Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Test ekstrakcji RNA: metoda ekstrakcji RNA z transfekowanych komórek raka płuc miRNA

1.8K wyświetleń

30 kwietnia 2023

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Hossian, A. K. M. N. et al., Analiza kombinatorycznych zabiegów miRNA w celu regulacji cyklu komórkowego i angiogenezy. J. Vis. Exp. (2019).

Ten film opisuje protokół ekstrakcji RNA z transfekowanych komórek raka płuc transfekowanych miRNA. Podejście to można wykorzystać do identyfikacji skojarzonej aktywności leczenia miRNA w zatrzymywaniu cyklu komórkowego i angiogenezie.

Protokół

1. transfekcja miR-143 i miR-506

UWAGA: Używaj rękawiczek lateksowych, okularów ochronnych i fartucha laboratoryjnego podczas wykonywania opisanych eksperymentów. W razie potrzeby należy używać komory bezpieczeństwa biologicznego z włączonym wentylatorem szafy, nie blokując dróg oddechowych ani nie zakłócając laminarnego przepływu powietrza. Zawsze ustawiaj szybę ochronną na odpowiedniej wysokości, zgodnie z opisem producenta.

  1. Nasiona komórek NSCLC A549 w kolbie T25 cm2/płytce 6/96 dołków w pożywce DMEM/F12K uzupełnionej 10% FBS i 1% penicyliny-streptomycyny (pożywka hodowlana) w kapturze do hodowli tkankowej i inkubować przez noc w temperaturze 37 °C z 5% CO2 w inkubatorze do hodowli tkankowych.
  2. Zawiesić miR-143 i/lub miR-506 naśladowcy lub zamieszać siRNA ze środkiem transfekcyjnym (2,4 μg miR zmieszano z 14 μl środka transfekcyjnego; patrz tabela materiałów) w 500 μl pożywki do transfekcji i 1,5 ml surowicy i pożywki DMEM/F12K wolnej od antybiotyków przy końcowym stężeniu miRNA 100 nM. Ilość miRNA może wymagać optymalizacji na różnych komórkach i stężeniach. Odpowiednie podejścia obejmują transfekcję komórek o rosnącym stężeniu miRNA (tj. 50-200 nM) oraz ocenę regulacji w dół ekspresji genów będących przedmiotem zainteresowania.
  3. Wyjąć pożywkę hodowlaną z kolby/płytki i przemyć raz 1x PBS.
  4. Dodać kompleksy miRNA/czynnika transfekcyjno-mieszającego i inkubować w temperaturze 37 °C z 5% CO2 przez 6 godzin (wielkość kolby określa dodaną objętość inkubacji).
  5. Zastąp pożywkę 4 ml pożywką hodowlaną i inkubuj komórki przez 24 godziny i/lub 48 godzin.
  6. Zebrać transfekowane komórki przez trypsynizację, dodając 1 ml trypsyny-EDTA do każdej kolby T25 cm2, inkubować przez 5-10 minut w temperaturze 37 °C i dodać 3 ml pożywki hodowlanej w celu zebrania komórek. Umieścić zawartość każdej kolby w oddzielnej, oznaczonej probówce o pojemności 15 ml. Praca w kapturze do hodowli tkankowej.
  7. Wirować przy 751 x g przez 5 minut i usunąć supernatant.
    nuta: Należy zachować ostrożność podczas usuwania supernatantu, ponieważ mieszanie probówki może spowodować utratę komórek.
  8. Dodaj 2 ml 1x PBS i wiruj przez 5 minut przy 751 x g.
  9. Powtórz kroki 7 i 8 raz, aby usunąć wszelkie ślady podłoża i supernatantu.
    nuta: Na tym etapie probówki z próbkami mogą być przechowywane w temperaturze -80 °C lub mogą być natychmiast użyte.

2. Ekstrakcja RNA

  1. Oczyść obszar roboczy, spryskując 70% alkoholem izopropylowym i roztworem do odkażania RNAzy.
  2. Ekstrakcję RNA należy przeprowadzić przy użyciu odpowiedniego zestawu RNA (patrz Tabela materiałów).
  3. Usunąć probówki z temperatury -80 °C i pozostawić do rozmrożenia. Dodaj 300 μl buforu do lizy i pipetuj w górę iw dół, aby przerwać błonę komórkową.
  4. Dodaj równą objętość 100% ultraczystego etanolu.
  5. Dobrze wymieszaj i umieść w kolumnie oddzielającej.
  6. Wirować od 11 do 16 x g przez 30 s i usunąć przepływ.
  7. Dodać 400 μl buforu płuczącego i odwirować w celu usunięcia buforu.
  8. Dodać 5 μl DNAzy I z 75 μl buforu do trawienia DNA do każdej próbki i inkubować przez 15 minut.
  9. Przepłukać próbkę 400 μl buforu przygotowawczego RNA.
  10. Przemyć 2x buforem do przemywania RNA.
  11. Dodaj wodę wolną od nukleaz do kolumny, odwiruj, a następnie zbierz RNA.
  12. Zmierz całkowite stężenie RNA za pomocą spektrofotometru UV.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
A549 Komórki niedrobnokomórkowego raka płucKontroler ATCC (Kontroler TATCC CCL-185
Tłumik Ambion Kontrola negatywna nr 1 siRNAAmbionZobacz materiał AM4611
has-miR-143-3p mimik miRNAAbmMCH01315
has-miR-506-3p mimik miRNAAbmMCH02824
Płodowa surowica bydlęca (FBS)Fisher Naukowy10438026
Sól fizjologiczna buforowana fosforanem hyklonu (PBS)Fisher NaukowySH30256FS
DMEM 4,5 g/L glukozy, bez pirogronianu sodu, z L-glutaminąFirma VWRVWRL0100-0500
Invitrogen UltraPure Woda destylowana wolna od DNaz/ RNazInvitrogen10-977-015
Zestawy Quick-RNABadania ZymoCzynnik R1055
Etanol, absolutny (200 dowodów), klasa biologii molekularnej,Odczynniki biologiczne FisherBP2818500
-80 °C ZamrażarkaFirma VWRVWR40086A
Kropla nanoThermo ScientificNanoDrop jeden C
Płytka 96-dołkowaCELLTREAT Naukowy50-607-511
Penicylina-streptomycyna 10/10Antlanta BiologicalsZobacz materiał B21210
Inkubator CO2Thermo ScientificHERAcell 150i
DNAZABadania ZymoE1010
Mieszanka odżywcza F-12K (Kaighn's Mod.) z L-glutaminą, CorningCorning45000-354
Płodowa surowica bydlęca - PremiumAntlanta BiologicalsS11150
Matchine wirówka z kontrolowaną temperaturąThermo ScientificZobacz materiał ST16R
Mikrowirówka matchine z kontrolowaną temperaturąEppendrofZobacz materiał 5415R
powiedział: powiedział:

Tagi

Transfekcja miRNAlizy kom rekwytr canie etanolemtraktowanie DNazoczyszczanie RNAprotok wirowaniaanaliza qPCRanaliza mikromacierzy