Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Ortotopowy przeszczep guza homograftu: technika generowania mysich modeli guza trzustki

2.8K wyświetleń

⸱

30 kwietnia 2023

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: An, X. et al.Immunofenotypowanie homograftu ortotopowego (syngenecznego) mysiego pierwotnego gruczolakoraka przewodowego trzustki KPC za pomocą cytometrii przepływowej. J. Vis. Exp. (2018)

Film wyjaśnia krokową metodę chirurgiczną do ortotopowego wszczepienia fragmentu guza od dawcy nowotworowego do trzustki myszy z nienowotworowym biorcą w celu rozwoju raka trzustki. Ortotopowo wszczepiony PDAC może dokładniej uchwycić mikrośrodowisko tkanek ludzkiego raka trzustki niż konwencjonalne modele podskórne (SC).

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Przygotowanie do przeszczepu guza

  1. Pomieszczenia dla zwierząt
    1. Zdobądź generyczne myszy C57BL/6 od komercyjnego dostawcy hodowlanego.
    2. Myszy domowe (5) w indywidualnych wentylowanych klatkach w następujących warunkach: Temperatura: 20–26 °C; wilgotność 30–70%; cykl oświetlenia: 12 godzin światła i 12 godzin ciemności.
    3. Używaj ściółki z kolb kukurydzy, która jest zmieniana co tydzień.
    4. W przypadku diety należy zapewnić sterylizowany promieniowaniem suchy granulat żywności przez cały okres badania.
    5. Jeśli chodzi o wodę, zapewnij zwierzętom swobodny dostęp do sterylnej wody pitnej.
  2. Przygotowanie fragmentu guza dawcy
    1. Zacznij od monitorowania masy ciała (BW), poprzez ważenie za pomocą wagi, oraz objętości guza (TV), poprzez pomiar suwmiarkowy, myszy dawców z nowotworem.
    2. Gdy telewizja osiągnie 500–1200 mm3, poddaj zwierzę eutanazji w kapturze chroniącym przed zagrożeniem biologicznym zgodnie z protokołem.
    3. Wysterylizuj skórę wokół guza za pomocą wacików jodoforowych.
    4. Chirurgicznie usunąć guz zgodnie z protokołem.
    5. Sprawdź wzrokowo i palpacyjnie pod kątem obecności wyczuwalnych palpacyjnie guzów przed zakończeniem.
    6. Aby zakończyć terminację, najpierw poddaj myszy eutanazji zgodnie z zatwierdzonym protokołem, otwórz brzuch i wizualnie zbadaj trzustkę pod kątem guzów.
    7. Odetnij guz za pomocą operacji po śmierci i dodaj go do zimnego PBS. Umieść wszystkie zwierzęta w czystej, nienaładowanej, półprzezroczystej komorze eutanazyjnej ze specjalną pokrywą z portem do dostarczania dwutlenku węgla, który ma być użyty.
    8. Odprowadzać gaz do komory z natężeniem przepływu, które powoduje szybką utratę przytomności przy minimalnym stresie zwierzęcia. Optymalne natężenie przepływu dla CO2 powinno wynosić około 2–2,5 l/min.
    9. Obserwuj wzrokowo każde zwierzę podczas procedury eutanazji, aby upewnić się, że wszystkie zwierzęta otrzymują odpowiednie stężenie gazu i nie odzyskują przytomności podczas procedury eutanazji.
    10. Utrzymuj przepływ gazu przez co najmniej 1 minutę po pozornej śmierci klinicznej, aby zminimalizować możliwość wyzdrowienia zwierzęcia (jeśli ma bezdech, ale nie jest martwe).
    11. Usuń sąsiednie tkanki nienowotworowe. Oczyszczony guz można szybko sfotografować.
      Umieść tkanki nowotworowe w RPMI-1640 i trzymaj na lodzie przed dysocjacją.
      nuta: Tusze zwierzęce są pakowane w worki i przechowywane w odpowiedniej zamrażarce w oczekiwaniu na wyjęcie.
    12. Umieścić guz na szalce Petriego zawierającej 20 ml PBS (przed eutanazją zwierząt należy wstępnie schłodzić pożywkę lub bufor do temperatury 4 °C).
    13. Jeśli krew jest zanieczyszczająca, przenieś guz na inną szalkę Petriego i umyj guz PBS.
    14. Przeciąć guz na pół, usuwając dodatkową skórę, naczynia, zwapnienia i/lub martwicę.
    15. Wybierz tylko nienaruszone fragmenty guza i umieść je w sterylnej probówce wirówkowej o pojemności 50 ml i dodaj 20 ml PBS, a następnie przetransportuj probówkę do oddzielnego pomieszczenia dla zwierząt w celu badań farmakologicznych.

