Method Article

Czuła metoda wizualna do wykrywania bakterii wytwarzających siarkowodór

September 26th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Zhu, W., & Chu, W. Czuła metoda wizualna do wykrywania bakterii wytwarzających siarkowodór. J. Vis. Exp. (2022)

Ten film przedstawia czułą metodę wizualną do szybkiego wykrywania bakterii wytwarzających siarkowodór. Zmiana koloru z żółtego na wskazuje na aktywność bakterii poprzez tworzenie się siarczku bizmutu.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Szczepy bakteryjne

NUTA: W tym eksperymencie wykorzystano dziewięć standardowych szczepów, w tym Salmonella paratyphi A, Salmonella paratyphi B, Fusobacterium nucleatum, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa PAO1, Aeromonas hydrophila YJ-1, Proteus vuigaris i Klebsiella pneumoniae. Salmonella paratyphi (Salmonella paratyphi ) A, Fusobacterium nucleatum, Pseudomonas aeruginosa i Proteus vuigaris mogą wytwarzaćH2S.

  1. Przygotowanie kultury bakteryjnej
    1. Przenieść jedną kolonię bakteryjną Salmonella paratyphi A, Salmonella paratyphi B, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa PAO1, Aeromonas hydrophila YJ-1 i Klebsiella pneumoniae z płytki agarowej Luria-Bertani (LB) do 100 ml pożywki LB i hodować w temperaturze 37 °C przez 12-16 godzin, aż stężenie bakterii wyniesie około 1 x 109 komórek/ml (jak wskazano przez OD600 = 1).
    2. Przenieść jedną kolonię bakteryjną Fusobacterium nucleatum i Proteus vuigaris z płytek agarowych bulionu sojowego z tryptykazą (TSB) do 100 ml pożywki TSB i hodować w temperaturze 37 °C beztlenowo przez 24 godziny, aż stężenie bakterii wyniesie około 1 x 109 komórek/ml (jak wskazuje OD600 = 1).

2. Test wykrywaniaH2S

  1. Test produkcji siarkowodoru
    1. Zmieszać 100 μl kultury bakteryjnej ze 100 μl nowo przygotowanego roztworu bizmutu (pH 8,0; 10 mM chlorku bizmutu (III), 0,4 M trietanoloamino-HCl, 20 mM jednowodnego 5-fosforanu pirydoksalu, 20 mM EDTA (kwas etylenodiaminotetraoctowy) i 40 mM L-cysteiny) w 96-dołkowych płytkach do mikromiareczkowania i hodowli przez 20 minut w temperaturze 37 °C. Dla każdego szczepu bakteryjnego należy przeprowadzić analizę w trzech egzemplarzach.
    2. Po 20 minutach sprawdź, czy kolor się zmienił. Jeśli kolor roztworu zmieni się z jasnożółtego na, oznacza to, że bakterie są w stanie wytworzyćH2S. Powtórz ten pomiar 3x.
  2. Czułość metody
    1. Określić czułość metody przy użyciu różnych stężeń wodorosiarczku sodu (NaHS): 2 mM, 1 mM, 0,8 mM, 0,6 mM, 0,4 mM, 0,2 mM, 0,1 mM i 0 mM, zmieszanych z roztworem BS (siarczku bizmutu).
    2. Określić obecność HS/S2− , obserwując tworzenie się czarnego osadu BS. Oceń kolor studni za pomocą skali wizualnej od braku produkcji koloru (-) do produkcji najciemniejszego czarnego koloru (++++++).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Chlorek bizmutu (III)Szanghaj Macklin Biochemical Co., Ltd7787-60-2 
EDTANanjing Chemical Reagent Co., Ltd60-00-4 
Fusobacterium nucleatum (Fusobacterium nucleatum)Kontroler ATCC (Kontroler T25586 
L-cysteinaAmresco (angielski)52-90-4 
Trietanoloamina-HClSzanghaj Aladdin Biochemical Technology Co., Ltd.637-39-8 
Wodorosiarczek sodu   
Pipeta   

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Hydrogen Sulfide DetectionBismuth Sulfide FormationBacterial H2S ProductionColorimetric AssaySodium Hydrosulfide StandardBismuth Chloride SolutionL Cysteine Sulfur SourceVisual Color Gradient96 Well Microtiter PlatesHydrogen Sulfide Sensitivity

Related Articles