RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
W tym eksperymencie oddzielisz pigmenty od liści szpinaku za pomocą bibuły chromatograficznej. Poszczególne pigmenty przemieszczają się wzdłuż bibuły chromatograficznej z różną prędkością i mogą mieć różne kolory. Obliczając względną odległość, jaką pokonują pigmenty, ich współczynnik rozdzielczości i porównując je z wartościami literaturowymi, można zidentyfikować różne pigmenty.
W tym ćwiczeniu hipoteza eksperymentalna jest taka, że w liściach szpinaku będzie wiele pigmentów, które pochłaniają różne długości fal światła słonecznego. Hipoteza zerowa jest taka, że w liściu szpinaku znajduje się tylko jeden rodzaj pigmentu. Za pomocą ołówka narysuj linię w odległości dwóch centymetrów od jednego końca bibuły chromatograficznej.
Następnie połóż środek do czyszczenia rur poziomo na wierzchu czystej 400-mililitrowej zlewki. Umieść oznaczoną ołówkiem stronę paska chromatograficznego na dnie zlewki. Następnie owiń papier wokół środka do czyszczenia rur tak, aby dolna krawędź ledwo dotykała dna zlewki, a następnie zabezpiecz ją spinaczem do papieru.
Gdy papier jest zabezpieczony wokół czyścika do fajek, wyjmij go ze zlewki, a następnie umieść poklepany suchy liść szpinaku nad zaznaczoną linią na bibule chromatograficznej. Przetocz monetę po liściu szpinaku wzdłuż linii ołówka, wielokrotnie poruszając się w przód iw tył i wywierając stały nacisk. Po usunięciu liścia powinna być wyraźnie widoczna zielona linia.
Następnie umieść osiem mililitrów rozpuszczalnika chromatograficznego w zlewce. Opuścić pasek chromatograficzny do zlewki tak, aby krawędź bibuły stykała się z rozpuszczalnikiem, ale zielona linia nie. W razie potrzeby wyreguluj czyścik do rur.
Obserwuj, jak rozpuszczalnik przesuwa się w górę papieru, a poszczególne pigmenty rozdzielają się, ale nie naruszaj zlewki. Gdy rozpuszczalnik przemieści się do połowy bibuły chromatograficznej, co zajmie około 10 minut, a pigmenty rozdzielą się na dobrze zdefiniowane pasma, wyjmij bibułę ze zlewki. Zaznacz ołówkiem, jak daleko przebył rozpuszczalnik, a następnie pozwól papierowi wyschnąć.
Następnie zapisz liczbę widocznych pasm i opisz ich kolor oraz względny rozmiar. Zmierz, jak daleko przebyły się rozpuszczalnik i pigmenty, i zapisz te informacje dla każdego pigmentu w tabeli pierwszej. Rozpuszczalnik chromatograficzny wyrzucić do pojemnika na odpady pod wyciągiem.
Wyrzuć paski chromatograficzne do zwykłego kosza, a następnie wyczyść zlewki wodą z mydłem. W tym eksperymencie będziesz pośrednio obserwować fotosyntezę i oddychanie komórkowe za pomocą pływającego dysku liściowego w roztworze. Podczas fotosyntezy pęcherzyki powietrza spowodują, że liście będą unosić się na wodzie.
A podczas oddychania dyski zatoną. W tym ćwiczeniu hipoteza eksperymentalna jest taka, że krążki liści będą miały większą szybkość fotosyntezy w roztworze wodorowęglanu, ponieważ wodorowęglan dostarcza dodatkowy CO2 do napędzania fotosyntezy, powodując unoszenie się większej liczby krążków liści. Dodatkowo wszystkie dyski zapadną się w ciemności podczas oddychania komórkowego.
Hipoteza zerowa mówi, że nie będzie różnicy w tempie fotosyntezy, a tym samym w liczbie pływających dysków między wodorowęglanem a wodą lub w jasnych i ciemnych zabiegach. Na początek umieść krążki liściowe pod próżnią za pomocą strzykawki. Gwarantuje to, że ciecz z roztworów testowych wodorowęglanów i wody w pełni przenika do przestrzeni powietrznych w tkance liścia.
Aby to zrobić, najpierw wyjmij tłoki z dwóch 20-mililitrowych strzykawek, a następnie umieść 10 krążków liściowych w każdej tubce strzykawki. Oznaczyć jedną strzykawkę wodorowęglanem i oznaczyć drugą strzykawkę wodą. Wymienić tłoki i naciskać tłok do momentu, aż w strzykawce pozostanie tylko niewielka ilość powietrza, uważając, aby nie uszkodzić krążków liściowych.
