Artykuł metodologiczny

Izolacja małego regulatorowego docelowego RNA bakterii związanego z RNA za pomocą oczyszczania powinowactwa

29 sierpnia 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Mercier, N., et. al., MS2-Affinity Purification Coupled with RNA Sequencing in Gram-Positive Bacteria. J. Vis. Exp. (2021)

Ten film pokazuje izolację znakowanego MS2 małego regulatorowego RNA (sRNA) związanego z bakteryjnym docelowym RNA przy użyciu oczyszczania powinowactwa fuzją białka wiążącego maltozę (MBP) i białka płaszcza MS2 unieruchomioną na żywicy amylozy.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

i pożywki

Do eksperymentów MAPS przygotuj następujące i pożywki:- Bufor A (150 mM KCl, 20 mM Tris-HCl pH 8, 1 mM MgCl2 i 1 mM DTT)- Bufor E (250 mM KCl, 20 mM Tris-HCl pH 8, 12 mM maltoza, 0,1% Triton, 1 mM MgCl2 i 1 mM DTT)

Przygotowanie kolumny

UWAGA: Uważaj, aby nie dopuścić do wyschnięcia żywicy amylozy. W razie potrzeby uszczelnij kolumnę zaślepką. Przygotuj wszystkie roztwory przed rozpoczęciem oczyszczania powinowactwa.

  1. Umieść kolumnę chromatograficzną w stojaku na kolumny.
  2. Zdejmij końcówkę kolumny i umyj kolumnę ultraczystą wodą.
  3. Dodać 300 μl żywicy amylozy.
  4. Przemyć kolumnę 10 ml buforu A.
  5. Rozcieńczyć 1,200 pmol białka MBP (białko wiążące maltozę)-MS2 w 6 ml buforu A i załadować go do kolumny.
  6. Przemyć kolumnę 10 ml buforu A.

Oczyszczanie powinowactwa MS2 (Rysunek 1)

  1. Załaduj lizat komórkowy do kolumny.
    UWAGA: Zachowaj 1 ml lizatu komórkowego (ekstrakt surowy, CE) w celu ekstrakcji całkowitego RNA i przeprowadzenia analizy Northern blot i transkryptomicznej.
  2. Zebrać frakcję przepływową (FT) w czystej probówce zbiorczej.
  3. Przemyć kolumnę 3 razy 10 ml buforu A. Zebrać frakcję płuczącą (W).
  4. Eluować kolumnę za pomocą 1 ml buforu E i zebrać frakcję elucyjną (E) w mikroprobówce o pojemności 2 ml.
  5. Wszystkie zebrane frakcje należy przechowywać na lodzie do czasu ekstrakcji RNA lub zamrozić w temperaturze -20 °C do późniejszego wykorzystania.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
figure-results-1

Rysunek 1. Schematyczna ilustracja protokołu MAPS dostosowanego do Staphylococcus aureus. Od budowy plazmidu po analizę danych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1,5 ml probówka do mikrowirówkiSarstedt72.690.001
15 mL probówki wirówkoweFalcon352070
Probówka do mikrowirówek 2 mlStarstedt72.691
250 ml kolba hodowlanaDominique Dutscher2515074Kultury bakteryjne
50 ml probówki wirówkoweFalcon352051Wirowanie kultur
Żywica amylowaNew England BioLabsE8021SOczyszczanie powinowactwa MS2
pMBP-MS2Addgene65104MS2-MBP
Kolumna chromatograficzna Poly-PrepBioRad7311550Oczyszczanie powinowactwa MS2
Produkcja

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Oczyszczanie powinowactwem MS2sekwencjonowanie RNAbia ko wi ce maltozywica amylozowabia ko kapsydu MS2lizat kom rkowyfrakcja przep ywowabufor elucyjny

Powiązane artykuły