Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Mikrotlenowa fermentacja hydrolizatu bambusowego przez Klebsiella pneumoniae

432 wyświetleń

28 listopada 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Wei, D. i in., Produkcja chemikaliów przez Klebsiella pneumoniae z użyciem hydrolizatu bambusowego jako surowca. J. Vis. Exp. (2017)

Ten film demonstruje mikrobiologiczną przemianę cukrów pochodzących z bambusa w 2,3-butanediol poprzez hodowanie Klebsiella pneumoniae w ośrodku opartym na hydrolizacie w warunkach mikroaerobowych i lekko kwaśnych.

Protokół

1. Produkcja 2,3-butanediolu przez dziki typ K. pneumoniae

  1. Do przygotowania medium używaj 3 litrów hydrolizatu bambusowego jako rozpuszczalnika.
  2. Przygotuj medium fermentacyjne zawierające 4 g/L kukurydzianego napoju do zaparzania, 2 g/L (NH4)2SO4, 6 g/L K2HPO4, 3 g/L KH2PO4 oraz 0,2 g/L MgSO4. Reguluj pH medium na neutralne za pomocą 2,5 M NaOH. Do fermentacji użyj bioreaktora 5-litrowego zawierającego 3 litry podłoża fermentacyjnego z autoklawą.
  3. Używaj komórek K. pneumoniae przechowywanych w lodówce o niskiej temperaturze -80°C.
  4. Do hodowli nasion inkubuj kolbę 250 mL zawierającą 50 ml medium Luria-Bertani (LB) przez noc w temperaturze 37 °C, wstrząsając przy 200 obr./min. Użyj medium LB zawierającego 10 g/L tryptonu, 5 g/L ekstraktu drożdżowego oraz 10 g/L NaCl. NUTA: Gęstość komórek kultury nasion powinna osiągnąć OD 2 (gęstość optyczna 600 nm).
  5. Zaszczep jedną kolbę o pojemności 50 mL kultury nasion w bioreaktorze. Utrzymuj hodowlę przy pH 6,0 i 37 °C. Stosuj tempo suplementacji powietrzem 2 L/min oraz tempo mieszania 250 obr./min, tworząc warunki mikrotlenowe.
  6. Pobieraj 5 ml próbek co 2 godziny podczas fermentacji i analizuj je za pomocą wysokociśnieniowej chromatografii cieczowej, aby określić stężenia chemiczne w bulionie.
  7. Monitoruj zasady dodawane do bioreaktora online, korzystając z systemu mikrobiologicznych ogniw paliwowych/akwizycji danych lub MFCS/DA.
    NUTA: W procesie fermentacji powstają kwasy organiczne, a NaOH jest dodawany, aby utrzymać stabilne pH hodowli. Objętość dodanego zasadu odzwierciedla ilość wytworzonego kwasu. Gdy linia z dodatkiem alkalicznym osiąga plateau, proces kończy się, czy to z powodu wyczerpania się źródeł węgla, czy śmierci komórki.

2. Produkcja R-acetoiny przez mutanta budC K. pneumoniae

  1. Przygotuj podłoże do produkcji acetoiny zawierające 4 g/L parzenia kukurydzianego, 2 g/L (NH4)2SO4, 3 g/L octana sodu, 0,4 g/L KCl oraz 0,1 g/L MgSO4.
  2. Do produkcji R-acetoiny używaj K. pneumoniae-ΔbudC. Powtórz kroki 1.4-1.5.
    UWAGA: budC koduje dehydrogenazę 2,3-butanediol. K. pneumoniae-ΔbudC traci aktywność dehydrogenazy 2,3-butanediol i produkuje R-acetoinę zamiast 2,3-butanediolu.
  3. Utrzymuj hodowlę przy pH 6,0 i 37 °C. Stosuj tempo suplementacji powietrzem 4 L/min oraz tempo mieszania 450 obr./min, co jest warunkiem tlenowym.
    NUTA: Suplementacja tlenu jest wyższa niż produkcja 2,3-butanediolu.
  4. Przeanalizuj próbki zgodnie z krokiem 1.6.

3. Produkcja kwasu 2-ketoglukonowego przez mutanta budA K. pneumoniae

  1. Do produkcji kwasu 2-ketoglukonowego używaj tego samego medium co do produkcji R-acetoiny.
  2. Do produkcji kwasu 2-ketoglukonowego stosuj K. pneumoniae-ΔbudA . Powtórz kroki 1.4-1.5.
    UWAGA: budA koduje dekarboksylazę α-acetolaktianu. K. pneumoniae-ΔbudA traci aktywność dekarboksylazy α-acetolaktianu i produkuje kwas 2-ketoglukonowy, wykorzystując glukozę jako podłoże.
    UWAGA: Synteza kwasu 2-ketoglukonowego jest procesem zależnym od warunków kwasowych. Opracowano fermentację dwustopniową do produkcji kwasu 2-ketoglukonowego; W pierwszym etapie kultura nasion jest zaszczepiana do bioreaktora.
  3. Utrzymuj hodowlę przy pH 7,0 i 37 °C. Stosuj częstotliwość uzupełniania powietrza 4 L/min oraz mieszanie 500 obr./min.
    NUTA: W takich warunkach komórki rosną bardzo szybko (gęstość komórek osiąga OD 7 w około 4 godziny). Następnie fermentacja przechodzi do drugiego etapu, podczas którego pH kultury spada do 5,0. Nie dodaje się kwasu; kwasy organiczne produkowane w hodowli naturalnie prowadzą do obniżenia pH. W tych kwaśnych warunkach wzrost komórek zatrzymuje się, ale w bulionie powstaje kwas 2-ketoglukonowy, który gromadzi się w bulionie.
  4. Przeanalizuj próbki zgodnie z krokiem 1.6. Wykorzystanie hydrolizatu bambusa jako źródła węgla.
    NUTA: Glukoza w podłożu przekształca się w kwas 2-ketoglukonowy, a ksyloza w kwas ksylonowy. W ten sposób otrzymuje się mieszaninę kwasu 2-ketoglukonowego i ksylonowego.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
AutoklawSANYO3780 
BioreaktorSartorius stedim biotechBostat Aplus 
AgitatorIKARW 20 
System wysokowydajnego chromatografu ciekłegoShimadzu Corp20AVP 
Proszek bambusowyZakupiony od prowincji Zhejiang, Chiny Numer siatki, 50
CelulazaPowiedz Biochemical, Shandong, Chiny 200 PFU/mL

Tagi

Produkcja 23-butanodioluhodowla w bioreaktorzekontrola pHwarunki tlenoweutylizacja ksylozymetabolizm glukozyprzygotowanie kultury nasiennej