Pobrać pięć mililitrów roztworu wodorowęglanu do jednej ze strzykawek. Odwrócić i zakręcić strzykawką, aby zawiesić krążki liściowe w roztworze. Wypchnij jak najwięcej powietrza, nie wyrzucając roztworu ani nie uszkadzając krążków liściowych.
Następnie wciągnij pięć mililitrów roztworu wodnego do drugiej strzykawki i zakręć nią w ten sam sposób. Aby wytworzyć podciśnienie, należy przytrzymać jeden palec nad końcówką strzykawki, jednocześnie odciągając tłok. Przytrzymaj to przez 10 sekund, jednocześnie obracając strzykawką, aby utrzymać krążki liściowe w zawiesinie.
Teraz zwolnij próżnię. Dyski powinny wchłonąć roztwór do przestrzeni powietrznych w swoich tkankach i powinieneś zobaczyć, jak toną. Jeśli dyski nie toną, możesz powtórzyć wytwarzanie próżni do trzech razy.
Następnie dodaj 50 mililitrów roztworu wodorowęglanu do plastikowego kubka lub szklanej zlewki. A następnie delikatnie dodaj krążki ze strzykawki próżniowej z wodorowęglanem. W celu kontroli dodaj taką samą ilość wody do identycznego kubka, a następnie dodaj krążki liściowe ze strzykawki próżniowej z wodą.
Odpowiednio oznacz pojemniki. Umieść obie filiżanki pod źródłem światła. Co pięć minut zapisuj liczbę krążków unoszących się na powierzchni kubka w tabeli trzeciej, aż upłynie 20 minut.
Następnie zdejmij miseczki ze źródła światła, a następnie zakręć nimi tak, aby krążki na powierzchni zmieszały się z dowolnymi gazami również na powierzchni. Przenieś kubki w ciemne miejsce. Co pięć minut rejestruj liczbę krążków liściowych unoszących się na powierzchni do upływu 20 minut.
Obracaj kubkiem za każdym razem przed umieszczeniem go z powrotem w ciemności. Aby posprzątać, wyrzuć krążki liści do kosza i wlej roztwór wodorowęglanu do odpływu. Dokładnie umyć strzykawki i kubki.
W pierwszym eksperymencie obserwowałeś, jak daleko przemieszczają się pigmenty z liści szpinaku na bibule chromatograficznej. Różne pigmenty pochłaniają światło o różnych długościach fal. Spróbujemy teraz zidentyfikować, czym są te pigmenty.
Za pomocą kolorowych pisaków lub ołówków narysuj pozycje pasm pigmentu i rozpuszczalnika na rysunku trzecim. Oblicz współczynnik retencji lub wartości RF dla pigmentów, co odbywa się, dzieląc odległość, na jaką dany pigment przesunął się w górę papieru od linii, przez odległość, na jaką rozpuszczalnik przesunął się w górę papieru od linii. Porównaj obliczone wartości RF z tymi w tabeli drugiej, aby określić tożsamość pigmentu, a następnie zapisz to w tabeli pierwszej.
W eksperymencie B zaobserwowałeś unoszące się i opadające dyski liściowe jako pośredni pomiar fotosyntezy i oddychania. Wykres wyników z czasem i minutami na osi x oraz liczbą pływających dysków na osi y. Użyj dwóch różnych linii, aby przedstawić kontrolę wody i uzdatnianie wodorowęglanów.
Dodaj linię do wykresu, aby wskazać punkt, w którym dyski zostały wyjęte ze stanu jasnego i umieszczone w ciemności. Następnie, zaczynając od stanu wodorowęglanów, użyj wykresu, aby określić punkt, w którym 50% krążków liściowych unosiło się. Jest to określane jako czas efektywny lub ET 50.
Zauważysz, że dyski prawdopodobnie osiągną znak 50% pływania raz w stanie jasnym, a następnie ponownie w stanie ciemnym. Twoje próbki wody mogą, ale nie muszą, osiągnąć znak ET 50. Jeśli tak, dodaj wiersz również dla tej próbki.
Na koniec porównaj wartości i wykresy ET 50 z resztą klasy. Czy widzisz podobne wzorce?
Related Videos