7 november 2025
Dit protocol maakt een eerste kwaliteitscontrole mogelijk voor RNA-seq-experimenten voor wet-lab biologen met beperkte bio-informatica-ervaring.
We hebben innovatieve bio-informatica-tools ontwikkeld om data-analyse van high-throughput experimenten te vereenvoudigen, automatiseren en integreren. We gebruiken high throughput sequencing, geavanceerde bio-informatica software en krachtige computerinfrastructuur om systematische biologische analyse mogelijk te maken. Om te beginnen installeert u alle vereiste R-pakketten met behulp van de bioconductor package manager.
Maak een bronmap aan om de invoerbestanden voor de analyse te organiseren. Voeg de referentiegenoomsequentie toe in FASTA-formaat als ReferenceGenome. Voor deze map.
Voeg het genmodelannotatiebestand toe genaamd ReferenceAnnotation. GTF naar dezelfde map. Optioneel kun je de RRNA-genannotatie opnemen als een GTF-bestand genaamd ReferenceRRNA.gtf.
Plaats alle sequencing-reads als gecomprimeerde FASTQ-bestanden in de map genaamd Reads. Zorg ervoor dat elk bestand het naamgeving volgt. Stel vervolgens de analyseparameters in volgens de gebruikte sequencingmethode.
Om de kwaliteit van de sequentie in kaart te brengen, gebruik je het Rsubread-pakket om een index van het referentiegenoom te bouwen uit het genoombestand FASTA. Voor elk monster gebruik je de alignerfunctie om sequencing-reads te itereren en uit te lijnen op het referentiegenoom. Sla de resulterende uitlijningsbestanden op in de uitvoermap in BAM-formaat.
Gebruik nu de feature counts-functie om reads te tellen die aan elk gen zijn toegewezen. De annotatiebestanden moeten in GTF-formaat zijn. Zorg ervoor dat alleen reads met één match met het genoom worden geteld.
Tel de reads die naar RRNA-genen worden gekoppeld door de feature counts-functie te gebruiken met het RRNA-gen GTF-bestand. Laat multi-mapped reads in deze telling worden opgenomen. Haal de leestoewijzingsstatistieken op die door de feature counts-functie voor elk monster worden gegenereerd.
Deze statistieken omvatten het aantal reads dat is gecategoriseerd als toegewezen, niet-toegewezen, multi-mapped en andere. Verzamel de statistieken voor RRNA-gentoewijzingen apart. Vervolgens genereer je balkgrafieken, waarmee je de read mapping-statistieken van de vorige stappen visualiseert.
Groeperen genen op basis van het aantal leesopdrachten dat aan hen is toegewezen. Plot de classificatieresultaten als een bargrafiek. Voorbeeld S2R1 liet een laag aantal reads zien, zowel voor als na het trimmen.
De getrimde leestelling van monster S2R2 was zichtbaar verminderd ten opzichte van de ruwe leestelling, wat wijst op het verwijderen van lage kwaliteit leesbeelden tijdens het trimmen. Mapping identificeerde problemen in de leesopdrachten. Monster S2R3 vertoonde een hoog aantal multi-mapped reads en een verhoogd aantal ribosomale RNA-reads.
Een groot deel van de reads in monster S2R4 kwam niet overeen met het referentiegenoom, wat wijst op besmetting met sequenties van een niet-doelorganisme. Monsters S2R1 tot en met S2R4 toonden minder genen met meer dan 100 toegewezen reads. In de correlatie-warmtekaart clusterde monster S2R5 met de replicaten van sample S1 en sample S1R5 clusterde met de replicates van sample S2, wat wijst op een waarschijnlijke replicataire labelfout.
We pakken ontbrekende kwaliteitscontrole voor RNA-Seq aan, zodat we betrouwbare databeoordeling garanderen voordat we downstream genexpressie-analyse uitvoeren. Onze tool integreert meerdere kwaliteitsteksten en biedt toegankelijke, geautomatiseerde en reproduceerbare RNA-Seq-beoordeling voor biologen. Onze tool maakt het mogelijk te onderzoeken hoe RNA-Seq-kwaliteit de biologische interpretatie beïnvloedt, wat de weg vrijmaakt voor transparante en reproduceerbare transcriptomics.
Dit protocol maakt een initiële kwaliteitscontrole mogelijk voor RNA-seq experimenten voor nat-lab biologen met beperkte ervaring in bio-informatica. Het integreert geautomatiseerde tools voor systematische biologische analyse, wat een betrouwbare gegevensbeoordeling garandeert voorafgaand aan de downstream analyse van genexpressie.
Robuuste kwaliteitscontrole bij bulk RNA-seq-experimenten is essentieel voor het waarborgen van de data-integriteit en reproduceerbaarheid in zowel discovery- als translationele onderzoekspijplijnen. De Rup-pijplijn biedt een gestandaardiseerd, toegankelijk raamwerk voor de vroegtijdige detectie van problemen met de sequencing en monsterkwaliteit, wat een directe impact heeft op de betrouwbaarheid van downstream genexpressie-analyses. Door wet-lab biologen in staat te stellen de bruikbaarheid van data systematisch te beoordelen, versterkt Rup het voorspellende vertrouwen en ondersteunt het risico-gecorrigeerde besluitvorming in biopharma R&D-portfolio's.
Rup integreert op het grensvlak van datageneratie en downstream-analyse, waarmee het de fasen van vroege ontdekking, screening en translationeel onderzoek overbrugt.