1. Izolacja, sortowanie i kultura HSPC
- Wirować w 1–2 x 107 komórek jednojądrzastych przez 5 minut przy 350 x g i ponownie zawiesić w 50 μl buforu FACS. Zawiesić osad komórkowy w 100 μl roztworu barwiącego anty-CD3 (rozcieńczenie przeciwciała anty-CD w buforze FACS w stosunku 1:100). Przenieść komórki do probówki do mikrowirówki.
UWAGA: Podczas sortowania z komórkami >2 x 107 należy odpowiednio zwiększyć objętość mieszaniny przeciwciał i buforu FACS.
- Przygotować 50 μl 2x mieszanki barwiącej HSC zgodnie z recepturą przedstawioną w Tabeli 1
- Zmieszać 50 μl roztworu komórkowego z przygotowaną mieszanką barwiącą HSC i inkubować komórki przez 15 minut w temperaturze pokojowej (RT) lub przez 1 godzinę na lodzie w celu związania przeciwciał.
- Przemyć komórki, dodając 1 ml buforu FACS i osadu, wirując przez 5 minut przy 350 x g.
- Ponownie zawiesić komórki w 300 μl buforu FACS i przefiltrować zawiesinę komórek przez 35 μm rurkę polistyrenową o pojemności 5 ml z sitkiem o pojemności 5 ml, aby usunąć grudki komórek przed sortowaniem komórek aktywowanym fluorescencją (FACS).
- Przygotować 25 ml pożywki hodowlanej HSPC, składającej się z 1x pożywki SFEM uzupełnionej 100 ng/ml SCF, 100 ng/ml Flt3, 50 ng/ml TPO, 10 ng/ml IL-3, 20 ng/mL IL-6 i 100 ng/ml preparatu antybiotykowego (patrz tabela materiałów).
- Wypełnij 384-dołkową płytkę do hodowli komórkowych 75 μl pożywki hodowlanej HSPC w każdym dołku.
UWAGA: Aby zapobiec parowaniu pożywki w dołkach zewnętrznych, należy napełnić zewnętrzne studzienki 75 μl sterylnej wody lub PBS i nie używać tych studzienek do sortowania komórek.
- Sortowanie pojedynczych HSPC
- Ustaw bramki do sortowania HSPC w oparciu o niebarwioną kontrolę (pojedynczo posortowane HSC) i 10 000 komórek z barwionej próbki. Reprezentatywny wynik dla ustawiania bramek przedstawiono na rysunku 1. Bramkowanie pojedynczych komórek poprzez narysowanie bramki wokół liniowej frakcji wysokości FSC w funkcji obszaru FSC. Użyj niebarwionej frakcji kontrolnej, aby narysować bramkę dla frakcji rodowodu. Narysuj bramki dla komórek CD34 + i dalej scharakteryzuj ten podzbiór, ustawiając specyficzną bramkę dla komórek CD38-CD45RA.
- Załaduj płytkę 384-dołkową na maszynę FACS i posortuj pojedyncze komórki.
UWAGA: Jeśli ma to zastosowanie do maszyny FACS, włącz opcję zachowania danych sortowania indeksów, aby umożliwić ponowne śledzenie posortowanych komórek.
- Hodowla pojedynczo sortowanych HSC
- Bezpośrednio przenieść płytkę 384-dołkową do nawilżonego inkubatora o temperaturze 37 °C z 5% CO2,
nuta: Aby zapobiec parowaniu podczas hodowli, owiń płytkę hodowlaną 384 dołków (z pokrywką) przezroczystą folią polietylenową.
- Trzymaj płytkę 384 dołków w inkubatorze przez 3-4 tygodnie, aż pojawią się widoczne klony. Reprezentatywne obrazy kultury klonalnej przedstawiono na rycinie 2. W zależności od stanu materiału wejściowego, 5%–30% posortowanych komórek rozszerzy się klonalnie.
pkt.
| przeciwciało | objętość [μL] |
| BV421-CD34 | 5 |
| FITC-Lineage mix (CD3/14/19/20/56) | 5 |
| PE-CD38 | cyfra arabska |
| Pakiet APC-CD90 | 0,5 |
| PerCP/Cy5.5 - CD45RA | 5 |
| PE/CY7- CD49f | 1 |
| FITC -CD16 | 1 |
| FITC-CD11 | 5 |
| Bufor FACS | 25,5 |
Tabela 1: Mieszanka sortowania HSC.Pokazano tabelę wskazującą rozcieńczenia przeciwciał stosowanych do sortowania HSC.
2. Zbieranie klonów HSPC
- Po 4 tygodniach hodowli określ, które studnie mają zbieg 30% lub wyższy.
- Wstępnie napełnij (dla każdego wyrostka klonalnego) 1,5 ml mikroprobówek 1 ml 1% BSA w PBS i oznacz probówkę zgodnie z odpowiednim dołkiem.
- Wstępnie zwilż końcówkę pipety 1% BSA w PBS, aby zminimalizować liczbę komórek przyklejających się do końcówki pipety.
- Pipetować w górę/w dół pożywki w studzience gwałtownie (co najmniej 5 razy) za pomocą pipety o pojemności 200 μl (ustawionej na 75 μl) i zeskrobać dno studzienki, aby poluzować komórki w studzience, a następnie zebrać zawiesinę komórek w oznakowanej mikroprobówce odpowiadającej studzience.
- Pobrać 75 μl świeżego 1% BSA do PBS i powtórzyć pipetowanie w studzience, aby zapewnić maksymalny wychwyt komórek.
UWAGA: Komórki hodowane klonalnie mogą przyklejać się do dna studni. Sprawdź studzienki za pomocą standardowego mikroskopu ze światłem odwróconym, aby upewnić się, czy wszystkie komórki zostały zebrane.
- Jeśli wszystkie studzienki o zbiegu >30% zostały zebrane, umieść płytkę 384 dołków z powrotem w inkubatorze. Kultury klonalne mogą rozmnażać się do 5 tygodni.
- Wirować zawiesinę komórek przez 5 minut w temperaturze 350 x g. Powinna być widoczna mała granulka.
- Ostrożnie usunąć wszystko, z wyjątkiem około 5 μl supernatantu. Granulki komórkowe można zamrażać w temperaturze -20 °C i przechowywać przez wiele miesięcy przed izolacją DNA.