Szczegółowe procedury wywoływania noworodkowego uszkodzenia mózgu u myszy P6:
- Myszy w 6. dniu po urodzeniu (P6) są znieczulane poprzez pośrednie chłodzenie na lodzie do momentu utraty reakcji na bodźce bólowe (znieczulenie głębokie).
- Po oczyszczeniu skóry alkoholem wykonuje się nacięcie w linii środkowej brzusznej w przedniej części szyi.
- Pod mikroskopem stereoskopowym uzyskuje się dostęp do rozwidlenia prawej tętnicy szyjnej wspólnej poprzez delikatne odsuniecie mięśnia gnykowego i mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego.
- Powięź wokół pochewki tętnicy szyjnej zostaje usunięta, a proksymalna gałąź wewnętrzna zostaje odizolowana od pobliskiego nerwu błędnego i zwojów współczulnych za pomocą haczyka. Następnie tętnica szyjna wewnętrzna jest koagulowana przy użyciu końcówki do kauteryzacji.
- Po kauteryzacji nacięcie skóry zostaje zaszyte, a zwierzę jest utrzymywane w cieple do pełnego wybudzenia, a następnie przekazywane matce.
- Godzinę po podwiązaniu tętnicy zwierzę jest umieszczane w szczelnej komorze nasycanej azotem do momentu osiągnięcia poziomu 6,0% O2. Następnie zwierzę jest poddawane hipoksji przez 35 min.
- Po ekspozycji na hipoksję mysz regeneruje się na podgrzewaczce (33°C) przez 30 min, a następnie wraca do matki. W celu wywołania uszkodzenia mózgu z połączeniem hipoksji/niedokrwienia oraz infekcji/stanu zapalnego, zwierzęciu wstrzykuje się dootrzewnowo 0,015 ml lipopolisacharydu (LPS, 1 mg/kg).
- Cztery dni po hipoksji/niedokrwieniu myszy są znieczulane poprzez pośrednie chłodzenie na lodzie do momentu utraty reakcji na bodźce bólowe, a następnie poddawane perfuzji solą fizjologiczną, a później 4% paraformaldehydem. Mózgi są usuwane i poddawane krioprotekcji.

Rycina 1. Charakterystyka uszkodzenia mózgu w mysim modelu hipoksyczno-izchemicznym z użyciem barwienia H & E. Widoczna jest martwica ogniskowa (strzałki) w białej substancji mózgu po stronie ipsilateralnej (A) w stosunku do podwiązania tętnicy szyjnej, w porównaniu z białą substancją mózgu po stronie kontralateralnej (B). Martwicę ipsilateralną oraz ogniskowe mikrozawały obserwuje się w hipokampie (C) i wzgórzu (D) w mózgach z uszkodzeniem ipsilateralnej białej substancji mózgu.
Reprezentatywne wyniki i rysunki:
Modele mysie PVL z niedotlenieniem/niedokrwieniem i/lub infekcją/stanem zapalnym uzyskuje się poprzez jednostronne podwiązanie tętnicy szyjnej, a następnie poddanie zwierząt działaniu hipoksji i wstrzyknięcie LPS. Definiujemy te nowe modele mysie jako odpowiednie modele PVL. Badanie neuropatologiczne przekrojów czołowych barwionych hematoksyliną i eozyną (H & E) w obrębie całego przodomózgowia wykazuje ogniskową martwicę w centralnej istocie białej półkuli mózgu po stronie podwiązania tętnicy szyjnej (Ryc. 1A), przy względnym oszczędzeniu neuronów w nadległej korze mózgowej w porównaniu z przeciwległą istotą białą mózgu (Ryc. 1B). W ogniskowo zmartwiczej istocie białej stwierdza się wyraźny wzrost komórkowości, składającej się z makrofagów i astrocytów reaktywnych, co jest charakterystyczne dla ogniskowego PVL u ludzi. W przeciwległej centralnej istocie białej jądra oligodendroglialne są ułożone w pęczki przypominające pęczki włókien; architektura ta jest całkowicie zniszczona przez martwicę ogniskową po stronie ipsilateralnej. Warto zauważyć, że w mózgach z jednostronnym uszkodzeniem istoty białej stwierdzamy również ipsilateralną martwicę w hipokampie (Ryc. 1C) i wzgórzu (ogniskowe mikrozawały) (Ryc. 1D). Ludzkie PVL również nie występuje w całkowitej izolacji od towarzyszących zmian w istocie szarej. Znakiem rozpoznawczym PVL jest względne, choć nie całkowite, oszczędzenie kory mózgowej nad uszkodzoną istotą białą – cecha ta, naszym zdaniem, występuje w opracowanych przez nas modelach mysich.

Rycina 2. Skala ocen od 0 do 5 służąca do oceny uszkodzeń istoty białej przy użyciu MBP lub O1 w mysich modelach leukomalacji okołodomowej.
Nasze modele mysie wykazują cechy PVL zarówno na poziomie fenotypowym, jak i molekularnym. Do oceny uszkodzeń wykorzystaliśmy detekcję immunocytochemiczną podstawowego białka mieliny (MBP) lub antygenu O1, opracowaliśmy standardową skalę od 0 do 5 do oceny stopnia uszkodzenia istoty białej (Rys. 2) oraz scharakteryzowaliśmy patologię istoty białej (Rys. 3). Niedawno w celu zastąpienia wstępnej metody półilościowej wdrożono nieobciążoną analizę stereologiczną. Ponadto, aby zbadać korelacyjne efekty uszkodzenia istoty białej w odniesieniu do wyników funkcjonalnych, przeprowadziliśmy testy behawioralne funkcji motorycznych. Wykazaliśmy, że myszy wykazują wyraźne deficyty motoryczne w dniach P10-21 po zastosowaniu hipoksji/niedokrwienia oraz LPS w dniu P6. Ustaliliśmy kryteria oceny w skali 0-4 w celu zdefiniowania dysfunkcji kończyn przeciwległych u uszkodzonych myszy w dniach P10-21. Typowo zdrowe myszy potrafią szybko przebiec pod kątem 30° (ocena 4) i wspiąć się na nachylenie 45° bez ześlizgiwania się (ocena 3). Myszy z uszkodzeniami otrzymują niższe oceny, co koreluje ze stopniem uszkodzenia istoty białej.

Rycina 3. Charakterystyka uszkodzenia istoty białej za pomocą barwienia na MBP lub O1 oraz struktury mieliny za pomocą mikroskopu elektronowego (EM). Barwienia na MBP i O1 wykazują utratę mieliny w istocie białej mózgu po stronie ipsilateralnej względem ligacji w porównaniu do istoty białej po stronie kontralateralnej. Badanie EM wykazuje zmielinizowane aksony w istocie białej mózgu po stronie kontralateralnej względem ligacji oraz zdegenerowaną tkankę w istocie białej po stronie ipsilateralnej.
Przewidujemy, że opracowanie nowych modeli mysich PVL pozwoli nam na badanie specyficznych mechanizmów uszkodzeń mózgu niedojrzałego o charakterze PVL. Będziemy analizować patogenezę z wykorzystaniem transgenicznych szczepów myszy, aby zbadać rolę poszczególnych cząsteczek oraz ocenić cele neuroprotekcji.