2. Ortotopowa implantacja trzustki

  1. Znieczulenie i analgezja
    1. Użyj 2 ml ketaminy do wstrzykiwań i 0,42 ml ksylazyny do wstrzykiwań (20 mg/ml) zmieszanych z 5,91 sterylną wodą do wstrzykiwań lub solą fizjologiczną w objętości dawki 0,06–0,1 ml/20-25 g masy ciała.
      UWAGA: Zgodnie z dobrostanem zwierząt analgezja jest konieczna zarówno przed, jak i po operacji. 0,05–0,1 mg buprenorfiny/kg, SC. Pierwsza dawka jest podawana przed operacją, a następnie dozowana 3 razy co 4 godziny po operacji w sposób ciągły.
  2. Operacja chirurgiczna w celu implantacji ortotopowej
    1. Znieczulenie myszy poprzez wstrzyknięcie domięśniowe (IM). Znieczulić zwierzę biorcy 5% izofluranem, który jest utrzymywany przez stożek nosowy w poziomie 1%. Zwierzę zacznie się relaksować, tracąc odruch prostowania i ostatecznie stanie się nieruchome. Na tej głębokości znieczulenia mogą być łatwo obudzone przez bolesne bodźce; Pozwól, aby znieczulenie się pogłębiło, aż takie reakcje na ból znikną.
    2. Po całkowitym znieczuleniu zwierząt zamocuj myszy na tablicy doświadczalnej w odpowiedniej pozycji bocznej.
    3. Utrzymuj myszy we właściwej pozycji bocznej. Zdezynfekuj skórę wokół śledziony jodem, a następnie odjoduj 75% alkoholem etylowym.
    4. Znajdź środkowy punkt śledziony i wykonaj 1 cm pionowe nacięcie na brzuchu, aby odsłonić śledzionę.
    5. Delikatnie wyciągnij część tkanki trzustki pod śledzioną za pomocą pęsety z płaską końcówką i zszyj fragment guza homoprzeszczepu myszy z myszy nasiennej na trzustce myszy biorcy za pomocą wchłanialnego szwu chirurgicznego 9-0.
    6. Zamknij brzuch jedwabnym szwem 6-0 podwójnym szwem. Osiągnij homeostazę przez kompresję.
    7. Po zakończeniu implantacji guza, jeśli nie wystąpi krwawienie ani wyciek tkanki nowotworowej, należy trzymać zwierzęta w ciepłej klatce.
    8. Monitorować zwierzę do momentu, gdy odzyska przytomność wystarczającą do utrzymania pozycji leżącej mostka; po całkowitym wyzdrowieniu ze znieczulenia należy je umieścić w pomieszczeniu dla zwierząt. Monitoruj myszy z guzem, badając palpacyjnie brzuch w pobliżu śledziony i wybierz myszy z guzami ortotopowymi.

3. Monitorowanie zdrowia myszy z nowotworami

  1. Codziennie sprawdzaj spożycie wody i żywności.
  2. Zbadaj wygląd myszy pod kątem niezadbanej sierści, grudek, cienkiej skóry, nieprawidłowego oddechu lub wodobrzusza.
  3. Zbadaj palpacyjnie brzuch, aby sprawdzić, czy nie ma spontanicznych guzów na wątrobie lub śledzionie.
  4. Waż myszy co tydzień za pomocą wagi.
  5. Jeśli zaobserwuje się którykolwiek z następujących objawów klinicznych, myszy są poświęcane w celu pobrania próbki i przeprowadzenia sekcji zwłok: utrata masy ciała >20%; upośledzenie ruchomości (niezdolność do jedzenia lub picia); niezdolność do normalnego poruszania się z powodu znacznego wodobrzusza i powiększonego brzucha; wysiłek w oddychaniu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Wymazy jodoforoweCodzienny zakup w aptece
Waciki nasączone alkoholemCodzienny zakup w aptece
Pbs Klon SH30256.01 50 ml
Jednorazowe, sterylne skalpeleJin zhong Zobacz materiał J12100 11#
Linia suwmiarki z noniuszem Studylog-Data Sylvac Numer katalogowy: 926.6721Linia danych suwmiarki z noniuszem
Zacisk Sylvac 910.1502.10 Sylvac S-Cal pro
nożyczki do oczu i pęseta Jin zhong Y00030 Nożyczki do oczu 10 cm
Zestaw do dysocjacji guza Miltenyi Miltenyi Numer katalogowy: 130-096-730
nożyczki do oczu i pęseta Jin zhong JD1060 Pęseta do oczu 10 cm z ząbkami
nożyczki do oczu i pęseta SAS3119
nożyczki do oczu i pęseta Klon SH30809.01
nożyczki do oczu i pęseta Thermo KLCS-288 4 °C
nożyczki do oczu i pęseta Metter Toledo AL204 0-100 g
100x antybiotyk i środek przeciwgrzybiczy
Aparat do znieczuleniaSAS3119
Wiaderko na lód Thermo KLCS-288 4 °C
powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: powiedział:

Przeglądaj więcej artykułów

Implantacja chirurgicznafragment guzaodsłonięcie trzustkiwycięcie śledzionymonitorowanie guzaopieka pooperacyjna