$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Przygotowanie przedoperacyjne
- Zapisz masę ciała każdego królika. Podobnie jak w przypadku wszystkich badań przedklinicznych, należy regularnie monitorować masę ciała zwierząt w celu oceny potencjalnej toksyczności.
- Przed znieczuleniem królika należy napełnić stożkową probówkę o pojemności 50 ml dostępnym w handlu żelem ultradźwiękowym i wirować z prędkością 500 x g przez 30 s; po zakończeniu wirowania w żelu nie powinno być widocznych pęcherzyków.
- Glikopironian podawać podskórnie w dawce 0,1 mg/kg mc., a acepromazynę domięśniowo w dawce 0,75 mg/kg. Odczekaj 15-20 minut, aż środek uspokajający zacznie działać, jednocześnie monitorując parametry życiowe i zachowanie.
nuta: Glikopirolan jest środkiem antycholinergicznym, który zapobiega bradykardii i zmniejsza wydzielanie z dróg oddechowych i przewodu pokarmowego. Acepromazyna jest środkiem uspokajającym, który służy jako premedykacja do znieczulenia.
- Podawać podskórnie 35 mg/kg ketaminy i 5 mg/kg ksylazyny jako środek znieczulający. Jednakże, gdy operator staje się bardziej doświadczony i może szybciej wykonać podawanie wewnątrzprzewodowe, należy zmniejszyć dawki leku do 15 mg/kg ketaminy i 3 mg/kg ksylazyny podskórnie; Skróci to czas znieczulenia i czas potrzebny zwierzęciu do powrotu do zdrowia po znieczuleniu.
- Sprawdzaj i dokumentuj tętno, SPO2, temperaturę, częstość oddechów i kolor błony śluzowej co 15 minut. Nałóż smar do oczu na obie oczy.
nuta: Tylko personel, który przeszedł odpowiednie szkolenie i został zatwierdzony przez IACUC swojej instytucji, powinien podawać lub monitorować znieczulenie. Stosowanie monitora znieczulenia weterynaryjnego może pomóc w uzyskaniu parametrów życiowych i jest zalecane. Monitor anestezjologii weterynaryjnej nie zastępuje jednak konieczności ręcznego sprawdzania zwierzęcia co 15 minut. Zapoznaj się z instrukcjami producenta, aby uzyskać informacje na temat prawidłowego użytkowania monitora weterynaryjnego.
- Sprawdź początek znieczulenia poprzez delikatne uszczypnięcie palca u nogi; królik powinien nie reagować przed kontynuacją.
- Ostrożnie ogolić ogonowy brzuch królika w okolicy trzeciej i czwartej pary strzyków pachwinowych.
- Po usunięciu większości włosów nałóż dostępny bez recepty krem do depilacji na ogolony obszar. Usuń krem po 10 minutach od aplikacji za pomocą wilgotnych ręczników papierowych zwilżonych ciepłą wodą.
nuta: Skóra królika jest bardzo delikatna/wrażliwa. Krem do depilacji należy stosować nie dłużej niż 10 minut. W rzeczywistości bezpieczniej jest wypróbować "miejsce testowe" po 5 minutach i pozostawić je na dłużej tylko wtedy, gdy miejsce testowe wskazuje, że potrzebny jest dłuższy okres czasu.
- Przetrzeć miejsce gazikiem nasączonym alkoholem, aby oczyścić miejsce wstrzyknięcia.
- Umieść królika na grzbiecie w korycie w kształcie litery V wyłożonym kocem z recyrkulacją ciepłej wody i wkładką chłonną.
2. Przygotowanie środka kontrastowego
- Rozpuścić niecelowany odczynnik kontrastowy zgodnie z instrukcjami producenta. Delikatnie pipetować w górę i w dół, aby wymieszać.
nuta: Środek kontrastowy stosowany w tym protokole jest stabilny w temperaturze pokojowej przez 4 - 6 godzin po rozpuszczeniu. Delikatnie kołysać fiolką między każdym pobraniem.
UWAGA: Wymagana objętość roztworu będzie zależeć od liczby kanałów, które mają zostać wstrzyknięte. Królik ma 4 otwory przewodowe na strzyk, a 0,2 ml roztworu wystarcza do wypełnienia jednego drzewa przewodowego dorosłego białego królika nowozelandzkiego (Oryctolaguscuniculus). W ten sposób do jednego gruczołu sutkowego można dostarczyć całkowitą objętość 0,8 ml.
3. Dostawa wewnątrzprzewodowa
- Zlokalizuj odpowiednie strzyki do wstrzyknięcia; zalecane są 3. i 4. para strzyków pachwinowych, ponieważ można je łatwo uwidocznić, gdy zwierzę znajduje się na grzbiecie.
- Załadować 0,2 ml sterylnego 0,9% soli fizjologicznej do 1 ml strzykawki tuberkulinowej Luer-lock za pomocą igły 22 G. Po umieszczeniu soli fizjologicznej w strzykawce należy prawidłowo zutylizować igłę 22 G i zastąpić ją sterylną igłą o rozmiarze 25G. Delikatnie przetrzyj obszar 85% alkoholem izopropylowym na gaziku.
- Trzymając skos igły do góry i strzykawkę równolegle do ciała zwierzęcia, włóż skos igły z boku smoczka i powoli wstrzyknij 0,1-0,2 ml soli fizjologicznej; pozwoli to na lepszą wizualizację otworów kanałowych.
- Umieścić 0,2 ml roztworu do wstrzykiwań w strzykawce tuberkulinowej Luer-lock o pojemności 1 ml.
- Delikatnie chwyć smoczek kciukiem i palcem wskazującym, a następnie lekko go unieś, aby ustawić go do wstrzyknięcia doprzewodowego; lupa oczna do noszenia na ciele może pomóc w wizualizacji otworów przewodowych.
- Utrzymując uniesioną pozycję smoczka, ostrożnie kanulować interesujący nas przewód za pomocą igły o końcówce 25 G.
- Po kannekulacji delikatnie przekręcić strzykawkę Luer-lock na piaście igły infuzyjnej z końcówką, aż do jej zablokowania.
- Podnieść smoczek i powoli wstrzykiwać roztwór, aby zminimalizować potencjalne uszkodzenia spowodowane przez szybko poruszający się płyn w przewodzie; w żadnym momencie nie powinno być oporu podczas wstrzykiwania roztworu.