Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Izolacja bakterii Gram-ujemnych z insercją transpozonów genomowych

520 wyświetleń

26 września 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Kazi, M. I., et al., Generowanie bibliotek insercji transpozonów w bakteriach Gram-ujemnych do sekwencjonowania wysokoprzepustowego. J . Vis. Exp. (2020)

Ten film pokazuje selekcję, kwantyfikację i zachowanie bakterii biorców Gram-ujemnych przenoszących inserpozycje transpozonów w oparciu o oporność na kanamycynę.

Protokół

Generowanie końcowej biblioteki mutantów bakteryjnych

  1. Rozmrozić podwielokrotność zamrożonego krycia na lodzie.
  2. Łączenie płytek na płytkach agarowych Luria-Bertani (LB) o średnicy 150 mm uzupełnionych kanamycyną na podstawie jednostek tworzących kolonie (CFU) obliczonych w kroku 3.1. Dostosuj objętość za pomocą LB, aby uzyskać 13 333 kolonii na 150 μl przed posiewem.
    NUTA: Liczba CFU została tutaj określona na około 105 CFU/ml, więc objętość krycia dostosowano tak, aby uzyskać 13 333 kolonii na płytkę. Zapewniłoby to optymalną liczbę kolonii na 30 płytkach dla biblioteki mutantów o wysokiej rozdzielczości bez przepełniania płytek.
  3. Za pomocą sterylnych szklanych kulek rozprowadzić 150 μl rozcieńczenia na płytce na płytkach agarowych Luria-Bertani o wymiarach 30 x 150 mm uzupełnionych kanamycyną, aby uzyskać 400 000 kolonii (ryc. 1C).
    NUTA: Sterylne pręty lub wszelkiego rodzaju sterylne narzędzia do rozsiewania (np. szklane koraliki) mogą być używane do rozprowadzania bakterii na płytkach.
  4. Wyrzuć zużytą rurkę zawierającą nadmiar krycia.
    NUTA: Cykle zamrażania/rozmrażania powodują selektywne naciski na kulturę bakteryjną, co może zniekształcić wyniki eksperymentu Tn-seq. Za każdym razem należy używać nowej porcji.
  5. Inkubować płytki w temperaturze 37 °C przez 14 godzin.
    NUTA: Czas inkubacji jest zoptymalizowany, aby zapobiec przerostowi (stykaniu się kolonii). Sugeruje się minimalizację wzrostu poprzez skrócenie czasu inkubacji.

Szacowanie zagęszczenia biblioteki i pulowania dla magazynu

  1. Policz jtk na każdej płytce, aby oszacować całkowitą liczbę mutantów w bibliotece transpozonów. Policz 20% z co najmniej 3 płytek, aby określić szacunkową liczbę kolonii dla całej grupy płytek (ryc. 2A). Upewnij się, że kolonie nie stykają się z inną kolonią.
  2. Po obliczeniu szacowanej wydajności kolonii dodaj 3-5 ml LB (lub więcej w razie potrzeby) do każdej płytki i zeskrob bakterie za pomocą sterylnego narzędzia do skrobania. NUTA: Sterylne pętle zaszczepiające służyły do skutecznego skrobania płytek.
  3. Zawiesiny bakteryjne ze wszystkich płytek należy zebrać w stożkowych probówkach o pojemności 50 ml (ryc. 1D). Będzie to wymagało wielu stożkowych probówek o pojemności 50 ml, co najmniej 3.
  4. Zawiesina bakteryjna w postaci granulatu przez odwirowanie przy 5 000 x g przez 7 min.
  5. Odrzucić supernatant i ponownie zawiesić osad w 5 ml LB uzupełnionego 30% glicerolem.
  6. Podwielokrotność 1 ml z biblioteki transpozonów do kriowialiów i przechowywać w temperaturze -80 °C.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1

Rysunek 1: Schemat budowy biblioteki mutantów transpozonów. (A) Koniugacja bakteryjna. Szczep "dawcy", który koduje maszynerię transpozycyjną, został zmieszany ze szczepem "biorcy". Mieszaninę nakrapiano na płytkach agarowych Luria-Bertani (LB)...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Szalki Petriego 150mm x 15mmCorning351058 
50 ml stożkowe sterylne polipropylenowe probówki wirówkoweFisher Naukowy12-565-271 
Acinetobacter baumannii ATCC 17978 (wersja angielska)Kontroler ATCC (Kontroler TN/AWzmacniacze, KanS
Escherichia coli (Escherichia coli) Urządzenie wielofunkcyjne Dap-N/AN/AAuksotrof DAP, wymaga do wzrostu 600 mM egzogennie dodanego DAP. Zawiera maszynerię RP4 do transferu plazmidu. Nośnik do JNW68 (36).
Fiolki kriogeniczne z gwintem zewnętrznymCorning09-761-71 
Koraliki szklaneCorning72684 
GlicerolFisher NaukowyZobacz materiał G33 
Pętle inokulacyjneFisher Naukowy22-363-602Narzędzie do skrobania
KanamycynaFisher NaukowyZobacz materiał BP906Stosowany w dawce 25 mg/L
Agar LB, MłynarzFisher NaukowyZobacz materiał BP1425 
Rosół LB, MillerFisher NaukowyZobacz materiał BP1426 
Sól fizjologiczna buforowana fosforanami, roztwór 10XFisher NaukowyBP39920Rozcieńczony do 1X

Tagi

Oporność na kanamycynęjednostki tworzące koloniehodowle bakteryjnepłytki agarowewirowaniekriokonserwacjakonstrukcja bibliotekiselekcja mutantów