Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.
1. Test ksenoprzeszczepu danio pręgowanego
UWAGA: To techniczne podejście jest przedstawione jako schemat (Rysunek 1).
- Przygotowanie odczynników podstawowych
- Przygotuj 1 l 30x roztworu Danieau: 1740 mM NaCl, 21 mM KCl, 12 mM MgSO4•7H2O, 18 mM Ca(NO3)2 i 150 mM HEPES. Dostosować pH buforu do 7,6 za pomocą pH-metru.
- Przygotować 1% (50x) roztwór trykainy: Rozpuść 20 mg metanosulfonianu etylu 3-aminobenzoesanu (trikainy) w 2 ml wody destylowanej.
- Przygotować 1% roztwór fenolu Red-PBS: Dodać 2 μl roztworu soli sodowej czerwieni fenolowej do 198 μl wysterylizowanego roztworu PBS w probówce o pojemności 1,5 μl.
- Przygotuj 3% metylocelulozy: Dodaj 3 g metylocelulozy do 100 ml 1x roztworu Danieau.
- Produkcja i inkubacja ikry danio pręgowanego
- Oddziel jedną samicę i jednego samca danio pręgowanego w zbiorniku wypełnionym sterylizowaną promieniami UV i przefiltrowaną wodą z kranu o temperaturze 28,5 °C w ciemności. Po 24 godzinach separacji wymieszaj ryby obu płci, aby rozpocząć krycie. Przenieść zapłodnione jaja ze zbiornika krycia na szalkę Petriego zawierającą 5 ml świeżego roztworu Danieau.
- Umyj jajka trzy razy 5 ml roztworu Danieau. Do umycia ostrożnie odessać jaja pipetą i przenieść do 5 ml świeżego roztworu. Inkubować przez 8 godzin w temperaturze 28,5 °C.
- Po 8 godzinach inkubacji w roztworze Danieau zmienić roztwór na Danieau zawierający 0,03% 1-fenylo-2-tiomocznika (PTU) w celu zahamowania pigmentacji. Sortuj nieprzezroczyste jaja (niezapłodnione lub zawierające nierozwinięte zarodki), aby zapobiec zakażeniu.
- Dechorionacja zarodka
- 24 godziny po zapłodnieniu (HPF) Dechorionate zarodki danio pręgowanego za pomocą ostrych kleszczy. Inkubować wylęgające się zarodki w roztworze Danieau z 0,03% PTU w temperaturze 28,5 °C do 48 hpf.
- Przygotowanie komórek poddanych działaniu związków chemicznych
- Nasiona komórek A549 w ilości 20 000 komórek/cm,2 w 25 cm, kolby hodowlane. Po 24 godzinach od wysiewu dodawać związki (tutaj OT48 w temperaturze 50 μM i/lub A1210477 w temperaturze 20 μM) przez 24 godziny w inkubatorze w temperaturze 37 °C i 5% CO2 .
- Ustal czas leczenia dla każdego związku, aby utrzymać żywotność komórek, ale zaangażować je w śmierć komórki. Ten punkt czasowy musi być indywidualnie ustalony na podstawie żywotności komórki, morfologii i markerów molekularnych.
- Na 2 godziny przed zakończeniem zabiegu wybarwić komórki 4 μM barwnika fluorescencyjnego CM-Dil w temperaturze 37 °C i 5% CO2 . Po 2 godzinach inkubacji trypsynizować komórki 0,05% trypsyną-EDTA, a przed wstrzyknięciem rozcieńczyć 106 komórek w 50 μl roztworu fenolu Red-PBS.
- Mikroiniekcja komórek nowotworowych w celu wytworzenia ksenoprzeszczepu
- Znieczulenie danio pręgowanego w 0,02% roztworze tricainy przez 5 minut, aż osiądą na płytce agarowej.
- Pociągnij szklaną kapilarnę o średnicy zewnętrznej 1,0 mm (OD)) za pomocą ściągacza do mikropipet (Ustawienia programu: P: 300, Ciepło: 260, Ciągnięcie: 60, VEL: 50 i Czas: 200). Przeciąć mikrokapilę strzykawką, aby uzyskać ostrą krawędź. Załaduj mikrokapilary 20 μl roztworu komórki/fenolu Red-PBS. Ustawić ciśnienie i czas wtrysku, aby dozować 2 nL na wstrzyknięcie.
- Wstrzyknąć 100–200 komórek do woreczka żółtkowego, wstrzykując od 6 do 10 nL w 3 do 5 wstrzyknięciach. Po wstrzyknięciu należy pozostawić ryby do regeneracji przez 10 do 30 minut w 5 ml świeżego roztworu Danieau zawierającego roztwór PTU. Ryby należy wysłać na 24-dołkowe płytki z 1 ml roztworu Danieau zawierającego roztwór PTU i inkubować przez 72 godziny w temperaturze 28,5 °C.
- Po 72 godzinach inkubacji znieczulić ryby w 0,02% roztworze tricainy i unieruchomić na szkiełku z kroplą 3% metylocelulozy. Wykonaj 5-krotne zdjęcia za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej o długości fali od 620 do 750 nm.
- Określ ilościowo rozmiar guzów fluorescencyjnych za pomocą oprogramowania ImageJ. Wybierz menu "Analizuj | Środek". Zapisz wartości odpowiadające sygnałowi fluorescencyjnemu i analizuj je za pomocą oprogramowania statystycznego do graficznej reprezentacji.