Artykuł metodologiczny

Synchronizacja kultur sinic i zagęszczenie DNA napędzane przez cykle światło-ciemność

30 października 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Murata, K. i wsp., Wizualizacja zagęszczenia DNA u cyjanobakterii za pomocą wysokonapięciowej krioelektronowej tomografii. J. Vis. Exp. (2018)

Ten film pokazuje synchroniczną hodowlę cyjanobakterii w cyklach światła i ciemności w celu zbadania regulowanego okołodobowo zagęszczenia DNA. Mikroskopia fluorescencyjna ujawnia skondensowane DNA w określonych punktach czasowych, potwierdzając wyrównanie cyklu komórkowego w całej populacji.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Synchroniczna hodowla sinic

  1. Kultura Synechococcus elongatus PCC 7942 na wysterylizowanej niebiesko-zielonej pożywce 11 (BG 11) (na sterylnej plastikowej szalce Petriego o średnicy 9 cm) zawierającej 1,5% (m/v) agaru i 0,3% (w/v) tiosiarczanu sodu.
  2. Umieścić płytki w komorze wzrostowej w temperaturze 23 °C o natężeniu światła 50 μE/m2/s i poddać je cyklom 12 godzin światła/12 godzin ciemności.
  3. Raz w tygodniu przenieś komórki na świeże płytki agarowe BG11.
    NUTA: Kultury na agarze pojawią się jako zielone pasma aktywnie proliferujących komórek po tygodniu w tych warunkach hodowli.
  4. Weź zielone grudki komórek za pomocą wysterylizowanej płomieniem drucianej pętli i rozłóż komórki na świeżej płytce agarowej BG11. Zrób to na czystej ławce.

2. Monitorowanie za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej

  1. Użyj komórek hodowanych na płytce agarowej przez 6 dni, aby obserwować zagęszczenie DNA. Zebrać komórki z płytki pod koniec okresu światła, wlewając 1 ml 0,2 M roztworu sacharozy na komórki. Powtórz wlewanie roztworu na komórki, tak aby większość komórek została zebrana. Przenieś roztwór zawieszonych komórek do mikroprobówki w celu barwienia DNA.
  2. Dodać roztwór barwnika barwiącego DNA (np. Hoechst 33342) do 500 μl zawieszonego roztworu komórkowego w mikroprobówce do końcowego stężenia 1 μg/ml. Następnie trzymaj probówkę w ciemności przez 10 minut.
  3. Wirować przez 1 minutę przy 2 000 x g w celu osadzenia komórek. Odrzucić supernatant i dodać 10 μl 0,2 M roztworu sacharozy w celu uzyskania gęstej zawiesiny komórek.
  4. Przenieść 1 μl roztworu zawierającego wybarwione komórki do szkiełka szkiełkowego, nałożyć szkiełko nakrywkowe i obserwować za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego wyposażonego w filtr ultrafioletowy (UV) przy użyciu soczewki obiektywowej o powiększeniu 100X i olejku immersyjnego.
  5. Upewnij się, że w tym momencie w większości komórek obserwuje się zagęszczenie DNA.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Roztwór Hoechst 33342Dojindo powiedział:346-079511mg/ml w wodzie
Proszek agarowy (do hodowli roślin)Wako016-11875 
Kwas borowyWako027-02192 
Chlorek manganu czterowodnyWako139-00722 
Siarczan siedmiowodnyWako264-00405 
Molibdenian soduWako196-02472 
Siarczan miedzi pięciowodnyWako039-04412 
Azotan kobaltu sześciowodnyWako031-03752 
Azotan soduWako191-02542 
Siarczan magnezu siedmiowodnyWako131-00405 
Chlorek wapnia odwodnionyWako031-00435 
Kwas cytrynowyWako036-05522 
EDTA-2NaDojindo powiedział:343-01861 
Węglan soduWako197-01581 
Fosforan potasu dwuzasadowyWako164-04295 
TES (bufor Good's buffer)Dojindo powiedział:344-02653 
Cytrynian żelazowo-amonowyWako092-00802 
Tiosiarczan sodu pięciowodnyWako197-03585 
Mikroskop fluorescencyjnyNikonZAĆMIENIE 50i 

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

mikroskopia fluorescencyjnaregulacja oko odobowasynchronizacja kom reksuplementacja tiosiarczanembarwienie Hoechstemroztw r sacharozyobiektyw imersyjny olejowy

Powiązane artykuły