Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Test zalewania sadzonek w celu badania przesiewowego odporności bakteryjnej pomidorów

450 wyświetleń

26 września 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Hassan, J. A., et al. Wysokoprzepustowa identyfikacja oporności na Pseudomonas syringae pv. Pomidor w pomidorze za pomocą testu powodziowego sadzonek. J. Vis. Exp. (2020).

Ten film przedstawia metodę badań przesiewowych pod kątem oporności bakteryjnej w różnych odmianach pomidorów przy użyciu dziesięciodniowych sadzonek zaszczepionych zawiesiną bakteryjną. Wyjaśnia, w jaki sposób bakterie atakują aparaty szparkowe, dostarczają białka efektorowe w celu stłumienia odporności roślin oraz jak różnią się reakcje roślin między szczepami podatnymi i opornymi. Wynik ocenia się, obserwując widoczne różnice we wzroście, przy czym odporne rośliny pozostają zdrowe, a podatne wykazują uszkodzenie tkanek.

Protokół

1. Metoda zalewania sadzonek pomidorów

  1. Wyjmij płytki z 10-dniowymi sadzonkami z komory wzrostowej i umieść je w komorze bezpieczeństwa biologicznego, aby przygotować płytki do zalania.
  2. Usuń taśmę chirurgiczną z dwóch płytek.
  3. Ustaw minutnik na 3 minuty. Odmierzyć 6 ml końcowego inokulum P. syringae pv. pomidor (Pst) (Pst19 OD600 = 0,0075 lub PstDC3000 OD600 = 0,005) i przenieść 6 ml inokulum na każdą płytkę z 10-dniowymi sadzonkami.
  4. Delikatnie wepchnij sadzonki do inokulum za pomocą sterylnej końcówki pipety. Uruchom minutnik.
  5. Trzymaj po jednym talerzu w każdej ręce. Przechyl przód płytki w dół, aby zgromadzić inokulum i głównie zanurzyć liścienie i liście sadzonek.
  6. Przesuń z boku na bok 5–7 razy, a następnie odchyl płytki do tyłu, aby przykryć korzenie i całą płytkę.
  7. Ponownie przechyl płytki w dół, aby zanurzyć liścienie i liście, i powtarzaj w sumie przez 3 minuty.
  8. Wylej inokulum z płytek, połóż płytki na płaskiej powierzchni, a następnie odlej resztki inokulum po raz drugi.
  9. Owinąć płytki taśmą chirurgiczną i powtórzyć kroki 1.2–1.8 dla pozostałych płytek.
  10. Ponownie inkubować płytki w komorze wzrostowej po zalaniu wszystkich płytek.

Fenotyp po 7-10 dniach dla PstDC3000 lub 10-14 dni dla Pst19.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Komora bezpieczeństwa biologicznego, klasa II typ A2   
MARKA Jednorazowe kuwety plastikowe, polistyrenVWR Polska47744-642 
Wykałaczki z płaskiego drewna szenilowego KraftVWR Polska500029-808 
Szklany palnika alkoholowegoFisher NaukowyS41898A / Nie. W-125 
Szklane palniki alkoholoweFisher NaukowyS41898 / Nr BO125 powiedział: 
Odczynnik ACS do gliceroluVWR PolskaEMGX0185-5 
Kimberly-Clark™ Kimtech Science™ Kimwipes™ Delikatne wycieraczki do zadańFisher Naukowy06-666-A 
Chlorek magnezu, klasa ACSVWR Polska97061-356 
Siarczan magnezu siedmiowodny, klasa ACSVWR Polska97062-130 
Probówki do mikrowirówek, 1,5 ml   
Probówki do mikrowirówek, 2,2 ml   
Murashige & Skoog, Sole bazalneLaboratoria Kesonowe, Inc.MSP01-50LT 
Pipet-Lite XLS LTS 8-kanałowa pipeta 20-200uLRaininL8-200XLS 
Pipet-Lite XLS LTS 8-kanałowa pipeta 2-20uLRaininL8-20XLS 
Polistyren 100mm x 25mm sterylna szalka PetriegoVWR Polska89107-632 
Polistyren 150mm x 15mm sterylna szalka PetriegoFisher NaukowyFB08-757-14 
Polistyrenowa 150x15mm sterylna szalka PetriegoFisher Naukowy08-757-148 
Końcówki LTS 20 μL 960/10 GPS-L10Rainin17005091 
Końcówki LTS 250 μL 960/10 GPS-L250Rainin17005093 

Tagi

Przesiewowe badanie oporności bakteryjnejsiewki pomidoraPseudomonas syringaewnikanie przez aparaty szparkowebiałka efektorowereaktywne formy tlenuodporność roślinkomora wzrostowakomora bezpieczna