-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Lab Manual
Biology
Fotosynteza
Fotosynteza
Lab Manual
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Lab Manual Biology
Photosynthesis

Fotosynteza

Skip to

Concept

Instructor Prep

Student Protocol

34,267 Views
08:20 min
January 29, 2019
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Procedure

  1. Chromatografia pigmentów roślinnych
    • UWAGA: W tym eksperymencie oddzielisz pigmenty od liści szpinaku za pomocą bibuły chromatograficznej. Poszczególne pigmenty przemieszczają się po papierze w różnym tempie i mogą mieć różne kolory. Obliczając względną odległość, jaką pokonują pigmenty, ich współczynnik rozdzielczości i porównując je z wartościami literaturowymi, można zidentyfikować różne pigmenty. HIPOTEZY: W tym ćwiczeniu hipoteza eksperymentalna jest taka, że w liściach szpinaku będzie wiele pigmentów, które pochłaniają różne długości fal światła słonecznego. Hipoteza zerowa jest taka, że w liściu szpinaku znajduje się tylko jeden rodzaj pigmentu.
    • Użyj ołówka, aby narysować linię dwa centymetry od jednego końca bibuły chromatograficznej.
    • Następnie połóż środek do czyszczenia rur poziomo na wierzchu czystej zlewki o pojemności 400 ml.
    • Umieść zaznaczoną ołówkiem stronę paska chromatograficznego na dnie zlewki.
    • Następnie owiń papier wokół środka do czyszczenia rur tak, aby dolna krawędź ledwo dotykała dna zlewki, a następnie zabezpiecz go spinaczem do papieru.
    • Gdy papier zostanie zabezpieczony wokół czyścika do fajek, wyjmij go ze zlewki, a następnie umieść oklepany suchy liść szpinaku nad zaznaczoną linią na bibule chromatograficznej.
    • Rzuć monetę na liść szpinaku wzdłuż linii ołówka, poruszając się wiele razy w przód i w tył i wywierając stały nacisk. Po usunięciu liścia powinna być wyraźnie widoczna zielona linia.
    • Następnie umieść 8 ml rozpuszczalnika chromatograficznego w zlewce.
    • Opuść pasek chromatograficzny do zlewki tak, aby krawędź papieru stykała się z rozpuszczalnikiem, ale zielona linia nie. W razie potrzeby wyreguluj czyścik do rur.
    • Nie naruszając zlewki, obserwuj, jak rozpuszczalnik przesuwa się w górę papieru, a poszczególne pigmenty oddzielają się.
    • Gdy rozpuszczalnik przemieści się do połowy bibuły chromatograficznej, co zajmie około 10 minut, a pigmenty rozdzielą się na dobrze zdefiniowane pasma, wyjmij bibułę ze zlewki.
    • Zaznacz ołówkiem, jak daleko przebył rozpuszczalnik, a następnie pozwól papierowi wyschnąć. UWAGA: Rozpuszczalnik szybko odparowuje.
    • Następnie zapisz liczbę widocznych pasm i opisz ich kolor oraz względny rozmiar.
    • Zmierz, jak daleko przebyły rozpuszczalnik i pigmenty, i zapisz te informacje dla każdego pigmentu w Tabeli 1. Kliknij tutaj, aby pobrać tabelę 1
    • Rozpuszczalnik chromatograficzny należy wyrzucić do pojemnika na odpady pod wyciągiem. Wyrzuć paski chromatograficzne do zwykłego kosza, a następnie wyczyść zlewki wodą z mydłem.
  2. Pływające krążki liściowe w próżni
    • UWAGA: W tym eksperymencie będziesz pośrednio obserwować fotosyntezę i oddychanie komórkowe za pomocą pływającego dysku liściowego w roztworze. Podczas fotosyntezy pęcherzyki powietrza spowodują, że liście będą unosić się na wodzie, a podczas oddychania dyski opadną. HIPOTEZY: W tym ćwiczeniu hipoteza eksperymentalna jest taka, że krążki liści będą miały większą szybkość fotosyntezy w roztworze wodorowęglanu, ponieważ wodorowęglan dostarcza dodatkowy CO2 do napędzania fotosyntezy, powodując unoszenie się większej liczby krążków liści. Dodatkowo wszystkie dyski zapadną się w ciemności podczas oddychania komórkowego. Hipoteza zerowa jest taka, że nie będzie różnicy w tempie fotosyntezy, a tym samym w liczbie pływających dysków, między wodorowęglanem a wodą lub jasnymi i ciemnymi zabiegami.
