Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Modelowanie patogenezy aeromonasów u C. elegans za pomocą testu przetrwania

301 wyświetleń

2 lutego 2026

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Chen, Y. i inni. Ocena zjadliwości i patogenezy infekcji Aeromonas w modelu Caenorhabditis elegans . J. Vis. Exp. (2018)

Ten film demonstruje test przeżycia z użyciem C. elegans do modelowania patogenezy Aeromonas , gdzie doustne spożycie bakterii prowadzi do infekcji i śmiertelności jelit, umożliwiając ilościową ocenę zjadliwości bakterii w żywym systemie gospodarza.

Protokół

1. Testy przetrwania C. elegans z Aeromonas

  1. W dniu wysiewania robaków L1 na wzbogaconym podłożu wzrostu nicieni ENGM rozsiewanego E. coli OP50, wybierz pojedynczą kolonię każdego z czterech szczepów Aeromonas , czyli E. coli OP50, i hoduj odpowiednio 2 mL bulionu LB w temperaturze 37 °C przez 16 godzin.
    UWAGA: Aby uniknąć zanieczyszczenia, ten krok należy wykonać w laminarnym okapie przepływowym. Wykorzystano tutaj następujące szczepy bakterii: E. coli OP50, normalne źródło pokarmu C. elegans. A. dhakensis AAK1, pierwszy w pełni zsekwencjonowany, patogenny kliniczny izolat A. dhakensis . A. hydrophila A2-066, A. veronii A2-007 oraz A. caviae A2-9307121 to reprezentatywne izolaty kliniczne z Narodowego Szpitala Uniwersyteckiego Cheng Kung.
  2. Zmierz absorpcję OD600 (gęstość optyczna przy 600 nm) bulionu bakteryjnego i dostosuj bulion bakteryjny do OD600 = 2,0 z bulionem LB.
  3. Na każdej płycie 6 cm NGM (podłoże wzrostu nicieni) rozłóż i rozsmaruj 30 μL bulionu bakteryjnego. Hoduj talerze w temperaturze pokojowej przez noc.
    UWAGA: Aby przygotować NGM, rozpuścić 3 g NaCl (chlorku sodu), 2,5 g bakteryjnego peptonu oraz 20 g agaru w 1 litrze wody dejonizowanej. Autoklawuj w temperaturze 121 °C przez 20 minut. Poczekaj, aż ostygnie do 55 °C w kąpieli wodnej, a następnie dodaj 1 mL 1 M CaCl2 (chlorek wapnia), 1 mL 1 M MgSO4 (siarczan magnezu), 1 ml 5% cholesterolu w etanolu oraz 25 ml buforu fosforanowego. Mieszaj, żeby dobrze wymieszać.
  4. W dniu, gdy robaki L1 osiągną poziom L4, losowo wybierz i przenieś 50 robaków na płytkę NGM z każdym z czterech szczepów Aeromonas , czyli E. coli OP50.
  5. Inkubuj płytki NGM w temperaturze 20 °C aż do zakończenia testu.
  6. Przenieś wszystkie żywe robaki na nowo przygotowaną płytkę NGM z bakteriami i codziennie licz liczbę żywych, martwych i czujnikowych robaków, aż ostatni zginie.
    UWAGA: Codziennie przenosi robaki na świeżo przygotowaną płytkę NGM dla utrzymania infekcji, nawet jeśli używasz bezpłodnych robaków (np. glp-4 lub FudR).
  7. Narysuj krzywe przetrwania na podstawie codziennych obliczeń danych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Inkubator wstrząsającyYIH DERLM-570RInkubacja bakterii
NaClSIGMA31434Przygotowanie podłoża hodowlanego
MgSO₄SIGMAM7506Przygotowanie podłoża hodowlanego
AgarDifco214530Przygotowanie podłoża hodowlanego
CaCl₂SIGMAC1016Przygotowanie podłoża hodowlanego
CholesterolSIGMAC8503Przygotowanie podłoża hodowlanego
Płytka Petriego 6 cmALPHA PLUS46Przygotowanie płyty agarowej
Pepton bakteryjnyAffymetrix/USBAAJ20048P2Przygotowanie podłoża hodowlanego
FudRSIGMA1271008Przygotowanie podłoża hodowlanego
System mikroskopuNikonOdwrócona eklipaza TiObrazowanie mikroskopowe

Tagi

Test przeżywalności C. elegansocena wirulencji bakteryjnejpodłoże wzrostowe dla nicienipomiar gęstości optycznejmodel ingestii doustnejkolonizacja jelitowauwalnianie cytotoksynanaliza krzywej przeżywalnościocena żywotności gospodarza