Ten film demonstruje oczyszczanie rekombinowanego białka oznaczonego polisystydyną za pomocą chromatografii powinowactwa na bazie niklu. Określa kluczowe kroki, w tym lizę bakteryjną przez sonikację, klarowanie i filtrację lizatu oraz selektywne wiązanie i eluację docelowego białka za pomocą imidazolu.
Protokół
1. Oczyszczanie RTA oznaczonego Hisem za pomocą chromatografii powinowactwa
Komórki sonikowe na lodzie według następującego protokołu: 15 sekund impulsu (20 mikronów), 30 sekund przerwy. Powtórz ten krok pięć razy.
Lizat z ogniwa wirówkowego w stężeniu 21 000 x g i 4 °C przez 15 minut oraz filtrujący supernatant za pomocą sterylnego systemu filtra strzykawkowego (o rozmiarze porów 0,2 μm). NUTA: Osadki komórkowe z udanych próbek sonikowanych mają przezroczyste brzegi.
Użyj zautomatyzowanego systemu oczyszczania wyposażonego w kolumnę powinowactwa opartą naNi-2+ o pojemności 5 mL do oczyszczania frakcji RTA oznaczonej Hisem z sterylnie filtrowanego supernatantu E. coli. Ogólnie używaj prędkości elucii 1 mL/min i chłodzi cały system oczyszczania, aby zapobiec nieefektywnemu wiązaniu toksyn i utracie aktywności toksyn. NUTA: Parametry efektywnego oczyszczania RTA są wymienione w Tabeli 1.
Krótko mówiąc, wyrównaj kolumnę powinowactwa z 20 mL bufora wiązania, aby usunąć bufor magazynowy. Nałóż sterylnie filtrowany supernatant na kolumnę afinitetową za pomocą strzykawki.
Przemyj kolumnę 25-35 ml buforu wiążącego, aby usunąć niezwiązane białka z kolumny. Wykonuj proces mycia aż absorpcja UV na 280 nm zbliży się do początkowej wartości UV.
Frakcja RTA wiązana elutem w 20-35 mL buforu elucijnego (500 mM imidazol, 500 mM NaCl, 20 mM KH2PO4, pH = 7,2) i trzyma próbkę na lodzie (rysunek 1A i rysunek 1B). NUTA: Eluacja ułamku RTA charakteryzuje się wzrostem absorpcji promieni UV. Prosimy pamiętać, aby zbierać wyłącznie tę frakcję, aby zapobiec zanieczyszczeniu białkami niespecyficznymi wiązanymi.
Tabela 1: Parametry stosowane do oczyszczania i odsalania opartego na kolumnach. Lista wszystkich istotnych ustawień kolumny (np. przepływ, stężenie bufora elucijnego, równowaga i czas trwania kroku płukania) oraz zmierzone parametry (np. przewodność lub absorpcja UV).
Parametr chromatografii powinowactwa
Parametry pomiarowe
UV (280 nm), stężenie buforu elution, przewodność
Ustawienia
Zmienna/jednostka
Wartość
Przepływ
mL/min
1
Maksymalne ciśnienie kolumnowe
Mpa
0.35
Długość fali
Nm
280 nm
Bufor wiązania
Pozycja pompy
A
Bufor elucijny
Pozycja pompy
B
Bufor elucijny koncentracji początkowej
%
0
Kompensacja objętości systemu
Ml
10
Równowaga kolumnowa
Ml
20
Podawanie próbki przez superloop/strzykawkę
Ml
Objętość lizatu komórkowego
Etap mycia
Ml
20-35
Etap elucii
Ml
20-35
Bufor elucijny koncentracji podczas elucii
%
100
Rekalibracja kolumny z 20% EtOH
Ml
50
Parametr odsalania
Parametry pomiarowe
UV (280 nm), przewodność
Ustawienia
Zmienna/jednostka
Wartość
Przepływ
mL/min
4
Maksymalne ciśnienie kolumnowe
Mpa
0.35
Długość fali
Nm
280 nm
Bufor wiązania
Pozycja pompy
A
Bufor elucijny
Pozycja pompy
B
Bufor elucijny koncentracji początkowej
%
0
Kompensacja objętości systemu
Ml
10
Równowaga kolumnowa
Ml
20
Podawanie próbki przez superloop/strzykawkę
Ml
Objętość lizatu komórkowego
Wtrysk buforu odsolonego (0,8 M sorbitol)
Ml
100
Rekalibracja kolumny z 20% EtOH
Ml
50
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Wyniki
Rysunek 1: Reprezentatywne wyniki chromatografii powinowactwa i odsalania komórek E. coli zawierających pET-RTA(His)6 lub kontroli wektora pustego. (A) Typowy wykres oczyszczania próbki ...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.