Wszystkie procedury związane z pobieraniem próbek zostały przeprowadzone zgodnie z wytycznymi IRB instytutu.
OSTROŻNOŚĆ: Zapoznaj się z odpowiednimi kartami danych charakterystyki materiałów oraz postępuj zgodnie z instrukcjami i wytycznymi dotyczącymi odpowiedniego szkolenia z zakresu bezpieczeństwa biologicznego poziomu 2 (BSL-2). Przestrzegaj wszystkich kroków hodowli zgodnie ze standardowymi zasadami bezpieczeństwa biologicznego i używaj szafki BSL-2 w warunkach aseptycznych. Ponadto próbki kału z różnych modeli i z różnych osób mogą wiązać się z potencjalnym ryzykiem rozprzestrzeniania chorób przenoszonych przez mikroorganizmy. W razie urazu lub infekcji natychmiast zgłoś się po pomoc medyczną. Ponadto stosowanie próbek kału ludzkiego i zwierzęcego powinno być zatwierdzone przez instytucjonalne komisje etyczne oraz musi być zgodne z protokołami dotyczącymi wykorzystania próbek i informacji o badanych organizmach.
1. Przygotowanie mediów kulturowych
- Przygotowanie mediów kulturowych, przygotowanie dziewięciu typów roztworów stockowych:
- Roztwór A (1 000 mL): Rozpuszcz 5,4 g chlorku sodu (NaCl), 2,7 g diwodoru potasu (KH2PO4), 0,16 g chlorku wapnia (CaCl2,2H 2O), 0,12 g heksahydratu chlorku magnezu (MgCl2,6H 2O), 0,06 g chlorku manganu (MnCl2,4H 2O), 0,06 g heksahydratu chlorku kobaltu (CoCl2,6H 2O) oraz 5,4 g siarczanu amonu (NH4)2SO4 w wodzie dejonizowanej, aby całkowita objętość wzrosła do 1 000 mL.
- Roztwór B (1 000 mL): Rozpuszcz 2,7 g fosforanu potasu (K2HPO4) w wodzie dejonizowanej, aby całkowita objętość wyniosła 1000 mL.
- Roztwór mineralny śladowy (1 000 mL): Rozpuścić 500 mg dihydratu disody etylendyaminy-tetraacetana (Na2EDTA), 200 mg heptahydratu siarczanu żelaza (FeSO4,7H 2O), 10 mg heptahydratu siarczanu (ZnSO 4,7H2O), 3 mg chlorku manganu(II) (MnCl2,4H 2O), 30 mg kwasu fosforowego (H3PO4), 20 mg CoCl2,6H 2O, 1 mg chlorku miedzi (CuCl 2,2H2O), 2 mg heksahydratu chlorku niklu(II) (NiCl2,6H 2O) oraz 3 mg dwuwęglanu sodu (Na2MoO4,2H 2O) w wodzie dejonizowanej, aby całkowita objętość wyniosła 1 000 mL.
NUTA: Roztwór ten jest światłoczuły, dlatego należy przechowywać go w tubkach/butelkach owiniętych ciemno/czarnym lub aluminiowym. - Roztwór witaminowy rozpuszczalny w wodzie (1 000 mL): Rozpuścić 100 mg chlorku tiaminy (Thiamin-HCl), 100 mg kwasu D-pantotenowego, 100 mg niacyny, 100 mg pirydoksyny, 5 mg kwasu P-aminobenzoowego oraz 0,25 mg witaminy B12 w wodzie dejonizowanej, aby uzyskać całkowitą objętość do 1 000 mL.
- Folian: roztwór biotyny (1 000 mL): rozpuszcz 10 mg kwasu foliowego, 2 mg D-biotyny i 100 mg wodorowęglanu amonu (NH4HCO3) w wodzie dejonizowanej, aby uzyskać całkowitą objętość do 1 000 mL.
- Roztwór ryboflawiny (1 000 mL): Rozpuszcz 10 mg ryboflawiny w roztworze HEPES 5 mM (4-(2-hydroksyetylo)piperazyna-1-kwas etansulfonowy) (1,19 g/L), aby uzyskać całkowitą objętość do 1000 mL.
- Roztwór Heminu (10 mL): Rozpuszcz 5 000 mg Heminu w roztworze 10 mM wodorotlenku sodu (NaOH) (0,4 g/L), aby uzyskać całkowitą objętość do 10 mL.
- Mieszanka kwasów tłuszczowych o krótkich łańcuchach (10 mL): Połącz 2,5 mL N-walerynianu, 2,5 mL izowalanianu, 2,5 mL izobutyranu oraz 2,5 mL: DL-α-metylombutyran.
NUTA: Zaleca się stosowanie tego rozwiązania w okapie oparowym, aby uniknąć zapachu i oparów. - Rezazuryna (1 000 mL): Rozpuszcz 1 g resazuryny w wodzie dejonizowanej i zwiększ całkowitą objętość do 1 000 mL.
- Podłoże stosowane do fermentacji beztlenowej in vitro
- Aby przygotować ten materiał, wymieszaj 330 mL roztworu A, 330 mL Roztworu B, 10 mL roztworu mineralnego śladowego, 20 mL roztworu witaminowego rozpuszczalnego w wodzie, 5 mL kwasu foliowego: roztwór biotyny, 5 mL roztworu ryboflawiny; 2,5 mL roztworu Hemin, 0,4 mL mieszanki krótkołańcuchowych kwasów tłuszczowych, 1 mL Resazuriny, 0,5 g ekstraktu drożdżowego, 4 g węglanu sodu (Na2CO3), 0,5 g cysteiny HCl-H2O oraz 0,5 g tryptykazy oraz dodaj 296,1 mL wody destylowanej.
