Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Czuła metoda wizualna do wykrywania bakterii wytwarzających siarkowodór

595 wyświetleń

26 września 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Zhu, W., & Chu, W. Czuła metoda wizualna do wykrywania bakterii wytwarzających siarkowodór. J. Vis. Exp. (2022)

Ten film przedstawia czułą metodę wizualną do szybkiego wykrywania bakterii wytwarzających siarkowodór. Zmiana koloru z żółtego na wskazuje na aktywność bakterii poprzez tworzenie się siarczku bizmutu.

Protokół

1. Szczepy bakteryjne

NUTA: W tym eksperymencie wykorzystano dziewięć standardowych szczepów, w tym Salmonella paratyphi A, Salmonella paratyphi B, Fusobacterium nucleatum, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa PAO1, Aeromonas hydrophila YJ-1, Proteus vuigaris i Klebsiella pneumoniae. Salmonella paratyphi (Salmonella paratyphi ) A, Fusobacterium nucleatum, Pseudomonas aeruginosa i Proteus vuigaris mogą wytwarzaćH2S.

  1. Przygotowanie kultury bakteryjnej
    1. Przenieść jedną kolonię bakteryjną Salmonella paratyphi A, Salmonella paratyphi B, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa PAO1, Aeromonas hydrophila YJ-1 i Klebsiella pneumoniae z płytki agarowej Luria-Bertani (LB) do 100 ml pożywki LB i hodować w temperaturze 37 °C przez 12-16 godzin, aż stężenie bakterii wyniesie około 1 x 109 komórek/ml (jak wskazano przez OD600 = 1).
    2. Przenieść jedną kolonię bakteryjną Fusobacterium nucleatum i Proteus vuigaris z płytek agarowych bulionu sojowego z tryptykazą (TSB) do 100 ml pożywki TSB i hodować w temperaturze 37 °C beztlenowo przez 24 godziny, aż stężenie bakterii wyniesie około 1 x 109 komórek/ml (jak wskazuje OD600 = 1).

2. Test wykrywaniaH2S

  1. Test produkcji siarkowodoru
    1. Zmieszać 100 μl kultury bakteryjnej ze 100 μl nowo przygotowanego roztworu bizmutu (pH 8,0; 10 mM chlorku bizmutu (III), 0,4 M trietanoloamino-HCl, 20 mM jednowodnego 5-fosforanu pirydoksalu, 20 mM EDTA (kwas etylenodiaminotetraoctowy) i 40 mM L-cysteiny) w 96-dołkowych płytkach do mikromiareczkowania i hodowli przez 20 minut w temperaturze 37 °C. Dla każdego szczepu bakteryjnego należy przeprowadzić analizę w trzech egzemplarzach.
    2. Po 20 minutach sprawdź, czy kolor się zmienił. Jeśli kolor roztworu zmieni się z jasnożółtego na, oznacza to, że bakterie są w stanie wytworzyćH2S. Powtórz ten pomiar 3x.
  2. Czułość metody
    1. Określić czułość metody przy użyciu różnych stężeń wodorosiarczku sodu (NaHS): 2 mM, 1 mM, 0,8 mM, 0,6 mM, 0,4 mM, 0,2 mM, 0,1 mM i 0 mM, zmieszanych z roztworem BS (siarczku bizmutu).
    2. Określić obecność HS/S2− , obserwując tworzenie się czarnego osadu BS. Oceń kolor studni za pomocą skali wizualnej od braku produkcji koloru (-) do produkcji najciemniejszego czarnego koloru (++++++).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Chlorek bizmutu (III)Szanghaj Macklin Biochemical Co., Ltd7787-60-2 
EDTANanjing Chemical Reagent Co., Ltd60-00-4 
Fusobacterium nucleatum (Fusobacterium nucleatum)Kontroler ATCC (Kontroler T25586 
L-cysteinaAmresco (angielski)52-90-4 
Trietanoloamina-HClSzanghaj Aladdin Biochemical Technology Co., Ltd.637-39-8 
Wodorosiarczek sodu   
Pipeta   

Tagi

Wykrywanie siarkowodorupowstawanie siarczku bizmutubakteryjna produkcja H2Stest kolorymetrycznywzorzec hydrosiarczku soduroztwór chlorku bizmutuL-cysteina jako źródło siarkiwizualny gradient barw96-dołkowe płytki mikrotitracyjneczułość na siarkowodór