Method Article

Wieloparametryczny system peryfuzji wysp trzustkowych w mikroprzepływowym urządzeniu peryfuzyjnym

DOI:

10.3791/1649

January 26th, 2010

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mikroprzepływowe urządzenie do peryfuzji wysp trzustkowych zostało opracowane do oceny dynamicznego wydzielania insuliny przez wiele wysp trzustkowych i jednoczesnego obrazowania fluorescencyjnego napływu wapnia i zmian potencjału mitochondrialnego.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Opracowano urządzenie do peryfuzji mikroprzepływowej wysp trzustkowych do oceny dynamicznego wydzielania insuliny przez wiele wysp trzustkowych i jednoczesnego obrazowania fluorescencyjnego napływu wapnia i zmian potencjału mitochondrialnego. Urządzenie składa się z trzech warstw: pierwsza warstwa zawiera szereg studni w mikroskali (średnica 500 μm i głębokość 150 μm), które pomagają unieruchomić wysepki pod wpływem przepływu i maksymalizują odsłoniętą powierzchnię wysepek; druga warstwa zawiera okrągłą komorę peryfuzyjną (głębokość 3 mm, średnica 7 mm); Trzecia warstwa zawiera kanał wlotowo-mieszający, który rozchodzi się przed wstrzyknięciem do komory peryfuzyjnej (2 mm szerokości, 19 mm długości i 500 μm wysokości) w celu optymalizacji wydajności mieszania przed wejściem do komory peryfuzyjnej. Tworzenie różnych gradientów glukozy, w tym kształtów liniowych, dzwonowych i kwadratowych, może być również tworzone w sieci peryfuzji mikroprzepływowej i jest demonstrowane.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

A. Mikrofabrykacja 3-warstwowego urządzenia do peryfuzji mikroprzepływowej

Protokół główny studni dennej (studnie o głębokości 150 μm)

  1. W razie potrzeby wyczyść wafel za pomocą żyletki. Czyścić acetonem, metanolem i IPA. Wykonuj obróbkę plazmową o mocy 50 watów przez 30 s.
  2. Wirowanie SU8-100 @ 2000 obr./min. [Krok 1: 500 obr./min, 10 s, 100 obr./min, Krok 2: 2000 obr./min, 30 s, 300 obr./s].
    [UWAGA: nie trzymaj wafla pęsetą po zawirowaniu SU8]
  3. Wafelek pieczemy na miękko w temperaturze 65°C przez 20 minut, a w temperaturze 95°C przez 50 minut.
  4. Wafel jest wystawiany na działanie światła UV przez pożądaną maskę. Dawka dla wysokości 150 μm wynosi 650 mJ/cm2.
  5. Po naświetleniu wypiekać wafel w temperaturze 65 °C przez 1 minutę i w temperaturze 95 °C przez 12 minut.
  6. Rozwijaj wafel w wywoływaczu SU8 przez 15 minut.

Główny protokół mikrokanałowy (studnie o głębokości 500 μm)

  1. W razie potrzeby wyczyść wafel za pomocą żyletki. Czyścić acetonem, metanolem i IPA. Wykonuj obróbkę plazmową o mocy 50 watów przez 30 s.
  2. Wirować SU8-2150 @ 1000 obr./min. [Krok 1: 500 obr./min, 10 s, 100 obr./s, Krok 2: 1000 obr./min, 30 s, 300 obr./s].
  3. Wafelek pieczemy na miękko w temperaturze 65°C przez 15 minut i w temperaturze 95°C przez 2 godziny i 30 minut.
  4. Wafel jest wystawiany na działanie światła UV przez pożądaną maskę. Dawka ekspozycji dla wysokości 650 μm wynosi 685 mJ/cm2.
  5. Po naświetleniu piecz wafel w temperaturze 65 °C przez 5 minut i w temperaturze 95 °C przez 35 minut.
  6. Rozwijaj wafel w wywoływaczu SU8 przez 20-30 min.

Przygotowanie roztworu PDMS

  1. Roztwór polidimetylosiloksanu (PDMS) przygotowuje się przez dokładne wymieszanie 10 części elastomeru silikonowego z 1 częścią utwardzacza standardowego zestawu Sylgard 184.
  2. Pęcherzyki powstające w roztworze PDMS podczas procesu mieszania są usuwane za pomocą eksykatora próżniowego.
  3. Pozbawiony pęcherzyków powietrza roztwór PDMS jest powoli dozowany do wzorców SU8 i pustej szalki Petriego dla trzeciej warstwy.
  4. Temperatura płyty grzejnej jest ustawiona na 75 °C i PDMS jest utwardzany w tej temperaturze przez 2 godziny
  5. Wloty, wyloty i studzienki wymienne są wykrawane za pomocą dziurkacza o odpowiednim rozmiarze.
  6. Warstwy są łączone ze sobą na szkiełku podstawowym (rozmiar 0,1 mm) za pomocą ręcznego urządzenia plazmowego.