- Sprawdź pH i upewnij się, że jest około 7,0; jeśli nie, dostosuj pH o 1 N HCl lub 1 N NaOH. Sterylizuj przez filtrowanie próżniowe medium za pomocą filtra butelkowego pod stanowiskiem aseptycznym.
- Alternatywnie, wymieszaj wszystkie składniki (oprócz witamin i roztworów heminowych) i autoklaw w 121 °C przez 20 minut, pozwól ostygnąć do temperatury pokojowej. Jednocześnie filtruj i sterylizuj roztwory witaminowe i hemin za pomocą filtrów membranowych o pojemności 0,22 μm i dodaj je do autoklawowanego i schłodzonego medium przed podawaniem.
2. Przygotowanie komory beztlenowej i potrzebnych materiałów
- Wszystkie materiały, roztwory i narzędzia potrzebne do eksperymentu fermentacyjnego przechowywać w komorze beztlenowej co najmniej 48 godzin przed rozpoczęciem eksperymentu, aby zapewnić usunięcie resztkowego tlenu związanego z narzędziami oraz rozpuszczalnego tlenu w/roztworach oraz aklimatyzację wszystkich materiałów do ustalonych warunków beztlenowych.
NUTA: Materiały potrzebne wewnątrz komory beztlenowej (48 godzin wcześniej od rozpoczęcia eksperymentu): (i) medium fermentacyjne; (ii) roztwór beztlenowy (przygotowany zgodnie z sekcją 4.1), (iii) vortexer, (iv) waga wagowa, (v) muślinowe serówki, (vi) nożyczki, (vii) lejek, (viii) probówki 1,5, 2,0, 15, 50 mL, (ix) pipetor (2, 20, 200 i 1 000 μL) oraz kompatybilne końcówki do pipetów, (x) pipety i pipety pistoletowe (5 i 10 mL), (xi) chusteczki papierowe, (xii) markery, (xiii) rurki oznaczające różne rurki, (xiv) pojemnik na odpady, (xv) wskaźnik O2 oraz (xvi) butelka z rozpylaczem etanolu 70% (środek dezynfekujący).
3. Przygotowanie rurek i włókien
- Waż 300 mg inuliny i przelej do probówki 50 mL, a następnie dodaj aseptycznie 26 ml już przygotowanego i przechowywanego w komórze beztlenowej 26 mL podłoża fermentacyjnego. Przygotuj jedną pustą probówkę dla każdego typu próbki kału oraz probówki eksperymentalnej (w zależności od liczby testowanych związków), w trzech egzemplarzach.
- Zostaw te probówki w komorze beztlenowej na około 24 godziny, aby umożliwić nawodnienie próbek przed rozpoczęciem eksperymentu fermentacyjnego. Upewnij się, że temperatura w rurce wynosi 37 °C w momencie szczepienia, dlatego przenieś rurki do inkubatora zamknięte w komorze beztlenowej.
4. Przygotowanie inokulum
- Roztwór beztlenowy rozcieńczający (co najmniej 48 godzin przed eksperymentem fermentacyjnym): Rozpuścić 5 g NaCl, 2 g glukozy i 0,3 g cysteiny-HCl w wodzie dejonizowanej, aby całkowita objętość wynieść 1 000 mL. Autoklawuj i przechowuj go w komorze beztlenowej co najmniej 48 godzin przed użyciem.
- Przygotowanie inokulum kału (w dniu eksperymentu fermentacyjnego): Waż 5 g świeżej próbki kału w stożkowej probówce o pojemności 50 mL, dodaj beztlenowy roztwór rozcieńczający do końcowej objętości 50 mL (1:10 w/v) i wiruj przez 15 minut lub do całkowitej homogenizacji. Przefiltruj zhomogenizowaną mieszankę przez 4 warstwy sterylnej gazy (autoklawowej) i natychmiast użyj jej do inokulacji w probówkach zawierających media.
NUTA: Próbki kału z grupy osób można połączyć, jeśli celem eksperymentu jest porównanie wpływu danego związku/składnika na ogólnie zdrową i chorą mikrobiotę kałową.
5. Fermentacja i próbkowanie
- Przygotuj probówki zgodnie z sekcją 4.2 oraz inokuluj białe i kontrolne oraz eksperymentalne z 4 mL rozcieńczonego i przefiltrowanego inokulum kałowego. Inkubuj zaszczepione rurki w temperaturze 37 °C wewnątrz komory beztlenowej. Potrząśnij rurkami raz na godzinę, delikatnie odwracając je do tyłu, aby ponownie zawiesić włókna i inokulum.
- Pobieraj próbki tak często, jak to konieczne, na przykład co godzinę do 0, 3, 6, 9 i 24 godzin podczas fermentacji, pobierając próbkę aliquotu 2 mL do probówki 2 mL z odpowiednich probówek fermentującej.
- Zmierz pH aliquotów za pomocą laboratoryjnego miernika pH (poprzez bezpośrednie włożenie elektrody pH do próbki); wiruj pozostałą próbkę w stężeniu 14 000 x g przez 10 minut w temperaturze 4 °C. Natychmiast zamrażaj supernatant i granulat w ciekłym azocie, a po zamrożeniu przechowuj supernatant do analizy SCFA (krótkołańcuchowych kwasów tłuszczowych) oraz granulat do analizy mikrobiomu w -80 °C.