1. transfekcja miR-143 i miR-506
UWAGA: Używaj rękawiczek lateksowych, okularów ochronnych i fartucha laboratoryjnego podczas wykonywania opisanych eksperymentów. W razie potrzeby należy używać komory bezpieczeństwa biologicznego z włączonym wentylatorem szafy, nie blokując dróg oddechowych ani nie zakłócając laminarnego przepływu powietrza. Zawsze ustawiaj szybę ochronną na odpowiedniej wysokości, zgodnie z opisem producenta.
- Nasiona komórek NSCLC A549 w kolbie T25 cm2/płytce 6/96 dołków w pożywce DMEM/F12K uzupełnionej 10% FBS i 1% penicyliny-streptomycyny (pożywka hodowlana) w kapturze do hodowli tkankowej i inkubować przez noc w temperaturze 37 °C z 5% CO2 w inkubatorze do hodowli tkankowych.
- Zawiesić miR-143 i/lub miR-506 naśladowcy lub zamieszać siRNA ze środkiem transfekcyjnym (2,4 μg miR zmieszano z 14 μl środka transfekcyjnego; patrz tabela materiałów) w 500 μl pożywki do transfekcji i 1,5 ml surowicy i pożywki DMEM/F12K wolnej od antybiotyków przy końcowym stężeniu miRNA 100 nM. Ilość miRNA może wymagać optymalizacji na różnych komórkach i stężeniach. Odpowiednie podejścia obejmują transfekcję komórek o rosnącym stężeniu miRNA (tj. 50-200 nM) oraz ocenę regulacji w dół ekspresji genów będących przedmiotem zainteresowania.
- Wyjąć pożywkę hodowlaną z kolby/płytki i przemyć raz 1x PBS.
- Dodać kompleksy miRNA/czynnika transfekcyjno-mieszającego i inkubować w temperaturze 37 °C z 5% CO2 przez 6 godzin (wielkość kolby określa dodaną objętość inkubacji).
- Zastąp pożywkę 4 ml pożywką hodowlaną i inkubuj komórki przez 24 godziny i/lub 48 godzin.
- Zebrać transfekowane komórki przez trypsynizację, dodając 1 ml trypsyny-EDTA do każdej kolby T25 cm2, inkubować przez 5-10 minut w temperaturze 37 °C i dodać 3 ml pożywki hodowlanej w celu zebrania komórek. Umieścić zawartość każdej kolby w oddzielnej, oznaczonej probówce o pojemności 15 ml. Praca w kapturze do hodowli tkankowej.
- Wirować przy 751 x g przez 5 minut i usunąć supernatant.
nuta: Należy zachować ostrożność podczas usuwania supernatantu, ponieważ mieszanie probówki może spowodować utratę komórek.
- Dodaj 2 ml 1x PBS i wiruj przez 5 minut przy 751 x g.
- Powtórz kroki 7 i 8 raz, aby usunąć wszelkie ślady podłoża i supernatantu.
nuta: Na tym etapie probówki z próbkami mogą być przechowywane w temperaturze -80 °C lub mogą być natychmiast użyte.
2. Ekstrakcja RNA
- Oczyść obszar roboczy, spryskując 70% alkoholem izopropylowym i roztworem do odkażania RNAzy.
- Ekstrakcję RNA należy przeprowadzić przy użyciu odpowiedniego zestawu RNA (patrz Tabela materiałów).
- Usunąć probówki z temperatury -80 °C i pozostawić do rozmrożenia. Dodaj 300 μl buforu do lizy i pipetuj w górę iw dół, aby przerwać błonę komórkową.
- Dodaj równą objętość 100% ultraczystego etanolu.
- Dobrze wymieszaj i umieść w kolumnie oddzielającej.
- Wirować od 11 do 16 x g przez 30 s i usunąć przepływ.
- Dodać 400 μl buforu płuczącego i odwirować w celu usunięcia buforu.
- Dodać 5 μl DNAzy I z 75 μl buforu do trawienia DNA do każdej próbki i inkubować przez 15 minut.
- Przepłukać próbkę 400 μl buforu przygotowawczego RNA.
- Przemyć 2x buforem do przemywania RNA.
- Dodaj wodę wolną od nukleaz do kolumny, odwiruj, a następnie zbierz RNA.
- Zmierz całkowite stężenie RNA za pomocą spektrofotometru UV.