Artykuł metodologiczny

Obrazowanie poklatkowe segregacji chromosomów u bakterii znakowanych fluorescencją

31 marca 2026

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Schumacher, D., i Sogaard-Andersen, L. Obrazowanie żywymi komórkowymi fluorescencji pełnego wegetatywnego cyklu komórkowego wolno rosnącej bakterii społecznej Myxococcus xanthus. J. Vis. Exp. (2018)

Ten film demonstruje wykorzystanie obrazowania żywych komórek do śledzenia pochodzenia chromosomów oznaczonych fluorescencją podczas podziału komórek bakteryjnych. Rejestruje dynamikę segregacji chromosomów za pomocą mikroskopii poklatkowej fazowo-kontrastowej oraz fluorescencji.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Ustawianie mikroskopu i pozyskanie w czasie poklatkowym

UWAGA: Opisany tutaj protokół został opracowany dla mikroskopu szerokokątnego odwróconego z autofocusem, obiektywu olejowego PH3 100X/1.30 NA, motoryzowanego stopnia X, Y, aparatu sCMOS, źródła światła, filtrów dla białek zielono-fluorescencyjnego, czerwonofluorescencyjnych lub żółtofluorescencyjnych oraz komory inkubacyjnej o kontrolowaniu temperatury. Ta komora chroni komórki przed światłem i utrzymuje stałą temperaturę.

