$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Wiele badań w dziedzinie neuronauki, jak i w innych dyscyplinach, wiąże się z analizą niewielkich, lecz makroskopowych fragmentów lub przekrojów tkanek, które zostały utrwalone, pobrane na świeżo lub wycięte, lecz utrzymane przy życiu, jak ma to miejsce w preparatach skrawków tkanki mózgowej. Późniejsze badania mikroskopowe tego materiału mogą być problematyczne ze względu na trudności w manipulowaniu próbkami tkanki. Przedstawiona tutaj metoda pozwala na uzyskanie cienkich cięć tkanki za pomocą kriotomu, o grubości wynoszącej od 0,2 do 5,0 mm. Standardowo wykonujemy seryjne cięcia koronalne o grubości 5–10 mikronów z plastrów mózgu o grubości 400 mikronów, wyciętych za pomocą wibratomu. Plastry te są zazwyczaj najpierw wykorzystywane w eksperymentach elektrofizjologicznych, a następnie wymagają analizy mikroskopowej cytoarchitektoniki regionu, z którego uzyskano zapisy. Skonstruowaliśmy proste urządzenie, które umożliwia kontrolowane i powtarzalne przygotowanie oraz pozycjonowanie skrawka tkanki. Urządzenie to składa się z cylindra o długości 5 cm i średnicy 1,2 cm, który służy jako podłoże do zamrażania skrawka. Pierścień ciasno nasuwa się na cylinder, tworząc ścianki wokół skrawka, co pozwala na zanurzenie tkanki w środku do zamrażania (np. OCT). Następnie próbka jest szybko zamrażana za pomocą kruszonego suchego lodu, a powstały dysk można łatwo ustawić do cięcia w kriotomie. Cienkie skrawki można zamontować na powlekłych szkiełkach przedmiotowych poprzez rozmrażanie, co umożliwia przeprowadzenie dalszych badań, takich jak różne metody barwienia, hybrydyzacja in situ lub immunohistochemia, co zostało tutaj zademonstrowane.