Artykuł metodologiczny

Obrazowanie w czasie rzeczywistym infekcji bakteryjnej w modelu myszy z użyciem bioluminescencji

30 stycznia 2026

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Valentine, M. E. i in., Generowanie mutantów delecji genów w ramce u Pseudomonas aeruginosa oraz testowanie tłumienia zjadliwości w prostym modelu infekcji myszy. J. Vis. Exp. (2020)

Ten film demonstruje zastosowanie podejścia obrazowania opartego na bioluminescencji do monitorowania zakażenia bakteryjnego w modelu żywej myszy. Sekwencyjne obrazowanie bioluminescencyjne i rentgenowskie umożliwia wizualizację w czasie rzeczywistym oraz anatomiczną lokalizację infekcji rozprzestrzeniającej się na całym organizmie żywiciela.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały przeanalizowane przez lokalny instytucjonalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz komisję weterynaryjną JoVE.

Wizualizacja zakażenia za pomocą bioluminescencji

  1. Aby zobrazować postęp infekcji, należy wprowadzić chromosomalny bioluminescencyjny operon (luxCDABE) do testowanych szczepów Pseudomonas aeruginosa PGN5 i VE2. Plazmidy i protokół stosowany do oznaczania tych szczepów zostały opracowane w laboratorium Schweizera i mogą nie być kompatybilne ze wszystkimi gatunkami/szczepami bakterii. Co ważne, wizualizacja infekcji jest opcjonalna; dlatego do przeprowadzenia badania śmiertelności nie jest konieczne genomowe wprowadzenie tego operonu.
  2. Przygotuj i zaakceptuj szczepy. Dodatkowo na każdym etapie walidacji sprawdź bioluminescencję w szczepach znakowanych.
  3. Po przygotowaniu szczepów wstrzykuj zwierzętom w grupach po 10, a bioluminescencyjne szczepy zgodnie z powyższymi krokami.
  4. Obrazuj zwierzęta co 3 godziny przez 24 godziny, używając systemu obrazowania zwierząt zdolnego do bioluminescencji.
    1. Najpierw przygotuj obraz, ustawiając parametry kamery i podgrzewając scenę dla zwierząt. Następnie ustaw przepływ tlenu na 1,5 L na minutę (lub postępuj zgodnie z zaleceniami producenta).
    2. Po ustabilizowaniu obrazowania i etapu należy umieścić jedną mysz w komorze znieczulonej zaraz po wstrzyknięciu i podać 3,5% izofluranu do komory z przepływemO2 przez około 4 minuty. Metody znieczulenia mogą się różnić w zależności od komory i/lub środka znieczulającego; Postępuj zgodnie z zaleceniami producenta. Określ właściwą znieczulenie za pomocą testu odruchu odstawienia.
    3. Przenieś mysz na etap stabilizacji temperatury. Ustaw mysz na plecach z wyciągniętymi ramionami i przygotuj jej stożek nosowy do podawania 2,5% izofluranu przez cały proces obrazowania.
    4. Zamknij drzwi i zrób bioluminescencyjne zdjęcia oraz zdjęcia rentgenowskie myszy.
    5. Po zakończeniu obrazowania wróć mysz do klatki i monitoruj ją. Mysz powinna odzyskać przytomność w ciągu 3-5 minut.
    6. Kontynuuj obrazowanie myszy co 3 godziny przez 24 godziny, za każdym razem używając innej myszy z każdej grupy. Nie rób ponownego obrazowania myszy w ciągu 24 godzin ze względu na możliwość wystąpienia skutków niepożądanych po ponownym narażeniu na znieczulenie. Jedna mysz powinna otrzymywać tylko jedną dawkę znieczulenia co 24-36 godzin. Wyczyść platformę obrazującą po każdym naświetleniu myszy. Wyłącz obrazowanie między punktami czasowymi obrazowania.
      UWAGA: Bioluminescencja zanika, niezależnie od szczepu. Intensywność i długość życia bioluminescencji będą się różnić w zależności od wielu czynników, w tym liczby wstrzykniętych bakterii, szczepu myszy, szczepu bakterii itd.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Cyfrowa kąpiel sucha z blokiem accuLabnetNC0205808za pośrednictwem Fisher Scientific
Inkubator GabinetowyVWR1540 
Isothesia IsofluraneHenry Schein Zdrowie Zwierząt29405 
System obrazowania in vivo IVIS Lumina XRMS Series IIIPerkins i ElmerCLS136340 
MicroPulser ElectroporatorBioRad1652100 
Prism 7GraphPad https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/
Spektrofotometr SmartSpec PlusBio-Rad170-2525lub preferowana metoda/dostawca
Filtry systemów anestezjologicznych XAF-8Perkins i Elmer118999 
System znieczulenia gazowego XGI 8Caliper Life Sciences/Xenogen  

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Bioluminescence ImagingBacterial InfectionMouse ModelX ray ImagingReal time MonitoringInfection SpreadAnesthetized MouseImaging ChamberLuciferase ExpressionInfection Localization

Powiązane artykuły