  1. Podgrzej komorę inkubacyjną i mikroskop do 32 °C przez ~1 - 2 godziny przed rozpoczęciem mikroskopii.
    UWAGA: W zależności od ustawienia mikroskopu, ogrzewanie może trwać dłużej. Podgrzewanie jest niezbędne, aby zmniejszyć dryf i stabilizować system sterowania autofocusem.
  2. Włącz mikroskop i uruchom oprogramowanie sterujące mikroskopem. Wybierz odpowiedni obiektyw oraz odpowiednie lustra i filtry, aby uzyskać obrazy z kontrastem fazowym oraz obrazy białek zielonofluorescencyjnych, czerwonofluorescencyjnych lub żółtofluorescencji.
    UWAGA: Mikroskop jest zazwyczaj dostarczany z preferowanym oprogramowaniem do sterowania mikroskopem i akwizycji obrazu. Tutaj użyto komercyjnie dostępnego oprogramowania (patrz Tabela materiałów) do sterowania mikroskopem i akwizycją obrazów.
  3. Dodaj kroplę wysokiej jakości oleju immersyjnego do soczewki obiektywu i na dno próbki, wstępnie inkubowanej w 32 °C. Umieść obiektyw w najniższej możliwej pozycji Z, aby nie uszkodzić go podczas umieszczenia próbki na stole mikroskopu. Umieść metalową ramę z próbką na stole mikroskopowym, tak że "strona otworu" jest skierowana w stronę obiektywu. Przymocuj próbkę mocno w uchwytie na scenę.
  4. Skup się na komórkach, przesuwając scenę w kierunku Z bliżej celu. Przesuwaj stopień powoli, gdy olej spadnie na dolną stronę próbki i obiektyw nawiąże kontakt. Przesuwaj stopień w kierunku X/Y, aż w obszarze widzenia pojawi się wiele pojedynczych komórek, gdy komórki znajdują się w płaszczyźnie ogniskowej. Upewnij się, że przynajmniej jedna fluorescencja mikrosfera znajduje się w tym obszarze widzenia, aby później wyrównać uzyskane obrazy.
    UWAGA: W optymalnych warunkach należy osiągnąć gęstość komórek 15–30 komórek na obszar widzenia (2 048 x 2 048 pikseli lub 133,1 x 133,1 μm).
  5. Otwórz czarodzieja Multi-Dimensional Acquisition w oprogramowaniu sterowania mikroskopem, aby skonfigurować eksperyment poklatkowy, który pozwala mikroskopowi na zbieranie obrazów na różnych długościach fali i pozycjach etapów, jeśli jest to konieczne.
    1. W zakładce głównej aktywuj Timelapse i Multiple Wavelengths. Dodatkowe zakładki pojawią się po lewej stronie okna.
    2. Kliknij zakładkę Zapisywanie i wybierz Katalog , aby wybrać pusty folder na dysku twardym komputera i zapisać pozyskane obrazy. Aktywuj nazwę bazową Increment, jeśli plik istnieje , aby upewnić się, że kolejne zbiory danych nie nadpisują wcześniejszych. Następnie nadaj eksperymentowi nazwę wraz z datą oraz nazwą szczepu lub tytułem eksperymentu.
    3. Kliknij zakładkę Time-lapse , aby dostosować parametry time-lapse. Ustaw czas trwania na 24 godziny, a interwał czasu na 20 minut. Liczba punktów czasu zmienia się automatycznie.
      UWAGA: Optymalny przedział czasowy zależy od eksperymentu oraz funkcji komórkowej, którą ma się analizować. Częste akwizycje obrazów mogą powodować fotoblajch. Dlatego empirycznie należy znaleźć kompromis między rozdzielczością czasową a fotobieleniem. W czasie podwojenia 4–6 godzin obrazy można łatwo uzyskać w odstępie 5 minut (lub nawet krótszym, jeśli jest to pożądane) do mikroskopii z kontrastem fazowym. Jeśli pożądana jest mikroskopia fluorescencyjna w ciągu 24 godzin, należy rejestrować obrazy w odstępach około 15–30 minut.
    4. Kliknij zakładkę Długości fal. Wybierz liczbę długości fal, które należy uzyskać dla każdego obrazu w każdym punkcie czasowym, zmieniając tę liczbę.
      UWAGA: Dla każdej długości fali pojawi się nowa zakładka po lewej stronie czarodzieja "Wielowymiarowe Akwizycje", a długości fal będą pobierane w kolejności od góry do dołu. Dla każdej długości fali ustawienia akwizycji można modyfikować osobno.
    5. Kliknij pierwszą zakładkę długości fali od góry. Wybierz kontrast fazowy w rozwijanej liście Oświetlenie . Wybierz 100 ms dla ekspozycji i wybierz Każdy punkt czasu w rozwijanej liście Pozyskiwanie . Wyłącz Auto Expoe, wybierając Nigdy w rozwijanej liście.
