Artykuł metodologiczny

Opracowywanie mysiego modelu przewlekłej infekcji skóry Pseudomonas aeruginosa

2 lutego 2026

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: de Vries, C. R., et.al. Model opóźnionej inokulacji przewlekłej infekcji rany Pseudomonas aeruginosa . J. Vis. Exp. (2020)

Ten film pokazuje opóźnione szczepienie luminescencyjnego Pseudomonas aeruginosa u myszy noszącej dwie pełnogrube rany grzbietowe pokryte przezroczystym opatrunkiem foliowym. Ułatwia to powstawanie biofilmu i powstawanie przewlekłych infekcji. Regularne monitorowanie bioluminescencji umożliwia ilościowe określenie obciążenia bakteriami oraz śledzenie postępu infekcji w czasie.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały przeanalizowane przez lokalny instytucjonalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz komisję weterynaryjną JoVE.

1. Szczepienie Pseudomonas aeruginosa

  1. Rozcieńcz nocną hodowlę PAO1:lux do OD600 = 0,05 w 75 mL podłoża Lysogeny (LB) zawierającego 100 μg/mL karbenicyliny i hoduj bakterie aż do wczesnej fazy wykładniczej (OD600≈0,3). Powinno to zająć około 2–3 godziny.
  2. Rozcieńcz PAO1:lux w fosforanowej soli buforowanej fizjologicznej (PBS) do stężenia (7,5 ± 2,5) x 102 CFU/mL. Upewnij się, że przygotujesz nadmiar inokulum, aby zapewnić odpowiednią objętość i umożliwić nakładanie po eksperymencie. W przypadku transportu między obiektami stosuj podwójne zabezpieczenia w szczelnie szczelnym pudełku oznaczonym jako Biohazard.
  3. Wszystkie prace z P. aeruginosa i myszami wykonuj z użyciem zatwierdzonego sprzętu ochrony osobistej w szafce bezpieczeństwa biologicznego Animal Biosafety Level 2 (ABSL-2) zatwierdzonej (BSC). Urządzenia wielokrotnego użytku, takie jak waga, powinny być przykryte folią spożywczą, aby zapobiec zanieczyszczeniu.
  4. Znieczulaj mysz za pomocą 3% izofluranu. Zważ mysz i zapisz wagę. Podskórnie wstrzyknąć myszy podskórnie podgrzaną, sterylną zawartość 0,9% chlorku sodu, 250 μL na każdym boku, co daje łącznie 500 μL.
  5. Jeśli przezroczysty opatrunk folii myszy zszedł z dnia na dzień, ostrożnie usuń powstałe strupy i nałóż nowy opatrunk.
  6. Użyj strzykawki z kapturą gruźlicyny 27 G, aby wstrzyknąć 40 μL zawiesiny PAO1:lux przez przezroczystą folię do każdej rany. Do kontroli ran niezaszczepionych/PBS należy stosować różne myszy, aby zapobiec zanieczyszczeniu krzyżowemu po stronie przeciwległej.
  7. Umieść mysz z powrotem w klatce na termoforze i monitoruj, aż się obudzi. Wszystkie myszy powinny być trzymane osobno w osobnych klatkach, aby zapobiec zanieczyszczeniu krzyżowemu.
  8. Umieść wysokokaloryczną pastę z suplementami diety umieszczoną między granulkami jedzenia na podłodze klatki.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Zastrzyk chlorku sodu 0,9%Hospira2484457 
Męce myszy C57BL/6JLaboratorium Jacksona664 
Fosforanowa sól fizjologiczna (PBS) 1xCorning21-040-CV 
Folia spożywcza do prasowania i uszczelnianiaCieszę się.Nie ma 
Strzykawka insulinowa Safetyglide, 1/2 mL, 30 G x 5/16 TWBD305934 
SkalaOhaus Scout ProSP202 
Suplement suplementacjiHenry Schein Zdrowie Zwierząt29908 

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Rana z Pseudomonas aeruginosarana sk ry mysiejmodel przewlek ej infekcjiop niona inokulacjamonitorowanie bioluminescencjiopatrunek z przezroczystej foliipe nowarstwowa rana wyci ciowatworzenie macierzy prowizorycznejilo ciowe okre lanie obci enia bakteryjnegopodsk rny wtrysk soli fizjologicznej

Powiązane artykuły