23 juni 2026
Dit protocol beschrijft een magnetische kralen-gebaseerde sorteermethode waarbij fycoerythrine (PE)-gelabelde flowcytometrie-antilichamen en anti-PE-microkorrels worden gebruikt om specifieke mesenchymale stamcelsubpopulaties met hoge postsort-doelmarkerpositiviteit en geconserveerde CCK-8-gebaseerde proliferatie/metabole activiteit onder de geteste omstandigheden te isoleren, zonder dure celsorteerders of doelspecifieke op maat gemaakte kralen te vereisen.
Ons onderzoek richtte zich op het isoleren van specifieke mesenchymale stamcelsubset voor kosteneffectieve magnetische kraalverzachting met hoge zuiverheid en leesbaarheid. Dit protocol kan worden toegepast op elk membraaneiwit met standaard PE-geconjugeerde antilichamen. Om te beginnen verzamel je de benodigde reagentia.
Selecteer mesenchymale stamcellen, of MSC's, uit passages drie tot vijf die 80 tot 90% samenvloeiing hebben bereikt. Laat het cultuurmedium varen. Was de cellen twee keer met 10 milliliter voorverwarmde PBS.
Wieg het vat voorzichtig en gooi de PBS weg. Voeg twee milliliter van 0,25% trypsine-EDTA toe en incubeer bij 37 graden Celsius gedurende drie tot vijf minuten. Observeer de cellen onder een microscoop totdat ze zich afronden en beginnen los te laten.
Voeg vier milliliter kweekmedium toe met 16,5% FBS om het trypsine te neutraliseren. Pipette de cellen voorzichtig om volledige loskoppeling te garanderen en breng de celsuspensie over in een centrifugebuis van 15 milliliter. Centrifugeer de celsuspensie op 300 g gedurende drie minuten en gooi het supernatant weg.
Suspendeer de celpellet opnieuw in één milliliter buffer. Tel de cellen om het totale aantal cellen te bepalen. Centrifugeer en gooi het supernatant weg zoals eerder aangetoond.
Suspendeer de cellen opnieuw met een buffer om een dichtheid van 100 miljoen cellen per milliliter te bereiken. Breng de celsuspensie over in een vijf milliliter polystyreen buis met een ronde bodem. Voeg 10 microliter Fc gamma RII-blokker toe per 10 miljoen cellen.
Meng voorzichtig en laat ze 10 minuten op kamertemperatuur incuberen. Voeg vijf microliter phycoerythrin-geconjugeerd, of PE-geconjugeerd, antihumane podoplanine, of PDPN-antilichaam toe, per 10 miljoen cellen. Meng voorzichtig en laat ze 15 tot 20 minuten op kamertemperatuur incuberen, beschermd tegen licht.
Voeg 10 microliter selectiecocktail toe per 10 miljoen cellen. Meng voorzichtig en laat het 15 minuten op kamertemperatuur incuberen. Gebruik een vortexmixer om het magnetische kralenflesje 30 seconden krachtig te mengen.
Voeg vijf microliter magnetische kralen toe per 10 miljoen cellen. Meng voorzichtig en laat ze 10 minuten op kamertemperatuur incuberen. Plaats de vijf milliliter polystyreen buis met een ronde bodem met het gelabelde celmonster in de magnetische scheidingsstandaard.
Voeg buffer toe aan de buis om het totale volume op 2,5 tot drie milliliter te brengen. En vijf minuten op kamertemperatuur uitbroeden. Door de magneet en buis als één geheel bij elkaar te houden, draai je ze om om het supernatant in een nieuwe verzamelbuis te gieten.
Plaats de verzamelde PDPN-negatieve celfractie op ijs. Herhaal de magnetische scheidingsprocedure drie keer zoals eerder gedemonstreerd, waarbij het supernatant na elke scheiding in dezelfde PDPN negatieve fractie verzamelbuis wordt gegoten. Na de laatste wasbeurt verwijdert u de buis met de magnetisch gebonden PDPN positieve celfractie van de magnetische scheidingsstandaard.
Voeg drie milliliter buffer toe om de positieve cellen opnieuw te laten ophangen. Breng de positieve fractiecel-suspensie over naar een vers gelabelde buis. Tel de cellen uit zowel de positieve als negatieve fractiebuisjes.
Noteer de celopbrengst voor elke fractie. Centrifugeer de positieve fractiecelsuspensie op 300 g gedurende drie minuten en gooi het supernatant af. Suspensie de celpellet opnieuw in MEM-alfakweekmedium met 16,5% FBS.