    • Aby umieścić krążki z liśćmi w próżni, najpierw wyjmij tłoki z dwóch strzykawek o pojemności 20 ml, a następnie umieść 10 krążków liściowych w każdej probówce strzykawki. Oznacz jedną strzykawkę jako "wodorowęglan", a drugą strzykawkę jako "woda".
    • Wymień tłoki i naciskaj tłok, aż w strzykawce pozostanie tylko niewielka ilość powietrza. Uważaj, aby nie uszkodzić talerzy liściowych.
    • Wyciągnąć 5 ml roztworu wodorowęglanu do jednej ze strzykawek. Odwrócić i zakręcić strzykawką, aby zawiesić krążki liściowe w roztworze.
    • Wypchnij jak najwięcej powietrza, nie wyrzucając roztworu ani nie uszkadzając krążków liściowych.
    • Następnie wciągnij 5 ml roztworu wodnego do drugiej strzykawki i zakręć nim zgodnie z wcześniejszym opisem (krok 3).
    • Aby wytworzyć próżnię, przytrzymaj jeden palec na końcówce strzykawki, jednocześnie odciągając tłok. Przytrzymaj to przez 10 sekund, jednocześnie obracając strzykawką, aby utrzymać krążki liściowe w zawiesinie.
    • Następnie zwolnij próżnię. UWAGA: Dyski powinny wchłonąć roztwór do przestrzeni powietrznych w swoich tkankach i powinieneś zobaczyć, jak toną. Jeśli dyski nie toną, możesz powtórzyć wytwarzanie próżni do trzech razy.
    • Następnie dodaj 50 ml roztworu wodorowęglanu do plastikowego kubka lub szklanej zlewki, a następnie delikatnie dodaj krążki ze strzykawki próżniowej z wodorowęglanem.
    • Dla kontroli, dodaj taką samą ilość wody do identycznej filiżanki, a następnie dodaj krążki liściowe ze strzykawki próżniowej wody. Odpowiednio oznacz pojemniki.
    • Umieść obie filiżanki pod źródłem światła.
    • Co pięć minut zapisuj liczbę krążków unoszących się na powierzchni kubka w Tabeli 3, aż minie 20 minut. Kliknij tutaj, aby pobrać tabelę 3
    • Następnie wyjmij kubki ze źródła światła, a następnie zakręć nimi tak, aby krążki na powierzchni mieszały się z gazami również na powierzchni.
    • Przenieś kubki w ciemne miejsce. Co pięć minut rejestruj liczbę krążków liściowych unoszących się na powierzchni do upływu 20 minut. Obracaj kubkiem za każdym razem przed umieszczeniem go z powrotem w ciemności.
    • Aby posprzątać, wyrzuć krążki liści do kosza i wlej roztwór wodorowęglanu do odpływu. Dokładnie umyć strzykawki i kubki.
  3. Wyniki
    • UWAGA: W pierwszym eksperymencie zaobserwowałeś, jak daleko przemieszczają się pigmenty z liści szpinaku na bibule chromatograficznej. Różne pigmenty pochłaniają światło o różnych długościach fal.
    • Używając kolorowych pisaków lub ołówków, narysuj pozycje pasm pigmentu i rozpuszczalnika na rysunku 3.
    • Oblicz współczynnik retencji, czyli wartości Rf dla pigmentów, co odbywa się poprzez podzielenie odległości, na jaką dany pigment przesunął się w górę papieru od linii, przez odległość, na jaką rozpuszczalnik przesunął się w górę papieru od linii.
    • Porównaj obliczone wartości Rf z wartościami w Tabeli 2, aby określić tożsamość pigmentu. Kliknij tutaj, aby pobrać tabelę 2
    • Zapisz te dane w Tabeli 1. UWAGA: W drugim eksperymencie zaobserwowałeś unoszące się i opadające dyski liściowe jako pośredni pomiar fotosyntezy i oddychania.
    • Wykres wyników z czasem i minutami na osi x oraz liczbą pływających dysków na osi y. Użyj dwóch różnych linii, aby przedstawić kontrolę wody i uzdatnianie wodorowęglanów.
    • Dodaj linię do wykresu, aby wskazać punkt, w którym dyski zostały usunięte ze stanu światła i umieszczone w ciemności.
    • Następnie, zaczynając od stanu wodorowęglanu, użyj wykresu, aby określić punkt, w którym 50% krążków liściowych unosiło się. Nazywa się to czasem efektywnym lub ET50. UWAGA: Zauważysz, że dyski prawdopodobnie osiągną znak 50% pływania raz w stanie jasnym, a następnie ponownie w stanie ciemnym.
    • Twoje próbki wody mogły, ale nie musiały, osiągnąć znak ET50. Jeśli tak, dodaj wiersz również dla tej próbki.
    • Na koniec porównaj swoje wartości i wykresy ET50 z resztą klasy.

