1. Przygotowanie szklanych koralików
- Umieść 100 szklanych koralików o średnicy 3 mm w butelce laboratoryjnej o pojemności 100 ml, a następnie szczelnie ją zakorkuj.
- Zawartość należy sterylizować w autoklawie w temperaturze 120 °C przez 10 min.
- Pozostaw butelkę do ostygnięcia do temperatury pokojowej, a następnie umieść ją w szafie bezpieczeństwa biologicznego.
2. Przygotowanie bulionu lizogennego (LB)
- Rozpuść 8 g proszku bulionu LB-Lennox w butelce laboratoryjnej o pojemności 500 ml z 400 ml wody.
- Mieszaj zawartość za pomocą mieszadła magnetycznego z politetrafluoroetylenu (PTFE) przez 20 minut, a następnie szczelnie zakrępuj.
- Zawartość należy sterylizować w autoklawie w temperaturze 120 °C przez 10 min.
- Pozostaw roztwór do ostygnięcia do temperatury pokojowej i umieść go w komorze bezpieczeństwa biologicznego.
- Za pomocą pipety przelej bulion na osiem 15 ml probówek wirówkowych (po 12,5 ml każda) w komorze bezpieczeństwa biologicznego.
- Pozostałą ilość bulionu rozmieścić w trzech butelkach laboratoryjnych o pojemności 100 ml w komorze bezpieczeństwa biologicznego (każda o pojemności 100 ml każda). Szczelnie zakręć trzy butelki. Przechowuj je w komorze bezpieczeństwa biologicznego.
3. Kultura glonów Shewanella
- Użyj głęboko zamrożonego szczepu kriokonserwowanego.
- W komorze bezpieczeństwa biologicznego za pomocą szpatułki ze stali nierdzewnej pobrać 1 ml zamrożonego materiału z zamrożonej probówki i umieścić go w probówce wirówkowej przygotowanej w kroku 3.5.
- Inkubować kultury przez 24 godziny w inkubatorze o temperaturze 37 °C.
4. Przygotowanie szalek Petriego LB-Lennox (rosół z agarem)
- Rozpuść dwie tabletki LB-Lennox (bulion z agarem) w 100 ml butelce laboratoryjnej ze 100 ml wody.
- Mieszaj zawartość za pomocą mieszadła magnetycznego z PTFE przez 20 minut, a następnie szczelnie przykryj.
- Zawartość należy sterylizować w autoklawie w temperaturze 120 °C przez 10 min.
- W komorze bezpieczeństwa biologicznego ręcznie rozlej 100 ml roztworu na 4 szalki Petriego, upewniając się, że każda z nich otrzyma ~25 ml. Pozostaw roztwór do ostygnięcia do temperatury pokojowej.
5. Przygotowanie bakterii monoklonalnych
- W komorze bezpieczeństwa biologicznego oznacz trzy butelki przygotowane odpowiednio w kroku 2.6, #1, #2 i #3.
- Odpipetować 0,1 ml powstałej zawiesiny bakteryjnej w kroku 3.3 do butelki #1. Zakręć butelkę i obracaj nią ręcznie przez 1 minutę, aby uzyskać jednorodny roztwór.
- Odpipetować 0,1 ml powstałego płynu bakteryjnego w kroku 5.2 do butelki #2. Zakręć butelkę i obracaj nią ręcznie przez 1 minutę, aby uzyskać jednorodny roztwór.
- Odpipetować 0,1 ml powstałego płynu bakteryjnego w kroku 5.3 do butelki #3. Zakręć butelkę i potrząsaj nią ręcznie przez 1 minutę, aby uzyskać jednorodny roztwór.
- Odpipetować płyn z butelki #3 do 4 szalek Petriego przygotowanych w kroku 4.4, używając objętości 0,02 ml każda.
- Umieść szklane koraliki przygotowane w kroku 1.3 do 4 używanych szalek Petriego, po 4 koraliki w każdym naczyniu.
- Zamknij pokrywki szalek Petriego i potrząsaj nimi ręcznie przez 1 minutę.
- Odwrócić szalki Petriego do góry nogami i inkubować w inkubatorze o temperaturze 37 °C przez 24 godziny.
6. Namnażanie bakterii monoklonalnych
- Pobierz 7 probówek przygotowanych w kroku 2.5.
- Za pomocą szpatułki ze stali nierdzewnej należy wybrać powstałe bakterie monoklonalne z 4 szalek Petriego przygotowanych w kroku 5.8 i umieścić je osobno w 7 probówkach.
- Pozostawić 7 probówek w inkubatorze o temperaturze 37 °C na 24 godziny.
- Wybierz ten z największym rozproszeniem światła za pomocą wizualnej metody kolorymetrycznej.