Method Article

Generowanie monowarstwy ludzkiej kolonoidu z funkcją bariery do badania interakcji gospodarz–patogen

February 26th, 2026

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: In, J. G. i in. Monowarstwy ludzkich koloniów do badania interakcji między patogenami, komensalami a nabłonkiem jelitowym gospodarza. J. Vis. Exp. (2019).

Ten film pokazuje procedurę hodowania komórek nabłonkowych pochodzących z jelita grubego na systemie Transwell pokrytym kolagenem, aby uzyskać monowarstwę produkującą śluz, która modeluje barierę jelitową i umożliwia badania interakcji gospodarz–patogen.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Powlekanie zawiesziny enteroidalnej/kolonoidowej

  1. Jeśli wkładki powlekane były przechowywane w temperaturze 4 °C, należy wyrównać w inkubatorze do hodowli tkanek o temperaturze 37 °C/5%CO2 na co najmniej 30 minut przed nałożeniem komórek.
  2. Do każdej wkładki do powlekania przygotuj 1 ml ciepłego (między 25-37 °C) medium rozszerzającego (EM) i dodaj 10 μM Y-27632 oraz 10 μM CHIR 99021.
    UWAGA: EM składa się z zaawansowanego DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium) / F12 zawierającego B27 (1x), 50% WNT3A podłoża kondicjonowanego, 15% RSPO1 podłoża kondicjonowanego, 10% podłoża kondicjonowanego Noggin, 50 ng/mL ludzkiego EGF (Epidermal Growth Factor), 500 nM A-83-01, 10 μM SB 202190, koktajlu antybiotykowo-antymykotycznego (1x), 10 mM HEPES (N-(2-hydroksetyetylo)piperazyna-N'-(2-kwas etansulfonowy)), Dizoptyd L-alanyl-L-glutaminy (1x) oraz penicylina-streptomycyna (1x) (patrz Tabela materiałów).
  3. Aspiruj medium płuczkowe z rurki zawierającej pellet komórki i ponownie zawiesij w objętości EM wystarczającej do uzyskania co najmniej 100 μL/wkładka.
  4. Z każdej wkładki oddechuj roztwór kolagenu IV i myj dwukrotnie, używając 150 μL medium do mycia na wkładkę.
  5. Pipeta 600 μL EM do przestrzeni pod każdą wkładką.
  6. Pipeta włóż 100 μL zawiesiny ogniwowej do każdej wkładki.
  7. Zwróć płytkę do inkubatora do hodowli tkanek i zostawij ją niezakłóconą przez co najmniej 12 godzin.
    UWAGA: Unikaj potrząsania lub gwałtownego przechylania płytki, aby zapobiec nierównomiernemu rozmieszczeniu fragmentów kolonoidu na błonie wkładki.
  8. Monitoruj przyczepianie i rozprzestrzenianie się komórek, aby utworzyć konfluentną monowarstwę, umieszczając płytkę na mikroskopie z kontrastem fazowym pod obiektywem 2,5x-10x.
  9. Po 1-2 dniach większość fragmentów powinna przykleić się do matrycy kolagenowej. Odśwież pożywkę hodowlową i zakończ leczenie Y-27632 oraz CHIR 99021. Kontynuuj odświeżanie podłoża co 2-3 dni, aż do połączenia się. Zbieg się zwykle osiąga w ciągu 7-10 dni.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
2-Amino-2-(hydroksymitylo)-1,3-propanediolSigmaT4661Baza tris, składnik buforu lizy
A-83-01Tocris2939Inhibitor ALK4/5/7
Kwas octowy, lodowiecFisher ScientificA38 
Zaawansowane DMEM/F12Technologie życia12634-010Składnik podłoża wzrostu
Koktajl antybiotyk/antymykotycznyInvivogenANT-PM-2Primocin (100x)
B27, 50xTechnologie życia17504-044Składnik podłoża wzrostu
Wkładki do hodowli komórkowychCorning3470Przepustnik, membrana PET, por 0,4 μm, płytka 24-dołkowa
CHIR 99021Tocris4423Inhibitor GSK3β
Kolagen IV, pochodzący z ludzkiego łożyskaSigmaC5533 
Roztwór do pozyskiwania organoidów CultrexTrevigen3700-100-01Depolimeryzuje matrycę błony podstawnej
Etanol, absolutniePharmco111000200 
GlutaMAXTechnologie życia35050-061Dipeptyd L-alanyl-L-glutaminy, 200 mM
Linia komórkowa HEK293T/Noggin-FcLaboratorium van den Brink, Instytut Badań nad Wątrobą i Jelitami im. Tytgat Do produkcji podłoża kondycjonowanego Noggin
Linia komórkowa HEK293T/RSPO1-Fc-HATrevigen3710-001-KDo produkcji podłoża kondycjonowanego Rspondin-1
HEPES, 1 MTechnologie życia15630-080Składnik podłoża wzrostu
Ludzki czynnik wzrostu naskórka (EGF)Systemy R&D236-EG-01MSkładnik podłoża wzrostu
Mikroskop świetlny z odwróconą hodowlą komórekOlympusCKX51 
Linia komórkowa L-WNT3AATCCCRL-2647Do produkcji kondycjonowanego medium Wnt3a
Matrigel, współczynnik wzrostu obniżonyCorning356231Macierz błony podstawowej dla hodowli 3D
Mini skrobak komórekUnited BioSystemsMCS-200 
Przeciwciało MUC2, monoklonalne na myszyAbcamab11197Stosuj w 1:100 do immunobarwienia, 1:500 do immunoblottingu
Cząstki lentiwirusowe MUC2 shRNAGE DharmaconRHS4531GIPZ lentiwirusowy shRNA, ID: 4583
Orbitalny potrząsaczInstrumenty grantowePSU-10i 
Penicylina-streptomycyna, 100xTechnologie życia15140-122Składnik podłoża wzrostu
Sonikator sondy z mikrokońcówkąBranson Ultrasonics450 
Koktajl inhibitorów proteaz dla komórek ssakówSigmaP8340Składnik buforu lizy
SB 202190Tocris1264Inhibitor p38 MAPK
Chlorek soduSigmaS3014Składnik buforu lizy
Deksoycholan soduSigmaD6750Składnik buforu lizy
Siarczan sodu dodecylowySigmaL3771Składnik buforu lizy
TrypLE Express, 1xTechnologie życia12605-010Trypsyna do trawienia fragmentów jelitowo/kolonoidowych
Przeciwciało vinculin, króliczy monoklonalAbcamab129002Zastosowanie w 1:1000 do immunoblotingu
Woda, jakość do hodowli tkankowej, filtrowana sterylnieCorning25-055 
Y-27632Tocris1254Inhibitor RhoA/ROCK

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Human Colonoid MonolayerCollagen Coated TranswellIntestinal Barrier ModelHost Pathogen InteractionsEpithelial Cell CulturePhase Contrast MicroscopyExpansion MediumDifferentiation InhibitorsMucus SecretionTight Junction Formation

Related Articles