Artykuł metodologiczny

Generowanie komórek dendrytycznych pochodzących ze szpiku kostnego: metoda generowania komórek dendrytycznych ze szpiku kostnego myszy

30 kwietnia 2023

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Source:Nguyen, H. D., et al. Platforma transplantacji szpiku kostnego w celu zbadania roli komórek dendrytycznych w chorobie przeszczep przeciwko gospodarzowi. J. Vis. Exp.. (2020).

Ten film opisuje protokół generowania komórek dendrytycznych - kluczowych komórek prezentujących antygen, które aktywują limfocyty T - ze szpiku kostnego dorosłej myszy.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Generuj komórki dendrytyczne pochodzące ze szpiku kostnego (BM-DCs).

  1. Odizoluj szpik kostny od kości udowych i piszczelowych myszy WT lub czynnika B (fB)-/- na tle B6. Krótko mówiąc, zbierz kość piszczelową i kość udową z obu nóg za pomocą kleszczy i nożyczek. Umieść je w lodowatym RPMI zawierającym 1% FCS i 100 U/ml penicyliny/streptomycyny i 2 mM L-glutaminy (1% RPMI) w stożkowych probówkach o pojemności 50 ml. Dokładnie oczyść kość udową i piszczelową, usuwając wszystkie tkanki mięśniowe za pomocą kleszczy i nożyczek. Przenieść kość udową i piszczelową z probówek stożkowych o pojemności 50 ml na szalkę Petriego o średnicy 92 mm zawierającą 1% RPMI. Za pomocą nożyczek odetnij końce kości udowej lub piszczelowej. Napełnij probówkę o pojemności 50 ml 25 ml pożywki 1% RPMI 1640. Użyj tego, aby napełnić strzykawkę o pojemności 3 ml dołączoną do igły 26 G 3 ml 1% RPMI. Włożyć tę strzykawkę do kości i wcisnąć tłok, aby wypłukać szpik kostny (BM) z jamy do probówki zbiorczej z 1% RPMI (~3 ml/kość). Wiruj komórki w temperaturze 800 x g przez 5 minut.
  2. Zawiesić osad w 5 ml buforu lizującego ACK w celu lizy krwinek czerwonych. Inkubować zawiesinę komórkową przez 5 minut na lodzie. Dodać 10 ml 1% RPMI do zawiesiny komórek, aby zatrzymać lizę i odwirować przy 800 x g przez 5 minut w temperaturze 4 °C. Odrzucić supernatant.
  3. Zawiesić osady komórkowe w 10 ml pożywki hodowlanej (RPMI 1640 zawierającej 10% FBS, 100 U/ml penicyliny/streptomycyny, 2 mM l-glutaminy i 50 mM β-merkaptoetanolu) i dostosować objętość, aby osiągnąć końcowe stężenie 2 x 106 komórek/ml.
  4. Dodać 20 ng/ml czynnika stymulującego tworzenie kolonii granulocytów i makrofagów (GM-CSF) do zawiesiny komórkowej. Hodować komórki szpiku kostnego na szalkach Petriego o wymiarach 100 x 15 mm w temperaturze 37 °C w 5% CO2 przez 6 dni.
  5. Zastąp połowę trwających pożywek hodowlanych (około 5 ml) świeżymi pożywkami zawierającymi 40 ng/mL GM-CSF w dniu 3.
  6. Podgrzej pożywkę hodowlaną w łaźni wodnej w temperaturze 37 °C. Zebrać około 5 ml pożywki z szalek do hodowli szpiku kostnego. Wirować przy 800 x g przez 5 minut w temperaturze 4 °C. Odrzucić supernatant. Zawiesić osad komórkowy w pożywce hodowlanej o pojemności 5 ml zawierającej 40 ng/ml gm-csf.
  7. Dodać 25 μg/ml lipopolisacharydu (LPS) do pożywki w 6. dniu hodowli, aby dojrzeć BM-DC. Zapisz podwielokrotność 2 x 106 komórek, aby określić skuteczność różnicowania DC za pomocą cytometrii przepływowej.
  8. Zbierz dojrzałe BM-DC: Użyj podnośników komórkowych, aby delikatnie zeskrobać DC z szalek Petriego. Zebrać wszystkie zawiesiny komórek w stożkowych probówkach o pojemności 50 ml. Odwirować przy 800 x g, przez 5 minut w temperaturze 4 °C. Odrzucić supernatant. Umyj granulki komórek 3x 50 ml lodowatego PBS. Zaoszczędź około 2 x 106 BM-DC do immunologicznej analizy fenotypu za pomocą cytometrii przepływowej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
10 razy więcej kanałów na sekundęFisher NaukowyZobacz materiał BP3994Bufor MACS
B6 fB-/- myszyUniwersytet Środkowej FlorydyNa miejscuAdresatów
Klasa B6. Myszy Ly5.1 (CD45.1 + )Rzeka KarolaOkręg wyborczy 546Darczyńców
Myszy BALB/cRzeka Karola28Biorcy przeszczepów
Myszy C57BL/6Rzeka Karola27 Rozdział 27Darczyńcy/Biorcy
Płodowa surowica bydlęca (FBS)System badawczo-rozwojowy Atlanta BilogicalsZobacz materiał D17051Hodowla komórkowa
Lipopolisacharyd (LPS)Millipore SigmaL4391-1MGDC dojrzałe
Inkubator New Brunswick Galaxy 170REppendorfGalaktyka 170 RHodowla komórkowa
Penicilina + streptomycynaPenicylina / Streptomycyna (10 000 jednostek penicyliny / 10 000 mg / ml paciorkowca)GIBCO (Przedsiębiorstwo GIBCO)Numer katalogowy: 15140media
Silnik RPMI 1640Thermo Fisher NaukowyNumer katalogowy 11875-093media
TGL powiedział:

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Bone Marrow Dendritic CellsDendritic Cell GenerationMouse Bone MarrowGM CSF DifferentiationLPS ActivationACK Lysis BufferBone Marrow IsolationCell Culture ProtocolAntigen Presenting CellsProgenitor Cells

Powiązane artykuły