Nukleosomy są podstawowymi jednostkami zagęszczenia chromatyny. Każdy nukleosom składa się z DNA ściśle związanego wokół rdzenia histonowego, co sprawia, że DNA jest niedostępne dla białek wiążących DNA, takich jak polimeraza DNA i polimeraza RNA. Stąd podstawowym problemem jest zapewnienie dostępu do DNA w razie potrzeby, pomimo zwartej i ochronnej struktury chromatyny.
Kompleks przebudowy nukleosomów
Komórki eukariotyczne mają wyspecjalizowane enzymy zwane enzymami przebudowy nukleosomów zależnymi od ATP. Enzymy te wiążą się zarówno z histonem, jak i DNA rany i mogą ułatwiać przesuwanie się nukleosomów – proces, w którym DNA jest popychane względem rdzenia histonowego lub częściowa lub całkowita wymiana rdzenia histonowego, zmieniając skład nukleosomów i pośrednio wpływając na fałdowanie chromatyny. Jednym z najbardziej znanych kompleksów remodelingowych jest Swi/Snf, pierwotnie zidentyfikowany w drożdżach.
Mechanizm działania
Zaproponowano dwa modele wyjaśniające ślizganie się nukleosomów – dyfuzję skrętną i propagację pętli/zgrubienia. Oba te modele sugerują, że zniekształcenie DNA rozchodzi się po powierzchni nukleosomu.
Model dyfuzji skrętnej
Zgodnie z tym modelem pojedyncza para zasad jest przenoszona między połączonym DNA a DNA owiniętym wokół rdzenia histonowego. Ta zmiana zasady powoduje, że nukleosomalne DNA skręca się lub rozkręca, aby dostosować się do przyrostu/utraty par zasad. Defekt skrętu następnie rozprzestrzenia się wokół nukleosomu z jednego segmentu DNA do drugiego w procesie znanym jako dyfuzja skrętna. W ten sposób oktamer histonowy przesuwałby się wraz z DNA o wielkość zniekształcenia.
Model pętli/wybrzuszenia
Zgodnie z tym modelem, DNA z regionu łącznikowego przejściowo przesuwa się wokół nukleosomu, tworząc wybrzuszenie/pętlę. Pętla następnie przemieszcza się wokół histonu, tworząc lub zakłócając interakcje histon-DNA. W ten sposób rdzeń nukleosomu ślizga się po nici DNA, odsłaniając regiony DNA dla aktywności genetycznej.
Biorąc pod uwagę złożoność fałdowania chromatyny, oba wyżej wymienione modele mogą współistnieć. Istnieją jednak konkretne pytania, na które oba modele nie wyjaśniają, co wskazuje, że rzeczywiste procesy mogą być jeszcze bardziej złożone. Na przykład, w jaki sposób osiąga się procesowość podczas przesuwania? W jaki sposób poszczególne elementy kompleksu remodelingowego uczestniczą w tym procesie? W jaki sposób remodelerzy współpracują z opiekunami histonów?
ATPaza remodelująca nukleosom bierze udział w kilku mechanizmach genetycznych, takich jak rozwojowa ekspresja genów, szybka transkrypcja w odpowiedzi na sygnały środowiskowe, replikacja genomu, nadzór nad uszkodzeniem DNA i naprawa.
Defekty w kompleksie przebudowy nukleosomów mają szeroki zakres konsekwencji. Podczas rozwoju embrionalnego niepowodzenie przebudowy nukleosomów może wpływać na żywotność i powodować wady morfologiczne. Może również prowadzić do problemów z naprawą DNA, co skutkuje niestabilnością genomu i rakiem.
Uporządkowany układ nukleosomów skutkuje zwartą i ochronną organizacją chromatyny, co może utrudniać dostęp do informacji genetycznej na kilka sposobów.
Po pierwsze, białka wiążące DNA, takie jak polimeraza RNA, nie mogą łatwo łączyć się z DNA związanym z powierzchnią histonu. Ponadto DNA owinięte wokół histonu jest mocno wygięte, co czyni go nierozpoznawalnym przez białka wiążące DNA. Wreszcie, białka chromatyny niehistonowej mogą wiązać się z nukleosomami, powodując dalsze zagęszczenie.
Dlatego komórki eukariotyczne mają enzymy zwane zależnymi od ATP kompleksami przebudowującymi chromatynę, które mogą tymczasowo i lokalnie przemodelować nukleosomy.
Kompleksy te zawierają podjednostkę hydrolizującą ATP, która wiąże się zarówno z białkami histonowymi, jak i z nawiniętym wokół nich DNA. Hydroliza ATP dostarcza energii potrzebnej do zakłócenia interakcji między rdzeniem histonowym a DNA.
Energia uzyskana z wielu rund hydrolizy ATP pozwala kompleksom przebudowującym powodować ślizganie się nukleosomów – proces, w którym histon jest przemieszczany wzdłuż DNA bez dysocjacji od niego.
Poślizg nukleosomów najlepiej wyjaśnić za pomocą modelu propagacji pętli-zgrubienia. W tym przypadku DNA z regionu łącznikowego jest wypychane do rdzenia histonu, tworząc pętlę.
To zgrubienie następnie rozchodzi się wokół rdzenia histonowego jak fala, łamiąc i reformując interakcje histon-DNA. Proces ten przesuwa rdzeń histonowy wzdłuż DNA, odsłaniając niedostępne dotąd sekwencje DNA.
Kompleksy remodelujące, w połączeniu z opiekuńczymi histonami, ułatwiają częściową lub całkowitą wymianę rdzeni oktamerów nukleosomów, pośrednio wpływając na fałdowanie chromatyny. Na przykład zastąpienie histonu H3 histonami H3 specyficznymi dla centromeru oznacza lokalizację centromeru na chromosomie.
Białka wiążące DNA niehistonowe również wpływają na położenie i stabilność nukleosomów. Niektóre związane białka mogą sprzyjać tworzeniu nukleosomów, a inne białka mogą nie pozwalać na tworzenie nukleosomów w ich pobliżu.
Dokładna lokalizacja nukleosomów zależy zatem od charakteru niehistonowych białek wiążących DNA, a ze względu na obecność kompleksów przebudowujących chromatynę, skład i rozmieszczenie nukleosomów jest bardzo dynamiczne.
Related Videos
DNA and Chromosome Structure
30.2K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
21.5K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
12.0K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
22.3K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
8.6K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
15.9K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
11.8K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
8.9K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
15.0K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
10.1K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
6.3K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
12.9K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
8.1K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
7.8K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
9.9K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
4.3K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
6.2K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
6.7K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
23.2K Wyświetlenia
DNA and Chromosome Structure
9.1K Wyświetlenia