Artykuł metodologiczny

Procedura oczyszczania białka znakowanego polihistydyną ze Streptococcus mutans

478 wyświetleń

30 października 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Murata, T., et al. Oczyszczanie białka o wysokiej masie cząsteczkowej w Streptococcus mutans. J. Vis. Exp. (2019)

Ten film pokazuje krok po kroku procedurę oczyszczania białka znakowanego polihistydyną wydzielanego przez Streptococcus mutans.

Protokół

  1. Skoncentrować białka z supernatantu hodowli przez wytrącanie siarczanu amonu.
    NUTA: Ekstrakt z ciał komórkowych, jeśli białko docelowe jest wewnątrzkomórkowe.
    1. Zawiesinę kultury bakterii (Streptococcus mutans) odwirować przez 20 minut w temperaturze 10 000 x g w temperaturze 4 °C. Odzyskać supernatant kultury do szklanej zlewki o pojemności 3 l.
    2. Dodać 1,122 g siarczanu amonu do 2 l supernatantu (80% nasycenia), energicznie mieszając za pomocą mieszadła magnetycznego. Pozostawić osad do uformowania się osadu przez 4 godziny lub dłużej w temperaturze 4 °C, mieszając.
      NUTA: Tworzenie osadu można kontynuować przez noc.
    3. Odwirować roztwór wytrącony siarczanem amonu o stężeniu 15 000 x g przez 20 minut w temperaturze 4 °C. Zdekantować supernatant.
    4. Zebrać osad szpatułką i przenieść do szklanej zlewki o pojemności 200 ml. Zawiesić osady w 35 ml buforu wiążącego (50 mM NaH2PO4, 300 mM NaCl, 5 mM imidazolu, pH 8,0).
    5. Zawiesinę należy dializować w stosunku do 2 500 ml buforu wiążącego za pomocą rurki do dializy z regenerowanej celulozy, w temperaturze 4 °C, mieszając. Po 2 godzinach należy wymienić roztwór do dializy i kontynuować dializę przez noc.
    6. Ponownie wymienić roztwór dializacyjny. Kontynuuj dializę przez dodatkowe 2 godziny.
  2. Odwirować dializowaną zawiesinę o stężeniu 20 000 x g przez 10 minut w temperaturze 4 °C. Przefiltrować supernatant przez filtr membranowy za pomocą sprzętu do filtracji ssącej. Przenieść filtrat do kolby o średnicy75 cm2 .
  3. Frakcjonować glukozylotransferazę-SI ZNAKOWANĄ POLIHISTYDYNĄ (GTF-SI) z przefiltrowanej zawiesiny metodą chromatografii powinowactwa do metali immobilizowanych (IMAC).
    1. Przenieść 2 ml zawiesiny żywicy IMAC z ładunkiem niklu (około 1 ml żywicy) do kolumny chromatograficznej, której wylot jest podłączony do rurki silikonowej. Usunąć roztwór do przechowywania za pomocą przepływu grawitacyjnego.
      OSTROŻNOŚĆ: Nie pozwól, aby żywica wyschła w całym IMAC.
    2. Dodaj 3 ml wody destylowanej do kolumny, aby przepłukać żywicę. Dodać 5 ml buforu wiążącego, aby zrównoważyć żywicę.
    3. Odciąć przepływ za pomocą kurka szczypcowego Hoffmanna. Dodać 5 ml przefiltrowanej zawiesiny z kroku 2, aby uzyskać zawiesinę.
    4. Dodać całą gnojowicę do pozostałej przefiltrowanej zawiesiny. Delikatnie mieszać mieszaninę przez 30 minut w temperaturze 4 °C.
    5. Załaduj mieszaninę z powrotem na kolumnę. Usunąć zawiesinę za pomocą przepływu grawitacyjnego. Przemyć żywicę IMAC 20 ml buforu wiążącego.
      NUTA: Dostosuj natężenie przepływu do około 2 ml/min za pomocą kurka zaciskowego Hoffmann przez cały kolejny IMAC.
    6. Eluować rekombinowany GTF-SI za pomocą 20 ml buforu elucyjnego (50 mM NaH2PO4, 300 mM NaCl, 500 mM imidazolu, pH 8,0).
      NUTA: W tym miejscu protokół można wstrzymać. Eluat należy przechowywać w temperaturze 4 °C. Żywica IMAC może być ponownie użyta.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Odśrodkowa jednostka ultrafiltracjiSartorius Sartorius (Wyspa SarVS2032 powiedział:Wymiana buforu i zagęszczenie białka
WirówkaKubotaZobacz materiał 7780II 
Kolumna chromatograficznaBio-Rad7321010Dla IMAC
Zacisk membranowy do dializyMarka Fisher21-153-100 
Rurki do dializyJako jedność2-316-06 
ImidazolWako095-00015Przygotowanie buforu wiążącego i buforu elucyjnego
InkubatorInstrumenty medyczne i chemiczne NipponLH-100-RDSUstawienie temperatury: 37 °C
MikrowirówkaKubota3740 
Chlorek soduWako191-01665Przygotowanie buforu wiążącego i buforu elucyjnego
Diwodorofosforan sodu dwuwodnyWako192-02815Przygotowanie buforu wiążącego i buforu elucyjnego
Wodorotlenek soduWako198-13765Przygotowanie buforu wiążącego i buforu elucyjnego
Siarczan amonuWako015-06737Wytrącanie siarczanu amonu
Żywica naładowana niklemBio-Rad1560133Dla IMAC
Filtr membranowyMerck MilliporeJGWP04700Średnica 0,2 μm

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Wytr canie siarczanem amonuywica powinowactwa na adowana niklemchromatografia powinowactwa do zimmobilizowanych jon w metalibufor wi cybufor elucyjnymembrana dializacyjnawirowaniefiltracja

Powiązane artykuły