Artykuł metodologiczny

Modelowanie patogenezy aeromonasów u C. elegans za pomocą testu przetrwania

2 lutego 2026

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Chen, Y. i inni. Ocena zjadliwości i patogenezy infekcji Aeromonas w modelu Caenorhabditis elegans . J. Vis. Exp. (2018)

Ten film demonstruje test przeżycia z użyciem C. elegans do modelowania patogenezy Aeromonas , gdzie doustne spożycie bakterii prowadzi do infekcji i śmiertelności jelit, umożliwiając ilościową ocenę zjadliwości bakterii w żywym systemie gospodarza.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Testy przetrwania C. elegans z Aeromonas

  1. W dniu wysiewania robaków L1 na wzbogaconym podłożu wzrostu nicieni ENGM rozsiewanego E. coli OP50, wybierz pojedynczą kolonię każdego z czterech szczepów Aeromonas , czyli E. coli OP50, i hoduj odpowiednio 2 mL bulionu LB w temperaturze 37 °C przez 16 godzin.
    UWAGA: Aby uniknąć zanieczyszczenia, ten krok należy wykonać w laminarnym okapie przepływowym. Wykorzystano tutaj następujące szczepy bakterii: E. coli OP50, normalne źródło pokarmu C. elegans. A. dhakensis AAK1, pierwszy w pełni zsekwencjonowany, patogenny kliniczny izolat A. dhakensis . A. hydrophila A2-066, A. veronii A2-007 oraz A. caviae A2-9307121 to reprezentatywne izolaty kliniczne z Narodowego Szpitala Uniwersyteckiego Cheng Kung.
  2. Zmierz absorpcję OD600 (gęstość optyczna przy 600 nm) bulionu bakteryjnego i dostosuj bulion bakteryjny do OD600 = 2,0 z bulionem LB.
  3. Na każdej płycie 6 cm NGM (podłoże wzrostu nicieni) rozłóż i rozsmaruj 30 μL bulionu bakteryjnego. Hoduj talerze w temperaturze pokojowej przez noc.
    UWAGA: Aby przygotować NGM, rozpuścić 3 g NaCl (chlorku sodu), 2,5 g bakteryjnego peptonu oraz 20 g agaru w 1 litrze wody dejonizowanej. Autoklawuj w temperaturze 121 °C przez 20 minut. Poczekaj, aż ostygnie do 55 °C w kąpieli wodnej, a następnie dodaj 1 mL 1 M CaCl2 (chlorek wapnia), 1 mL 1 M MgSO4 (siarczan magnezu), 1 ml 5% cholesterolu w etanolu oraz 25 ml buforu fosforanowego. Mieszaj, żeby dobrze wymieszać.
  4. W dniu, gdy robaki L1 osiągną poziom L4, losowo wybierz i przenieś 50 robaków na płytkę NGM z każdym z czterech szczepów Aeromonas , czyli E. coli OP50.
  5. Inkubuj płytki NGM w temperaturze 20 °C aż do zakończenia testu.
  6. Przenieś wszystkie żywe robaki na nowo przygotowaną płytkę NGM z bakteriami i codziennie licz liczbę żywych, martwych i czujnikowych robaków, aż ostatni zginie.
    UWAGA: Codziennie przenosi robaki na świeżo przygotowaną płytkę NGM dla utrzymania infekcji, nawet jeśli używasz bezpłodnych robaków (np. glp-4 lub FudR).
  7. Narysuj krzywe przetrwania na podstawie codziennych obliczeń danych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Inkubator wstrząsającyYIH DERLM-570RInkubacja bakterii
NaClSIGMA31434Przygotowanie podłoża hodowlanego
MgSO₄SIGMAM7506Przygotowanie podłoża hodowlanego
AgarDifco214530Przygotowanie podłoża hodowlanego
CaCl₂SIGMAC1016Przygotowanie podłoża hodowlanego
CholesterolSIGMAC8503Przygotowanie podłoża hodowlanego
Płytka Petriego 6 cmALPHA PLUS46Przygotowanie płyty agarowej
Pepton bakteryjnyAffymetrix/USBAAJ20048P2Przygotowanie podłoża hodowlanego
FudRSIGMA1271008Przygotowanie podłoża hodowlanego
System mikroskopuNikonOdwrócona eklipaza TiObrazowanie mikroskopowe

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Test prze ywalno ci C elegansocena wirulencji bakteryjnejpod o e wzrostowe dla nicienipomiar g sto ci optycznejmodel ingestii doustnejkolonizacja jelitowauwalnianie cytotoksynanaliza krzywej prze ywalno ciocena ywotno ci gospodarza

Powiązane artykuły