Artykuł metodologiczny

Bezpośrednie ponowne połączenie nerwów szyjnych w celu przywrócenia ruchomości kończyn przednich u myszy

29 sierpnia 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Gao, Z., et al. Mysi model bezpośredniego zespolenia drogą przedrdzeniową do chirurgii krzyżowania się nerwów. J. Vis. Exp. (2021).

Ten film pokazuje przywracanie ruchu kończyn przednich u myszy poprzez bezpośrednie ponowne połączenie nerwu szyjnego. Zaczyna się od myszy ze sparaliżowaną prawą kończyną przednią z powodu przeciętego prawego nerwu C7 w korzeniu nerwowym. Lewy nerw C7 jest przecięty, skierowany w prawo drogą przedrdzeniową i zszyty prawym nerwem C7. Miejsce operacji jest następnie oczyszczane i zamykane.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury z udziałem modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

Wykorzystano ośmiotygodniowe dorosłe samce myszy C57BL/6N.

1. Konfiguracja przedoperacyjna

  1. Upewnij się, że masz odpowiedni zapas autoklawowanych, sterylizowanych narzędzi chirurgicznych, sprzętu, leków przeciwbólowych i leków znieczulających.
  2. Zapewnij odpowiednią przestrzeń roboczą na stole operacyjnym.
  3. Przygotuj stół operacyjny, używając spersonalizowanej chirurgicznej deski piankowej pokrytej pieluchą jako łóżka dla myszy. Przymocuj podkładkę rozgrzewającą do płyty piankowej za pomocą taśmy medycznej pokrytej sterylną gazą.
  4. Twórz zwijacze, zginając igłę do akupunktury za pomocą kleszczy naczyniowych, składając ją na pół, a następnie zginając końcówkę złożonej igły do akupunktury w haczyk. Przymocuj gumowy pasek na końcu igły do akupunktury i użyj pinezki, aby przymocować koniec gumowego paska do płyty piankowej.
  5. Skalibruj mikroskop stereoskopowy; wybierz mikroskop stereoskopowy o odpowiedniej odległości ogniskowania. Zakryj przyciski zoomu/ostrości wysterylizowaną folią aluminiową, aby chirurg mógł je wyregulować podczas operacji. Wysterylizowana folia aluminiowa została umieszczona na przyciskach zoomu/ostrości, dzięki czemu chirurg mógł z niej korzystać w sterylnych rękawiczkach.

2. Znieczulenie i przygotowanie myszy

  1. Zważ mysz i znieczul ją zgodnie z jej masą ciała (izofluran 3%). Upewnij się, że mysz nie reaguje, gdy przestrzenie międzypalcowe jej łapy są ściśnięte, aby potwierdzić głębokość znieczulenia. Przez cały czas trwania zabiegu należy zachować odpowiednią głębokość znieczulenia (1% izofluranu).
  2. Maść okulistyczną nakładać obustronnie na oczy, aby zapobiec podrażnieniu lub wysuszeniu rogówki podczas zabiegu.
  3. Przygotuj miejsce operacji, goląc sierść na szyi i klatce piersiowej za pomocą automatycznej maszynki do strzyżenia. Usuń i wyczyść luźne włosy.
  4. Umieść mysz w pozycji leżącej na podkładce rozgrzewającej pokrytej sterylną gazą. Utrzymuj temperaturę myszy na poziomie 37 °C podczas całej operacji. Przymocuj mysz taśmą medyczną, aby kończyny przednie odwodziły się poziomo i zapobiegały poruszaniu się kończyn tylnych i ogona. Na myszach umieszczono wysterylizowaną jednorazową serwetę chirurgiczną z odpowiednim otworem.