Pas de celdichtheid aan indien nodig en zaai de cellen in kweekplaten of kolven. Incubeer de cellen bij 37 graden Celsius in een incubator van 5% kooldioxide. Na het tellen van de cellen zaait je ze op een 100-millimeter kweekschaal met een dichtheid van drie miljoen cellen per schotel in 12 milliliter kweekmedium.
24 uur na het zaaien observeer je de celhechting. Vervang het kweekmedium door een nieuw medium om resterende magnetische pareltjes en niet-hechtende cellen te verwijderen. Oogst de cellen door trypsinisatie.
Pipetteer de celsuspensie voorzichtig 10 tot 15 keer op en neer om magnetische pareltjes en resterende antilichamen los te maken en te verwijderen. Beoordeel het percentage PDPN PE-positieve cellen met flowcytometrie. Verzamel cellen tijdens de logaritmische groeifase.
Zaai de cellen in een 96-well-plaat. Voeg op verschillende momenten Cell Counting Kit-8m of CCK-8 reagens toe en meet de absorptie volgens de instructies van de fabrikant. Tabeliseer de pre-sorteer- en postsorteergegevens voor verschillende tijdstippen in de GraphPad Prism-software, en klik vervolgens op data om de proliferatiecurve uit te zetten.
Na het blokkeren van FC-receptoren, het labelen van antistoffen en magnetische scheiding was het uiteindelijke celaantal ongeveer 3,5 miljoen cellen voor de positieve PDPN-fractie en 6,4 miljoen cellen voor de PDPN-negatieve fractie. Voor magnetische sortering was de frequentie van PDPN-positieve cellen in de begincelpopulatie 38,7%. Na sortering bevatte de positieve fractie 97,9%PDPN PE-positieve cellen. Flowcytometrie-analyse van de negatieve fractie toonde aan dat 4,30% van de PDPN-positieve cellen overbleef, wat wijst op een efficiënte uitputting van PDPN-positieve cellen uit de negatieve fractie.
De proliferatiecurve van PDPN-positieve cellen over drie opeenvolgende dagen van kweek toonde geen significant verschil vergeleken met ongesorteerde MSC's, wat aangeeft dat de sorteerstrategie geen detecteerbare vermindering veroorzaakte van CCK-8-gebaseerde proliferatie of metabole activiteit vergeleken met ongesorteerde MSC's. Deze benadering maakt het mogelijk om subpopulaties met hoge zuiverheid en leesbaarheid te bestuderen. De belangrijkste overweging in dit protocol is voorzichtig om de leesbaarheid van cellen te behouden en losstaande kralen te verwijderen.
Volg deze procedure, onderzoek kan proliferatie-assays uitvoeren, en sedimentaire en deflatie-studies.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
De studie presenteert een gestandaardiseerd protocol voor magnetische kraal-sortering voor het isoleren van subpopulaties van mesenchymale stamcellen met behulp van met phycoerythrine (PE)-gelabelde flowcytometrie-antilichamen en anti-PE magnetische kralen. Deze indirecte koppelingsmethode maakt verrijking van doelcellen mogelijk zonder dat hiervoor dure flowcytometrische sorters of aangepaste magnetische kralen nodig zijn. Met gebruik van podoplanine (PDPN)-positieve cellen als model bereikt de methode een hoge zuiverheid na sortering, terwijl de celproliferatie en metabole activiteit behouden blijven.
Efficiënte isolatie van zeldzame subpopulaties van mesenchymale stamcellen, zoals podoplanine-positieve cellen, is cruciaal voor targetvalidatie en functionele risicoreductie in vroege ontdekkingstfasen. De indirecte magnetische bead-strategie met gebruik van PE-gelabelde antilichamen en anti-PE beads maakt een snelle, kostenefficiënte verrijking van doelcelpopulaties mogelijk zonder afhankelijkheid van op maat gemaakte reagentia of flowcytometrische sorters. Deze aanpak ondersteunt schaalbare portfoliotriage en versnelt translationeel onderzoek naar onderbelichte oppervlaktemarkers.
Dit protocol voor indirecte scheiding met magnetische beads bevindt zich op het snijvlak van vroege ontdekking en preklinisch onderzoek, en slaat een brug tussen targetvalidatie en assayontwikkeling voor zeldzame celpopulaties.