Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Mikroskopowa analiza wzrostu bakterii pod wpływem stresu przy użyciu komór mikroprzepływowych

445 wyświetleń

26 września 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Cayron, J., et al. Wieloskalowa analiza wzrostu bakterii w warunkach leczenia stresem. J. Vis. Exp. (2019).

Ten film pokazuje, jak przygotować i wykorzystać płytkę mikroprzepływową do obrazowania komórek bakteryjnych w warunkach stresu. Przedstawia proces wprowadzania kultury bakteryjnej i wywołującej stres pożywki antybiotykowej, a następnie ładowania komórek i ustawiania mikroskopu. Obrazowanie poklatkowe w trybie kontrastu fazowego jest następnie wykorzystywane do obserwacji rozwoju wydłużonych, nitkowatych komórek o zwiększonej zawartości DNA z powodu zahamowania podziałów komórkowych.

Protokół

  1. Mikrofluidyka obrazowanie poklatkowe
    1. Usunąć roztwór konserwujący z płytki mikroprzepływowej i zastąpić go świeżym podłożem podgrzanym do temperatury 37 °C, zgodnie z opisem w instrukcji obsługi oprogramowania mikroprzepływowego.
    2. Uszczelnij płytkę mikroprzepływową do układu kolektora i kliknij przycisk Zalewanie.
    3. Umieścić płytkę mikroprzepływową z układem kolektora na stoliku mikroskopowym i podgrzać w temperaturze 37 °C przez ~2 godziny przed rozpoczęciem akwizycji mikroskopowej.
      NUTA: Ten etap podgrzewania ma kluczowe znaczenie, aby uniknąć dylatacji komory mikroprzepływowej, która zmieniłaby ostrość mikroskopu podczas eksperymentu poklatkowego i pogorszyłaby akwizycję obrazu.
    4. Uszczelnij płytkę mikroprzepływową. Zastąp pożywkę z dołka 8 150 μl próbki hodowli i zastąp pożywkę z dołka 1 do 5 żądanym podłożem z odczynnikiem wywołującym stres lub bez niego.
    5. Uszczelnij płytkę mikroprzepływową i umieść ją na stoliku mikroskopu.
    6. W oprogramowaniu mikroprzepływowym uruchom procedurę ładowania komórki. Sprawdź, czy obciążenie komórek jest zadowalające, patrząc pod mikroskop w świetle przechodzącym. Uruchom procedurę ładowania komórek po raz drugi, jeśli gęstość komórek w komorze jest niewystarczająca.
    7. Wykonaj staranne ustawienie ostrości w trybie światła przechodzącego i wybierz kilka pól view, które pokazują izolowane bakterie. Ważne jest, aby wybrać pola, które nie są przepełnione, aby móc monitorować wzrost izolowanych komórek w czasie (zalecane jest ~10–20 komórek na 100 μm²). Ułatwi to również wykrywanie komórek podczas analizy obrazu.
    8. W oprogramowaniu mikroprzepływowym kliknij przycisk Utwórz protokół. Zaprogramuj wstrzyknięcie pożywki wzrostowej dla 1-2 ekwiwalentów czasu generacji, aby umożliwić komórkom adaptację (opcjonalnie). Następnie zaprogramuj wstrzyknięcie medium wywołującego stres w ciągu 10 minut przy 2 psi, a następnie wstrzyknięcie przy 1 psi na żądany czas leczenia stresu. Jeśli zamierzasz przeanalizować regenerację komórek po stresie, zaprogramuj wstrzykiwanie świeżej pożywki wzrostowej na żądany czas.
      NUTA: W przedstawionym tutaj eksperymencie cefaleksynę wstrzykiwano na 10 minut przy 2 psi, a następnie 50 minut przy 1 psi. Następnie wstrzyknięto świeżą pożywkę wzrostową przy 2 psi przez 10 minut, a następnie przez 3 godziny przy 1 psi.
    9. Wykonuj obrazowanie mikroskopowe w trybie poklatkowym z 1 klatką co 10 minut, używając kontrastu fazowego w świetle przechodzącym i źródła światła wzbudzającego 560 nm dla sygnału mCherry, jeśli jest to wymagane.
      NUTA: Ważne jest, aby rozpocząć akwizycję obrazu mikroskopowego w tym samym czasie, co rozpoczęcie protokołu iniekcji mikroprzepływowej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
System mikroprzepływowy CellASIC ONIXMerck MilliporeCAX2-S0000Układ mikroprzepływowy
CellASIC ONIX2 FGMerck MilliporeONIX2 1.0.1Oprogramowanie mikroprzepływowe
Rozdzielacz CellASIC ONIX2 BasicMerck MilliporeCAX2-MBC20System rozdzielaczy
Szczep E. coli przenoszący insercję chromosomową w celu fuzji hupA-mCherry  Stworzony przez transdukcję P1 hupA-mCherry w E. coli MG1655
Płytki mikroprzepływowe CellASIC ONIXMerck MilliporeZobacz materiał B04A-03-5PKPłytka do układu mikroprzepływowego
Mikroskop Nikon eclipse TiNikon Mikroskop fluorescencyjny
MOPS EZ Rich Defined Medium (RDM)TeknovaZobacz materiał M2105Pożywka bogata w wzrost, 10x Mieszanina MOPS, 0,132 M K₂HPO₄, 10x AGCU, 5x Suplement EZ, 20% Glukozy. Filtrowane z prędkością 0,22 μm

Tagi

Próby stresowemikroskopia fazokontrastowaobrazowanie time-lapseładowanie komórekpożywka z antybiotykiemkomórki nitkowatezawartość DNAstolik mikroskopu