3. Procedura operacyjna

  1. Wstrzyknąć tramadol jako środek przeciwbólowy zapobiegawczy (20 mg/kg, dootrzewnowo lub domięśniowo). Zaznacz poprzeczne nacięcie na górnej krawędzi obojczyka. Użyj trzech cykli naprzemiennego szorowania roztworu do dezynfekcji jodoforu i etanolu w celu dezynfekcji miejsca operowanego. Potwierdź głębokość znieczulenia szczyptą palca u nogi przed zabiegiem.
  2. Pracując pod mikroskopem, wykonaj 4 mm poprzeczne nacięcie wzdłuż znaku za pomocą sterylnego skalpela. W razie potrzeby należy powiększyć nacięcie podczas zabiegu.
  3. Tępo przeprowadź sekcję przez powięź podskórną i zidentyfikuj dolną granicę gruczołu podżuchwowego. Pociągnij gruczoł podżuchwowy do góry, aby odsłonić dół nadobojczykowy i mostek.
    UWAGA: W tym obszarze mogą znajdować się naczynia krwionośne małego kalibru. Elektrokoagulacja może być stosowana w celu zatrzymania krwawienia.
  4. Wykonaj częściowe środkowe nacięcie sternotomii (~4 mm), nacinając mostek od głowy do ogona wzdłuż linii środkowej. Chroń opłucną, serce i naczynia krwionośne podczas sternotomii.
  5. Zidentyfikuj mięsień mostkowo-gnykowy. Delikatnie pociągnij mostek za pomocą dwóch małych, niestandardowych zwijaczy wykonanych z igieł do akupunktury i zidentyfikuj mięsień mostkowo-gnykowy nad tchawicą i przełykiem. Cofnij ten mięsień, aby odsłonić tętnicę szyjną, żyłę szyjną wewnętrzną, nerw przeponowy, nerw błędny, tchawicę i przełyk.
    UWAGA: Delikatnie cofnij mostek, aby uniknąć otwartej odmy opłucnowej. W przeciwieństwie do ludzi, przełyk myszy nie znajduje się za tchawicą, ale przylega do tchawicy po lewej stronie.
  6. Zidentyfikuj lewy splot ramienny. Na bocznej krawędzi lewej żyły szyjnej wewnętrznej wyciągnij powięź i tkankę tłuszczową na zewnątrz, aby odsłonić splot ramienny. Poszukaj górnego pnia, składającego się z nerwów szyjnych lub C5 i C6, które mają trzy gałęzie. Zidentyfikuj środkowy tułów złożony z nerwu C7 i dolnego tułowia złożonego z C8 i nerwów piersiowych lub T1, wzdłuż górnego tułowia aż do ogona myszy.
    UWAGA: Na powierzchni splotu ramiennego znajdują się podłużne naczynia krwionośne. Użyj elektrokoagulacji, aby zapobiec krwawieniu. Oddzielając lewy splot ramienny, należy chronić kanał chylous, aby uniknąć przetoki chylous.
  7. Zbierz lewy nerw C7. Rozciąć przedni i tylny podział środkowego tułowia (nerw C7) dystalnie do poziomu podziału na rdzeń pod obojczykiem i zablokować nerw C7 0,1 ml 2% lidokainy przez miejscową infuzję do pnia nerwowego. Wytnij nerw C7 nożyczkami sprężynowymi Vannas w miejscach jego połączenia ze sznurem bocznym i sznurem tylnym. Przytnij nerw C7 tak, aby długość każdego podziału była podobna.
    UWAGA: Przedni i tylny podział nerwu C7 oraz przedni i tylny podział górnego i dolnego pnia biegną na dużą odległość przed zbiegiem, więc nerw C7 powinien być wystarczająco uwolniony przed resekcją. W rzeczywistości nerw C7 nie zawsze jest podzielony na dwie części; Czasami dzieli się go na trzy działy, a w rzadkich przypadkach nawet na cztery.
  8. Usuń lewą blaszkę brzuszną C6. Ostrożnie chroń nerw przeponowy i odetnij przedni mięsień pochyły na poziomie segmentu C6, aby odsłonić korzeń nerwowy C7. Wytnij małe gałęzie nerwu C7 unerwiającego mięsień przykręgosłupowy za pomocą mikrokleszczy. Delikatnie wyciągnij nerw C7 i ostrożnie wytnij blaszkę brzuszną C6.
    UWAGA: Między przyśrodkową stroną lewej tętnicy szyjnej a boczną stroną przełyku występuje kostna wypukłość. Ta kostna wypukłość to blaszka brzuszna 6. kręgu szyjnego. Mięsień podłużny bocznej krawędzi blaszki brzusznej C6 jest przednim mięśniem pochyłym, a nerw przeponowy biegnie po powierzchni przedniego mięśnia pochyłego.
  9. Zbierz prawy nerw C7. Przeciąć przedni mięsień pochyły po prawej stronie, podobnie jak po lewej stronie, i przeciąć prawy korzeń nerwowy C7 blisko otworu międzykręgowego. Wypreparuj prawy nerw C7 od jego poziomu podziału.
    UWAGA: Ostrożnie przeciąć prawy nerw C7, aby zapobiec uszkodzeniu naczyń krwionośnych pod nerwem.
  10. Przenieś lewy nerw C7.
    1. Usuń częściowo po obu stronach mięśniowy longus colli obok trzonów kręgów. Dosadnie oddziel i rozszerz przestrzeń między tchawicą-przełykiem a trzonem kręgu.
    2. Wyślij na pół składany nylonowy szew 5-0 z prawej strony trzonu kręgu na lewą stronę przez drogę przedrdzeniową.
    3. Połącz lewy nerw C7 rurką infuzyjną i poprowadź nerw na prawą stronę drogą przedrdzeniową.
    4. Delikatnie cofnij tchawicę i przełyk i połącz przedni i tylny podział lewego nerwu C7 z prawym korzeniem nerwowym C7 bez naprężeń za pomocą szwów nylonowych 12-0. Zszyj epineurium wokół nerwów za pomocą 4-5 szwów, aby silnie skoaptyzować nerwy.
      UWAGA: Bardzo ważne jest, aby wybrać plastikową rurkę infuzyjną o odpowiedniej grubości. Zbyt cienka rurka może uszkodzić nerw, a zbyt gruba rurka może uszkodzić tchawicę i przełyk. Ponadto przestrzeń między tchawicą-przełykiem a trzonem kręgu jest przestrzenią w kształcie litery "V", a przecięcie części mięśniowej longus colli może skrócić drogę przenoszenia.

