vijf minuten onder in 70% ethanol. Plaats de dia's in een broedmachine op 37 graden Celsius gedurende 15 minuten om te drogen. Breng vervolgens een hoeveelheid van 100 microliter YeaRed nucleïnezuurkleuring aan op elk putje van het objectglaasje.
Incubeer de dia's gedurende 30 minuten bij 28 graden Celsius in een tegen licht beschermde omgeving. Spoel de objectglaasjes voorzichtig af met water om overtollige vlekken te verwijderen en droog ze af in een broedmachine van 37 graden Celsius. De komeettest werd systematisch gebruikt om differentiële DNA-schadeprofielen te kwantificeren die werden geïnduceerd door Gilteritinib en AC220 in FLT3-mutante cellijnen.
Kwantitatieve analyse van het staart-DNA-percentage bevestigde dat beide verbindingen de DNA-schade na twee, vier en zes uur aanzienlijk verhogen, waarbij AC220 op elk tijdstip hogere schadeniveaus produceert dan Gilteritinib. Alle staartmetingen weerspiegelden de staart-DNA-trend met statistisch significante verhogingen voor beide behandelingen van twee tot zes uur en hogere OTM-waarden waargenomen in de AC220-groep gedurende het hele proces.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie maakt gebruik van de comet assay om de genotoxische effecten van type I en type II FLT3-remmers op FLT3-mutante 32D-cellen te evalueren, waarbij aanzienlijke DNA-schade door AC220 wordt benadrukt in vergelijking met Gilteritinib. De bevindingen leveren cruciale inzichten voor het optimaliseren van therapeutische strategieën bij acute myeloïde leukemie (AML).
Kwantitatieve beoordeling van DNA-schade middels de comet assay in 32D-cellen die een FLT3-mutant tot expressie brengen, biedt bruikbare inzichten voor het optimaliseren van strategieën met FLT3-remmers bij de ontwikkeling van geneesmiddelen voor acute myeloïde leukemie (AML). Verschillen in genotoxiciteitsprofielen tussen type I- en type II FLT3-remmers informeren rationele combinatiemethoden en mechanistische risicoreductie in de fase van targetvalidatie. Deze bevindingen ondersteunen risico-gecorrigeerde voortgang en portfoliotriage voor FLT3-gerichte therapieën.
De kwantificering van DNA-schade op basis van de comet assay is geïntegreerd in het continuüm van ontdekking naar preklinisch onderzoek voor FLT3-gerichte AML-therapieën.