    6. Powtórz krok 3.5.5 dla każdej długości fali, którą trzeba uzyskać w każdym punkcie czasowym. Dla eksperymentalnego zestawu i białek oznaczonych fluorescencją opisanych tutaj, należy stosować następujące parametry ekspozycji: 250 ms dla białek fuzji mCherry, 200 ms dla białek fuzji YFP (Żółte białko fluorescencyjne) oraz 1000 ms dla białek fuzji GFP (Green Fluorescent Protein).
      UWAGA: Optymalne ustawienia oświetlenia dla każdego szczepu i białka fluorescencyjnego należy określić z góry, zmieniając natężenie lampy oraz czas akwizycji obrazu dla każdej długości fali. Zbyt długie czasy na przechwytywanie obrazu zwiększają efekt fototoksyczny i ostatecznie prowadzą do zatrzymania wzrostu oraz śmierci komórek. Dlatego należy osiągnąć kompromis między jakością obrazu a żywotnością komórek.
    7. Pobieraj obrazy z różnych pozycji etapów, aby zwiększyć liczbę komórek zarejestrowanych w tym samym eksperymencie.
      1. Aby uzyskać zdjęcia z wielu pozycji etapu, aktywuj Wiele pozycji etapu w zakładce Główny. Następnie kliknij zakładkę Stage i kliknij przycisk Live , aby zobaczyć pole widzenia.
      2. Przesuń stopień w kierunku X/Y, aż obszar zainteresowania (ROI) znajdzie się w polu widzenia. Zapisz współrzędne X i Y, klikając "+" w zakładce Etap . Przesuń etap ponownie w kierunku X/Y, aż znajdziesz nowy zwrot z inwestycji, a następnie zapisz współrzędne, klikając "+". Idź dalej, aż zostanie zapisana pożądana liczba regionów.
        UWAGA: W przypadku pobierania zdjęć fluorescencyjnych upewnij się, że obszary zainteresowania (ROI) nie znajdują się zbyt blisko siebie, aby zminimalizować fototoksyczność.
  6. Sprawdź jeszcze raz, czy komórki są ostre, klikając na różne zapisane pozycje X i Y oraz rozpocznij sprzętowy autofokus, klikając AFC hold , aby zachować stałą pozycję Z przez cały eksperyment.
  7. Rozpocznij nagrania time-lapse w oprogramowaniu sterującym mikroskopem, klikając Acquire w kreatorze Multi-Dimensional Acquisition .
    UWAGA: Dla każdej zdobytej długości fali pojawi się jedno okno, a dodatkowe okno pokazuje liczbę zdobytych punktów czasu oraz czas do następnego pozyskania obrazu.
  8. Sprawdź, czy komórki są nadal ostre po pierwszych kilku punktach czasowych nagrań poklatkowych, aby zmaksymalizować jakość zdjęć, i w razie potrzeby ponownie się ustawić.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
DMI6000B z AFCMikrosystemy Leica11888945Zautomatyzowany mikroskop fluorescencyjny z odwróconym polem z adaptacyjnym systemem ostrości
Uniwersalna rama montażowaMikrosystemy Leica11532338Uchwyt na etap dla różnych rozmiarów próbek
HCX PL FLUOTAR 100x/1.30 OLEJ PH3Mikrosystemy Leica11506197Cel kontrastu fazowego
Aparat Orca Flash 4.0Hamamatsu11532952Kamera sCMOS o rozdzielczości 4,0 megapiksela do akwizycji obrazu
Zestaw filtrów TXR ET, kMikrosystemy Leica11504170Zestaw filtrów fluorescencyjnych, np. 560/40 Em: 645/75
Zestaw filtrów L5 ET, kMikrosystemy Leica11504166Zestaw filtrów fluorescencyjnych, np.: 480/40 Em: 527/30
Zestaw filtrów YFP ET, kMikrosystemy Leica11504165Zestaw filtrów fluorescencyjnych, np.: 500/20 Em: 535/30
ProScan IIIPriorH117N1, V31XYZEF, PS3J100Automatyzacja mikroskopu z interaktywnym centrum sterowania
Źródło światła EL 6000Mikrosystemy Leica11504115Zewnętrzne źródło światła fluorescencyjnego
Inkubator BLX BlackPecon11532830komora inkubacyjna otaczająca mikroskop
Tempcontrol 37-2 cyfrowyMikrosystemy Leica11521719Automatyczna regulacja temperatury dla komory inkubacyjnej
Filtropur BT25 0.2 filtr na wierzch butelkiSarstedt831,822,101Filtr na pokrywce butelek do sterylizacji buforów
DeckgläserVWR630-1592Szklana pokrywa (60 x 22 mm, grubość: 0,7 mm)
Seakem LE agaroseLonza50004Agaroza do preparatów mikroskopowych
Leica Metamorph AFMikrosystemy Leica11640901Oprogramowanie do sterowania mikroskopem i oprogramowanie do analizy obrazów
Tetraspeck Microsperes, 0,5 μmThermoFisherT7281Fluorescencyjne mikrosfery

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Mikroskopia fluorescencyjnapodzia kom rek bakteryjnychkontrast fazowymikroskop szerokopolowyfluorescencyjne mikrosferypodk adka agarozowaoprogramowanie Metamorphakwizycja wielowymiarowa

Powiązane artykuły