Transcript

W tym eksperymencie oddzielisz pigmenty od liści szpinaku za pomocą bibuły chromatograficznej. Poszczególne pigmenty przemieszczają się wzdłuż bibuły chromatograficznej z różną prędkością i mogą mieć różne kolory. Obliczając względną odległość, jaką pokonują pigmenty, ich współczynnik rozdzielczości i porównując je z wartościami literaturowymi, można zidentyfikować różne pigmenty.

W tym ćwiczeniu hipoteza eksperymentalna jest taka, że w liściach szpinaku będzie wiele pigmentów, które pochłaniają różne długości fal światła słonecznego. Hipoteza zerowa jest taka, że w liściu szpinaku znajduje się tylko jeden rodzaj pigmentu. Za pomocą ołówka narysuj linię w odległości dwóch centymetrów od jednego końca bibuły chromatograficznej.

Następnie połóż środek do czyszczenia rur poziomo na wierzchu czystej 400-mililitrowej zlewki. Umieść oznaczoną ołówkiem stronę paska chromatograficznego na dnie zlewki. Następnie owiń papier wokół środka do czyszczenia rur tak, aby dolna krawędź ledwo dotykała dna zlewki, a następnie zabezpiecz ją spinaczem do papieru.

Gdy papier jest zabezpieczony wokół czyścika do fajek, wyjmij go ze zlewki, a następnie umieść poklepany suchy liść szpinaku nad zaznaczoną linią na bibule chromatograficznej. Przetocz monetę po liściu szpinaku wzdłuż linii ołówka, wielokrotnie poruszając się w przód iw tył i wywierając stały nacisk. Po usunięciu liścia powinna być wyraźnie widoczna zielona linia.

Następnie umieść osiem mililitrów rozpuszczalnika chromatograficznego w zlewce. Opuścić pasek chromatograficzny do zlewki tak, aby krawędź bibuły stykała się z rozpuszczalnikiem, ale zielona linia nie. W razie potrzeby wyreguluj czyścik do rur.

Obserwuj, jak rozpuszczalnik przesuwa się w górę papieru, a poszczególne pigmenty rozdzielają się, ale nie naruszaj zlewki. Gdy rozpuszczalnik przemieści się do połowy bibuły chromatograficznej, co zajmie około 10 minut, a pigmenty rozdzielą się na dobrze zdefiniowane pasma, wyjmij bibułę ze zlewki. Zaznacz ołówkiem, jak daleko przebył rozpuszczalnik, a następnie pozwól papierowi wyschnąć.

Następnie zapisz liczbę widocznych pasm i opisz ich kolor oraz względny rozmiar. Zmierz, jak daleko przebyły się rozpuszczalnik i pigmenty, i zapisz te informacje dla każdego pigmentu w tabeli pierwszej. Rozpuszczalnik chromatograficzny wyrzucić do pojemnika na odpady pod wyciągiem.

Wyrzuć paski chromatograficzne do zwykłego kosza, a następnie wyczyść zlewki wodą z mydłem. W tym eksperymencie będziesz pośrednio obserwować fotosyntezę i oddychanie komórkowe za pomocą pływającego dysku liściowego w roztworze. Podczas fotosyntezy pęcherzyki powietrza spowodują, że liście będą unosić się na wodzie.

A podczas oddychania dyski zatoną. W tym ćwiczeniu hipoteza eksperymentalna jest taka, że krążki liści będą miały większą szybkość fotosyntezy w roztworze wodorowęglanu, ponieważ wodorowęglan dostarcza dodatkowy CO2 do napędzania fotosyntezy, powodując unoszenie się większej liczby krążków liści. Dodatkowo wszystkie dyski zapadną się w ciemności podczas oddychania komórkowego.

Hipoteza zerowa mówi, że nie będzie różnicy w tempie fotosyntezy, a tym samym w liczbie pływających dysków między wodorowęglanem a wodą lub w jasnych i ciemnych zabiegach. Na początek umieść krążki liściowe pod próżnią za pomocą strzykawki. Gwarantuje to, że ciecz z roztworów testowych wodorowęglanów i wody w pełni przenika do przestrzeni powietrznych w tkance liścia.

Aby to zrobić, najpierw wyjmij tłoki z dwóch 20-mililitrowych strzykawek, a następnie umieść 10 krążków liściowych w każdej tubce strzykawki. Oznaczyć jedną strzykawkę wodorowęglanem i oznaczyć drugą strzykawkę wodą. Wymienić tłoki i naciskać tłok do momentu, aż w strzykawce pozostanie tylko niewielka ilość powietrza, uważając, aby nie uszkodzić krążków liściowych.

