1. Produkcja 2,3-butanediolu przez dziki typ K. pneumoniae
- Do przygotowania medium używaj 3 litrów hydrolizatu bambusowego jako rozpuszczalnika.
- Przygotuj medium fermentacyjne zawierające 4 g/L kukurydzianego napoju do zaparzania, 2 g/L (NH4)2SO4, 6 g/L K2HPO4, 3 g/L KH2PO4 oraz 0,2 g/L MgSO4. Reguluj pH medium na neutralne za pomocą 2,5 M NaOH. Do fermentacji użyj bioreaktora 5-litrowego zawierającego 3 litry podłoża fermentacyjnego z autoklawą.
- Używaj komórek K. pneumoniae przechowywanych w lodówce o niskiej temperaturze -80°C.
- Do hodowli nasion inkubuj kolbę 250 mL zawierającą 50 ml medium Luria-Bertani (LB) przez noc w temperaturze 37 °C, wstrząsając przy 200 obr./min. Użyj medium LB zawierającego 10 g/L tryptonu, 5 g/L ekstraktu drożdżowego oraz 10 g/L NaCl. NUTA: Gęstość komórek kultury nasion powinna osiągnąć OD 2 (gęstość optyczna 600 nm).
- Zaszczep jedną kolbę o pojemności 50 mL kultury nasion w bioreaktorze. Utrzymuj hodowlę przy pH 6,0 i 37 °C. Stosuj tempo suplementacji powietrzem 2 L/min oraz tempo mieszania 250 obr./min, tworząc warunki mikrotlenowe.
- Pobieraj 5 ml próbek co 2 godziny podczas fermentacji i analizuj je za pomocą wysokociśnieniowej chromatografii cieczowej, aby określić stężenia chemiczne w bulionie.
- Monitoruj zasady dodawane do bioreaktora online, korzystając z systemu mikrobiologicznych ogniw paliwowych/akwizycji danych lub MFCS/DA.
NUTA: W procesie fermentacji powstają kwasy organiczne, a NaOH jest dodawany, aby utrzymać stabilne pH hodowli. Objętość dodanego zasadu odzwierciedla ilość wytworzonego kwasu. Gdy linia z dodatkiem alkalicznym osiąga plateau, proces kończy się, czy to z powodu wyczerpania się źródeł węgla, czy śmierci komórki.
2. Produkcja R-acetoiny przez mutanta budC K. pneumoniae
- Przygotuj podłoże do produkcji acetoiny zawierające 4 g/L parzenia kukurydzianego, 2 g/L (NH4)2SO4, 3 g/L octana sodu, 0,4 g/L KCl oraz 0,1 g/L MgSO4.
- Do produkcji R-acetoiny używaj K. pneumoniae-ΔbudC. Powtórz kroki 1.4-1.5.
UWAGA: budC koduje dehydrogenazę 2,3-butanediol. K. pneumoniae-ΔbudC traci aktywność dehydrogenazy 2,3-butanediol i produkuje R-acetoinę zamiast 2,3-butanediolu. - Utrzymuj hodowlę przy pH 6,0 i 37 °C. Stosuj tempo suplementacji powietrzem 4 L/min oraz tempo mieszania 450 obr./min, co jest warunkiem tlenowym.
NUTA: Suplementacja tlenu jest wyższa niż produkcja 2,3-butanediolu. - Przeanalizuj próbki zgodnie z krokiem 1.6.
3. Produkcja kwasu 2-ketoglukonowego przez mutanta budA K. pneumoniae
- Do produkcji kwasu 2-ketoglukonowego używaj tego samego medium co do produkcji R-acetoiny.
- Do produkcji kwasu 2-ketoglukonowego stosuj K. pneumoniae-ΔbudA . Powtórz kroki 1.4-1.5.
UWAGA: budA koduje dekarboksylazę α-acetolaktianu. K. pneumoniae-ΔbudA traci aktywność dekarboksylazy α-acetolaktianu i produkuje kwas 2-ketoglukonowy, wykorzystując glukozę jako podłoże.
UWAGA: Synteza kwasu 2-ketoglukonowego jest procesem zależnym od warunków kwasowych. Opracowano fermentację dwustopniową do produkcji kwasu 2-ketoglukonowego; W pierwszym etapie kultura nasion jest zaszczepiana do bioreaktora. - Utrzymuj hodowlę przy pH 7,0 i 37 °C. Stosuj częstotliwość uzupełniania powietrza 4 L/min oraz mieszanie 500 obr./min.
NUTA: W takich warunkach komórki rosną bardzo szybko (gęstość komórek osiąga OD 7 w około 4 godziny). Następnie fermentacja przechodzi do drugiego etapu, podczas którego pH kultury spada do 5,0. Nie dodaje się kwasu; kwasy organiczne produkowane w hodowli naturalnie prowadzą do obniżenia pH. W tych kwaśnych warunkach wzrost komórek zatrzymuje się, ale w bulionie powstaje kwas 2-ketoglukonowy, który gromadzi się w bulionie. - Przeanalizuj próbki zgodnie z krokiem 1.6. Wykorzystanie hydrolizatu bambusa jako źródła węgla.
NUTA: Glukoza w podłożu przekształca się w kwas 2-ketoglukonowy, a ksyloza w kwas ksylonowy. W ten sposób otrzymuje się mieszaninę kwasu 2-ketoglukonowego i ksylonowego.