4. Zamknięcie rany

:
  1. Przepłukać ranę sterylną solą fizjologiczną i osuszyć sterylną gazą.
  2. Zszyj mostek i zamknij skórę za pomocą szwów monofilamentowych 5-0.

5. Opieka pooperacyjna

  1. Poczekaj, aż mysz obudzi się ze znieczulenia. Przenieś mysz do czystej klatki bez ściółki, ale ogrzanej kocem ocieplającym. Obserwuj mysz, dopóki nie zacznie chodzić. Stosować tramadol (20 mg/kg, i.p.) jako środek przeciwbólowy pooperacyjny.
  2. Umieść myszy w klatce regeneracyjnej i monitoruj ją aż do wyzdrowienia. Przywróć wodę i dietę myszy po operacji. Codziennie monitoruj myszy po operacji pod kątem oznak upośledzenia lub infekcji, w tym niedożywienia, zgarbionej postawy i potarganej sierści. Po dwóch tygodniach od zabiegu powinno nastąpić usunięcie szwów.
    UWAGA: Maść z erytromycyną należy nakładać na powierzchnię rany codziennie przez trzy kolejne dni.
  3. W przypadku zaobserwowania jakichkolwiek powikłań, takich jak obrzęk rany, należy je natychmiast rozwiązać.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1 mL strzykawkaKDLK-20200808
12-0 nici nylonoweChenghe20082
5-0 jedwabny plecionyMERSILK,ETHICONQK312
75% etanoluODCZYNNIK OGÓLNYP1762077
Igła do akupunkturyChengzhen190420Służy do robienia retraktorów
Automatyczna maszynka do strzyżeniaCodosCHC-332
C57BL/6N myszySLAC laboratorium (Szanghaj)C57BL/6Slac
Elektrokaagulacyjnynóż do guttySD-GG01
Maść erytromycynyBaiyunshanH1007
Roztwór do dezynfekcji jodoforuLionser20190220
Taśma medycznaTranspore, 3M1527C-0
Uchwyt na mikroigłyChengheX006-202003
MikrokleszczykiChengheB001-201908
Mikronożyczki66VT1911-2S276
Mikroskop operacyjnyOLYMPUSSZX7
Nożyczki okulistyczneChengheX041D1251
Pentobarbital sodowySigma20170608
Plastikowa rurka infuzyjnaKDLC-20191225
Sterylna sól fizjologicznaKLL121021109
Kleszczyki naczynioweJinzhongJ31020
Podkładka rozgrzewającaRWD69027

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Rekoneksja nerw w szyjnychanastomoza nerwowadroga przedszyjnatransfer nerwu C7przywracanie ruchomo ci ko czyny przedniejtechnika szwu nerwowegooperacja nerw w u myszyprzeci cie korzenia nerwowegosterylne przemywanie ranynak adanie szw w nylonowych

Powiązane artykuły