Artykuł metodologiczny

Ocena przyczepiania się pneumokoków do pierwotnych komórek śródbłonka człowieka przy stałym przepływie pożywki

26 września 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Jagau, H. i wsp. Zakażenie Pneumokokami pierwotnych komórek śródbłonka człowieka w stałym przepływie. J. Vis. Exp. (2019 rok)

Ten film pokazuje wizualizację w czasie rzeczywistym przyczepiania się pneumokoków do sznurków czynnika von Willebranda (VWF) na komórkach śródbłonka w warunkach stałego przepływu pożywki. Przedstawiono w nim etapy stymulowania uwalniania VWF, znakowania strun i ilościowego określania wiązania bakterii.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Indukcja uwalniania czynnika von Willebranda (VWF) i wizualizacja multimeryzowanych ciągów VWF

  1. Utrzymuj ustawienie przepływu, ponieważ naprężenie ścinające 10 dyn/cm2 jest wymagane do wyzwolenia multimeryzacji VWF do długich ciągów do 200 MDa. Indukować uwalnianie VWF ze śródbłonka WPB poprzez wstrzyknięcie 136 μl 100 mM roztworu podstawowego histaminy do pożywki do wzrostu komórek śródbłonka z mieszanką suplementów (ECGMS) - pożywką krążącą w rurkach perfuzyjnych za pomocą portu iniekcyjnego. Końcowe stężenie histaminy w środowisku przepływowym wyniesie 1 mM. Jeśli port do wstrzykiwań nie jest dostępny, histaminę można dodać alternatywnie, pipetując do pożywki w zbiornikach pompy.
  2. W celu immunofluorescencyjnego wykrywania multimeryzowanych ciągów VWF, należy zatrzymać przepływ po osiągnięciu zrównoważonego poziomu pożywki w zbiornikach i wstrzyknąć 20 μg przeciwciała sprzężonego z izotiocyjanianem fluoresceiny specyficznym dla VWF (FITC) w objętości 200 μl soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS) (pH 7,4) do krążących 13,6 ml pożywki ECGMS za pomocą portu iniekcyjnego. Jeśli port do wstrzykiwań nie jest dostępny, przeciwciało można dodać alternatywnie, pipetując do pożywki znajdującej się w zbiornikach pompy. Daje to końcowe stężenie przeciwciał 1,3 μg/ml.
  3. Do skanowania mikroskopowego kilku pól widzenia w krótkim czasie należy użyć jednostki fluorescencyjnej mikroskopu z urządzeniem do fluorescencji ksenonowej o mocy 30% i kamerą epifluorescencyjną. Monitoruj kształt i morfologię warstwy ludzkich komórek śródbłonka żyły pępowinowej (HUVEC) w trybie jasnego pola, aby wybrać reprezentatywne komórki odpowiednie do wizualizacji ciągów VWF.
  4. Aby uwidocznić ciągi fluorescencji VWF na zielono, wybierz obiektyw olejowy 63x/1,40 i filtr detekcyjny 470 nm w menu jednostki fluorescencji w oprogramowaniu mikroskopu (LasX). Twórz migawki stosów Z z co najmniej 50 reprezentatywnymi widokami pola, z których każdy zawiera około 10 morfologicznie nienaruszonych HUVEC. W celu ilościowego określenia ciągów VWF z zielonej fluorescencji w różnych punktach czasowych należy zeskanować kilka pól widzenia.