B. Konfiguracja eksperymentalna

  1. Przepuść 70% etanolu przez mikrourządzenie w celu sterylizacji. Przepłyń wodę DI, aby wypłukać etanol. Przepuścić 50 ml 0,5% BSA przez urządzenie, aby zapobiec niespecyficznej adsorpcji insuliny do ścianek mikrokanałów.
  2. Gradient rampy glukozy i inne powiązane gradienty generowane przez oprogramowanie LabView, które komunikuje się z pompami strzykawkowymi, są testowane, aby upewnić się, że gradienty są stabilne.
  3. 25-30 mysich wysepek inkubowano z 5 μM Fura-2/AM (wskaźnik wapnia, sondy molekularne, CA) i 2,5 μM rodaminy 123 (Rh123, wskaźnik potencjału mitochondrialnego, Sigma, MO) przez 30 minut w temperaturze 37 °C w buforze Krebsa-Ringera (KRB) zawierającym 2 mM glukozy
  4. Mysie wyspy trzustkowe są ostrożnie pipetowane do urządzenia peryfuzyjnego mikroprzepływowego przez port wlotowy.
  5. Sieć mikroprzepływowa jest następnie konfigurowana poprzez podłączenie wlotu do pomp strzykawkowych za pomocą rurki Tygon i łącznika Y, a wylotu do kolektora frakcji. Urządzenie znajduje się na etapie ogrzewania (37 °C) na mikroskopie, a rurka doprowadzająca jest podgrzewana na płycie grzejnej, aby utrzymać temperaturę komory i roztworu na poziomie 37 °C.
  6. Natychmiast po ustawieniu wysepki myszy są peryfuzjowane KRB zawierającym 2 mM glukozy przez 10 minut, a następnie rampą glukozy (2mM 25mM) przez 25 minut.
  7. Obrazy poklatkowe są zbierane i analizowane co 15 sekund przez oprogramowanie SimplePCI. Peryfuzat jest również zbierany co minutę za pomocą kolektora frakcji w celu analizy wydzielania insuliny za pomocą zestawu ELISA.

Reprezentatywne wyniki

Mysie wysepki były pokryte liniowym gradientem 2-25 mM glukozy. Jak pokazano na rycinie 1, napływ wapnia i wydzielanie insuliny są wyzwalane po około 13 minutach perfuzji, co odpowiada 6 mM glukozy. Zmiany potencjałów mitochondrialnych są widoczne wcześniej, zgodnie z oczekiwaniami, po około 11 minutach. Dane te pokazują korzyści płynące z wykorzystania tej sieci mikroprzepływowej do scharakteryzowania fizjologii wysp trzustkowych.

Wapń, mitochondria, wykres insuliny. Analizuje zmiany procentowe i stężenie w czasie.
Rysunek 1. Reakcje fizjologiczne na stymulację komórek wysp trzustkowych.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tradycyjne systemy peryfuzji wysepek (w skali makro i mikro) mają pewne ograniczenia, w tym złożoność konfiguracji i konstrukcji, wysokie wymagania techniczne i trudności w tworzeniu zalecanych przez użytkownika gradientów chemicznych w systemie. Opisany tutaj system peryfuzji mikroprzepływowej pokonuje te ograniczenia dzięki prostej geometrii projektu i wykonania. Co ważniejsze, system ten można zintegrować z podejściem do obrazowania fluorescencyjnego, które stanowi unikalne narzędzie do badania fizjologii wysp trzustk...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez międzynarodowe stypendium AAUW dla Adeoli Adewola, NIH/NCRR (U42RR023245) dla Jose Oberholzera oraz The Chicago Diabetes Project.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Strzykawki 60 mlBD Biosciences
Fura-2 barwnik fluorescencyjnySondy molekularne, Life Technologies
Barwnik fluorescencyjny Rhodamina123Sondy molekularne, Life Technologies
GlukozaSigma-Aldrich
Surowica bydlęca AlbuminaSigma-Aldrich
30" Rurki silikonoweCole-Parmer1/16 x 1/8in
1,5ml Rurki EppendorfFisher Scientific
Y-connectorsCole-Parmer1/16” & 4mm
Złącza strzykawkoweCole-Parmerżeńskie wtyk luer 1/16”
Łączniki prosteCole-Parmer1/16”
Łącznik kątowyCole-Parmer1/16”
Pompa strzykawkowa HavardAparatura
Urządzenie
Płyta grzejnaPMC
TermometrOmega Engineering, Inc.
Kolektor frakcjiGibson
PippettorFisher Scientific
Mikroskop odwróconej epiflorescencjiOlympus CorporationIX71
Urządzenie ze sprzężeniem ładunkowymQImagingRetiga-SRV, Fast 1394
Harvardaperyfuzyjne

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Mohammed, J. S., Wang, Y., Harvat, T. A., Oberholzer, J., Eddington, D. T. Microfluidic device for multimodal characterization of pancreatic islets. Lab Chip. 9, 97-106 (2009).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Microfluidic Perifusion DeviceInsulin Secretion AnalysisCalcium Influx ImagingMitochondrial Potential MeasurementGlucose Gradient ProfilesEyelet Immobilization WellsFluorescent Microscopy SetupFraction Collector SystemSyringe Pump ControlPDMS Device Assembly

Related Articles