Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Jednokomórkowa hodowla bakterii w gigantycznych pęcherzykach

408 wyświetleń

⸱

26 września 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Morita, M., et al. Hodowla komórek bakteryjnych na poziomie pojedynczej komórki wewnątrz gigantycznych pęcherzyków. J. Vis. Exp. (2019).

Ten film pokazuje metodę hodowli i obserwacji pojedynczych komórek bakteryjnych zamkniętych w gigantycznych pęcherzykach zakotwiczonych w podpartej dwuwarstwie lipidowej. System umożliwia stabilne, długoterminowe obrazowanie dynamiki wzrostu pojedynczych komórek w ograniczonym, fizjologicznie istotnym mikrośrodowisku.

Protokół

1. Przygotowanie systemu obserwacji pęcherzyków olbrzymich (GV) (System Hodowli Komórek Bakteryjnych)

  1. Przygotowanie małych pęcherzyków (SV) do budowy podpartej membrany dwuwarstwowej
    1. Wlać 20 μl roztworu POPC (1-palmitoilo-2-oleoilo-sn-glycero-3-fosfocholiny) i 4 μl roztworu biotyny-PEG-DSPE (1,2-distearoilo-sn-glicero-3-fosfoetanoloamino-N-[biotynylo(glikol polietylenowy)-2000) do szklanej probówki.
    2. Odparować rozpuszczalnik organiczny za pomocą przepływu powietrza, aby utworzyć film lipidowy i umieścić tę próbkę w eksykatorze na 1 godzinę w celu całkowitego odparowania rozpuszczalnika organicznego.
    3. Dodać 200 μl 200 mM glukozy w 1x pożywce LB (bulion Luria-Bertani) (zewnętrzny wodny roztwór GV) do szklanej fiolki.
    4. Owinąć otwierającą się część szklanej fiolki folią i poddać sonikacji w łaźni ultradźwiękowej (120 W) przez co najmniej 1 godzinę.
    5. Przygotuj SV metodą ekstruzji przy użyciu mini-ekstrudera i membrany poliwęglanowej o wielkości porów 100 nm.
  2. Przygotowanie ręcznie robionej komory
    1. Wywierć otwór o średnicy 7 mm za pomocą wydrążonego stempla na dwustronnej uszczelce (10 mm x 10 mm x 1 mm).
    2. Wklej dwustronną uszczelkę z otworem w szkle nakrywkowym (30 mm x 40 mm, grubość 0,25–0,35 mm).
  3. Przygotowanie podpartej dwuwarstwowej membrany na szkle nakrywkowym w otworze studzienki
    1. Dodać 30 μl roztworu SV do otworu komory (przygotowanego w ppkt 2.2) i inkubować w temperaturze pokojowej przez 30 minut.
    2. Delikatnie przemyć otwór dwukrotnie 20 μl pożywki 1x LB zawierającej 200 mM glukozy (zewnętrzny wodny roztwór GV) przez pipetowanie.
  4. Unieruchomienie GV na podpartej membranie dwuwarstwowej na szkle nakrywkowym w otworze komory
    1. Wprowadzić 10 μl neutrawarydyny z zewnętrznym wodnym roztworem GV (1 mg/ml) do otworu i inkubować w temperaturze pokojowej przez 15 minut.
    2. Delikatnie przemyć otwór dwukrotnie 20 μl pożywki 1x LB zawierającej 200 mM glukozy (zewnętrzny wodny roztwór GV) przez pipetowanie.
    3. Dodać cały roztwór zawierający GV do otworu komory i zamknąć szkłem nakrywkowym (18 mm x 18 mm, grubość 0,13–0,17 mm) (Rysunek 1b).
  5. Obserwacja mikroskopowa wzrostu komórek bakteryjnych wewnątrz GV
    1. Ustaw mikroskopijny system ogrzewania z odwróconym mikroskopem wyposażonym w soczewkę obiektywową o aperturze numerycznej (NA) 40x/0,6 o dużej odległości roboczej (Rysunek 1b).
    2. Umieść komorę na mikroskopijnym systemie ogrzewania stage (Rysunek 1b). Inkubować GV zawierające komórki bakteryjne w komorze w warunkach statycznych przez 6 godzin w temperaturze 37 °C.
    3. Rejestruj i rejestruj obrazy mikroskopowe wzrostu komórek bakteryjnych wewnątrz GV co 30 minut za pomocą naukowej kamery z komplementarnym półprzewodnikiem tlenku metalu (sCMOS).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1

Ryc. 1: System obserwacji hodowli komórek bakteryjnych wewnątrz GV. a) GV są unieruchomione na podpartej membranie poprzez wiązanie biotyny i neutrawidyny na szkle nakrywkowym. GV są inkubowane przez system grzewczy.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
BaktotryptonBD Nauki biologiczne211705 
ChloroformWako Pure Chemicals032-21921 
Szkło nakrywkowe (18 × 18 mm)Matsunami Glass Ind.C018181grubość 0,13–0,17 mm
Szkło nakrywkowe (30 × 40 mm)Matsunami Glass Ind.na zamówieniegrubość 0,25–0,35 mm
Wirówka stołkowaHi-Tech Co.Zobacz materiał ATT101Typ wirnika obrotu
Uszczelka dwustronna (10 × 10 × 1 mm)NicomZobacz materiał T4613 TGL 
GlukozaWako Pure Chemicals049-31165 
Mikroskop odwróconyOlympusIX-73 
MetanolWako Pure Chemicals133-16771 
Mikroskopijny system stopni grzewczychTOKAI HITTP-110R-100 
Olej mineralnyNacalai Tesque23334-85 
NeutrawidynaThermo Fisher Naukowy31000 
Soczewka obiektywuOlympusLUCPLFLN 40×/0,6 brak danych 
Membrany poliwęglanoweLipidy polarne Avanti610005 
Kamera sCMOSAndorŻyła 4.2 pluswielkość porów 100 nm
Chlorek soduWako Pure Chemicals191-01665 
SacharozaWako Pure Chemicals196-00015 
Kąpiel ultradźwiękowaJAKO JEDNOŚĆASU-3D 
Ekstrakt drożdżowyBD Nauki biologiczne212750 
Plastikowa tubka o pojemności 0,6 ml z pokrywkąWatson130-806C 
Plastikowa tubka o pojemności 1,5 ml z pokrywkąSumitomo Bakelit Co.MS4265-M 
1-palmitoilo-2-oleoilo-sn-glicero-3-fosfokolinaLipidy polarne Avanti850457P 
1,2-distearoilo-snglycero-3-fosfoetanoloamina-N-[biotynyl(glikol polietylenowy)-2000]Lipidy polarne Avanti880129PPOPC
   Biotyna-PEG-DSPE

Tagi

Hodowla bakteryjnawspierana dwuwarstwa lipidowawiązanie neutrawidynyobrazowanie pojedynczych komórekobserwacja mikroskopowadyfuzja składników odżywczychograniczone mikrootoczeniekomorowe szkiełko przedmiotoweplatforma grzewcza