2. Mikroskopowa ocena przyczepiania się bakterii do ciągów VWF w przepływie w czasie rzeczywistym

  1. Ilościowe określenie przyczepiania się pneumokoków do strun VWF generowanych na powierzchni komórek HUVEC za pomocą detekcji immunofluorescencyjnej.
    1. Wstrzymać przepływ i wstrzyknąć 1,35 x 108 jtk/ml pneumokoków wykazujących ekspresję białka czerwonej fluorescencji (RFP) w maksymalnej objętości 1 ml do pożywki ECGMS za pomocą portu iniekcyjnego. Alternatywnie, odpipetować bakterie do pożywki w zbiorniku pompy. Ponownie uruchomić naprężenie ścinające przy 10 dyn/cm2 , aby bakterie mogły krążyć w układzie pompy.
    2. Wybierz 63-krotny obiektyw olejowy do powiększenia mikroskopu i dostosuj ustawienia filtra fluorescencyjnego w oprogramowaniu mikroskopu do kanału RFP (filtr detekcyjny 540 nm) w celu wykrywania pneumokoków wykazujących ekspresję RFP.
    3. W celu ilościowego określenia przyczepiania się bakterii do ciągów VWF, zatrzymaj przepływ i utwórz migawki stosów Z z co najmniej 30 reprezentatywnymi widokami pola, z których każdy zawiera około 10 morfologicznie nienaruszonych HUVEC, a następnie policz liczbę pneumokoków.
    4. W celu oceny danych należy użyć algorytmu statystyki jednoczynnikowej ANOVA, a następnie przeprowadzić post hoc dwustronny test próby niesparowanej w celu szczegółowego porównania statystycznego. Wartości P wynoszące <0,05 uznano za istotne statystycznie.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Zacisk do rurki perfuzyjnejIbidi10821Do przetrzymywania cieczy w rurce przed podłączeniem suwaka do układu pompy
KomputerDolinaSzerokość 3440Comuter z oprogramowaniem pompy ciśnieniowej
Konfokalny laserowy mikroskop skaningowy (CLSM)Księga LeicaDMi8 powiedział:Mikroskop odwrotny ze stolikiem pokrytym podgrzewaną komorą i zespołem fluorescencyjnym wyposażonym w filtr fluorescencyjny, ksenonowe źródło światła (SP8, DMi8) i DFC 365 FX Kamera (1392 x 1040, 1,4 Megapiksela)
Di Wodorofosforan potasu (KH₂PO₄)Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe3904.1Używany jako bufor PBS
Suszenie materiałuMerck101969Pomarańczowe koraliki krzemionkowe do suszenia używane w szklanej butelce z adapterem rurki
Suplement ECGM MixKomórka promocyjnaC-39215 (wersja c-39215)Mieszanka suplementów do ECGM -pożywka, wymagana do wstępnej hodowli komórek śródbłonka: 0,02 ml / ml Surowicy cielęcej płodu, 0,004 ml / ml suplement wzrostu komórek śródbłonka, 0,1 ng / ml naskórkowy czynnik wzrostu, 1 ng / ml zasadowy czynnik wzrostu fibroblastów, 90 μg / ml heparyny, 1 μg / ml Hydrokortyzon
Matryca ECGMSKomórka promocyjnaDokument C-22010ECGM uzupełnione 5 % [w/w] FCS i 1 mM siarczan magnezu w celu zwiększenia adhezji komórek
Pożywka do wzrostu komórek śródbłonka (EKGM, gotowa do użycia)Komórka promocyjnaDokument C-22010Pożywka hodowlana HUVEC, już uzupełniona wszystkimi składnikami mieszanki suplementów
Surowica cielęca płodu (FCS)Biochrom teraz MerckZobacz materiał S 0415Suplement do hodowli komórkowych, stosowany do analiz zakażeń
Przeciwciało anty-ludzkie VWF przeciwko ludzkim kozom sprzężonym z FITCKsięga Abcamab8822 powiedział:Stężenie podstawowe: 10 mg/ml, do immunodetekcji globularyzowanego i multimeryzowanego VWF w przepływie
Jednostka fluidycznaIbidi10903Jednostka fluidyczna do uprawy przepływowej
Żelatyna (wieprzowa)Sigma AldrichG-1890-100gDo wstępnego powlekania powierzchni kanałów mikroślizgowych
Dichlorowodorek histaminySigma AldrichH-7250-10MGDo indukcji wydzielania VWF ze śródbłonkowych ciał Weibel Palade
Ludzka komórka śródbłonka żyły pępowinowej (HUVEC)Komórka promocyjnaC-12203 Numer Partii. 396Z042Pierwotne komórki śródbłonka od dawcy połączonego, przechowywane w krypkorezerwie w ciekłym azocie
Ludzkie przeciwciało swoiste dla VWF pochodzące od myszy (monoklonalne)Santa CruzZobacz materiał SC73268Stężenie podstawowe: 200 μg/ml do barwienia immunologicznego VWF w szkiełku mikroprzepływowym po utrwaleniu PFA
Port wtryskowyIbidi10820Do wstrzykiwania histaminy lub bakterii do rurki zbiornika podczas cyrkulacji przepływowej
Szkiełka Luer I0.4 (ibiTreat472microslides)Ibidi80176Fizycznie zmodyfikowane szkiełka do uprawy fludycznej (μ–Slide I0,4Luer o wysokości kanału 0,4 mm, objętości kanału 100 μl, powierzchni wzrostu 2,5 cm i powierzchni powlekania 25,4 cm²) odpowiednie do wszystkich rodzajów testów przepływu, obróbka fizyczna generuje powierzchnię hydrofilową i adhezyjną.
Siarczan magnezu (MgSO₄, nieuwodniony)Sigma AldrichZobacz materiał M7506-500GDo przygotowania podłoża ECGMS
Pompa mikroprzepływowaIbidi10905Pompa ciśnieniowa powietrza
Zestaw perfuzyjnyIbidi10964Zestaw perfuzyjny Yellow/Green ma średnicę rurki 1,6 mm, długość rurki 50 cm, całkowitą objętość roboczą 13,6 ml, objętość martwej probówki 2,8 ml i wielkość zbiornika 10 mL. w połączeniu ze szkiełkiem μ-Slide, L0,4Luer, w temperaturze 37°C i lepkości 0,0072 dyn x s/cm2 można osiągnąć zakres natężenia przepływu od 3,8 ml/min do 33,9 mL/min i naprężenia ścinające od 3,5 dyn/cm² do 31,2 dyn/cm². o długości 50 cm do mikroprzepływów
Sól fizjologiczna buforowana fosforanami (PBS)  Roztwór przygotowano przy użyciu następujących substancji chemicznych: 0,2 g/L KCl, 1,44 g/L Na₂HPO₄, 0,24 g/L KH₂PO₄, pH 7,4
Chlorek potasu (KCl)Carl Roth GmbH + Co. KG, Karlsruhe6781.1Używany jako bufor PBS
Oprogramowanie sterujące pompą (PumpControl v1.5.4)Ibidiwersja 1.5.4Oprogramowanie komputerowe do sterowania pompą ciśnieniową, ustawiania warunków przepływu oraz uruchamiania/kończenia przepływu
Pneumokoki z ekspresją RFPNarodowa Kolekcja Kultur Typowych, Zdrowie Publiczne Anglia10,319Streptococcus pneumoniae serotyp 47 wykazujący ekspresję RFP połączony z białkiem podobnym do histonu zintegrowanym z genomem

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Von Willebrand FactorFluorescence MicroscopyZ Stack ImagingHistamine StimulationVWF Antibody LabelingRFP PneumococciMicrofluidic Pump

Powiązane artykuły