Pobrać pięć mililitrów roztworu wodorowęglanu do jednej ze strzykawek. Odwrócić i zakręcić strzykawką, aby zawiesić krążki liściowe w roztworze. Wypchnij jak najwięcej powietrza, nie wyrzucając roztworu ani nie uszkadzając krążków liściowych.

Następnie wciągnij pięć mililitrów roztworu wodnego do drugiej strzykawki i zakręć nią w ten sam sposób. Aby wytworzyć podciśnienie, należy przytrzymać jeden palec nad końcówką strzykawki, jednocześnie odciągając tłok. Przytrzymaj to przez 10 sekund, jednocześnie obracając strzykawką, aby utrzymać krążki liściowe w zawiesinie.

Teraz zwolnij próżnię. Dyski powinny wchłonąć roztwór do przestrzeni powietrznych w swoich tkankach i powinieneś zobaczyć, jak toną. Jeśli dyski nie toną, możesz powtórzyć wytwarzanie próżni do trzech razy.

Następnie dodaj 50 mililitrów roztworu wodorowęglanu do plastikowego kubka lub szklanej zlewki. A następnie delikatnie dodaj krążki ze strzykawki próżniowej z wodorowęglanem. W celu kontroli dodaj taką samą ilość wody do identycznego kubka, a następnie dodaj krążki liściowe ze strzykawki próżniowej z wodą.

Odpowiednio oznacz pojemniki. Umieść obie filiżanki pod źródłem światła. Co pięć minut zapisuj liczbę krążków unoszących się na powierzchni kubka w tabeli trzeciej, aż upłynie 20 minut.

Następnie zdejmij miseczki ze źródła światła, a następnie zakręć nimi tak, aby krążki na powierzchni zmieszały się z dowolnymi gazami również na powierzchni. Przenieś kubki w ciemne miejsce. Co pięć minut rejestruj liczbę krążków liściowych unoszących się na powierzchni do upływu 20 minut.

Obracaj kubkiem za każdym razem przed umieszczeniem go z powrotem w ciemności. Aby posprzątać, wyrzuć krążki liści do kosza i wlej roztwór wodorowęglanu do odpływu. Dokładnie umyć strzykawki i kubki.

W pierwszym eksperymencie obserwowałeś, jak daleko przemieszczają się pigmenty z liści szpinaku na bibule chromatograficznej. Różne pigmenty pochłaniają światło o różnych długościach fal. Spróbujemy teraz zidentyfikować, czym są te pigmenty.

Za pomocą kolorowych pisaków lub ołówków narysuj pozycje pasm pigmentu i rozpuszczalnika na rysunku trzecim. Oblicz współczynnik retencji lub wartości RF dla pigmentów, co odbywa się, dzieląc odległość, na jaką dany pigment przesunął się w górę papieru od linii, przez odległość, na jaką rozpuszczalnik przesunął się w górę papieru od linii. Porównaj obliczone wartości RF z tymi w tabeli drugiej, aby określić tożsamość pigmentu, a następnie zapisz to w tabeli pierwszej.

W eksperymencie B zaobserwowałeś unoszące się i opadające dyski liściowe jako pośredni pomiar fotosyntezy i oddychania. Wykres wyników z czasem i minutami na osi x oraz liczbą pływających dysków na osi y. Użyj dwóch różnych linii, aby przedstawić kontrolę wody i uzdatnianie wodorowęglanów.

Dodaj linię do wykresu, aby wskazać punkt, w którym dyski zostały wyjęte ze stanu jasnego i umieszczone w ciemności. Następnie, zaczynając od stanu wodorowęglanów, użyj wykresu, aby określić punkt, w którym 50% krążków liściowych unosiło się. Jest to określane jako czas efektywny lub ET 50.

Zauważysz, że dyski prawdopodobnie osiągną znak 50% pływania raz w stanie jasnym, a następnie ponownie w stanie ciemnym. Twoje próbki wody mogą, ale nie muszą, osiągnąć znak ET 50. Jeśli tak, dodaj wiersz również dla tej próbki.

Na koniec porównaj wartości i wykresy ET 50 z resztą klasy. Czy widzisz podobne wzorce?

Explore More Videos

JoVE Lab Laboratorium: 7 Procedura

Skip to

Concept

Instructor Prep

Student Protocol

Related Videos

Fotosynteza

Fotosynteza

Biology

11.2K Wyświetlenia

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code