Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Ustanowienie infekcji bakteryjnej u larw Drosophila

319 wyświetleń

31 marca 2026

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Hiroyasu, A., D i in., Ekstrakcja hemocytów z larw Drosophila melanogaster do zakażeń drobnoustrojowych i analiza. J. Vis. Exp. (2018)

Ten film pokazuje procedurę wywoływania infekcji bakteryjnej u larw Drosophila poprzez umieszczenie ich w kropli bakteryjnej i nakłucie igłą wolframową. Larwy są następnie wysiadane na rowkowatej, bogatej w składniki odżywcze płytce agarowej w celu badania interakcji żywiciel-patogen.

Protokół

1. Zakażenie in vivo

  1. Podgrzej talerz z sokiem owocowym Drosophila w temperaturze pokojowej przez 15 minut.
    1. Dodaj 30 g agaru do 700 ml wody i poddaj go w autoklawie przez 40 minut.
    2. Rozpuścić 0,5 g metylparabenu w 10 mL etanolu absolutnego.
    3. Dodaj roztwór metylparabenów do 300 ml koncentratu soku owocowego.
    4. Szybko wymieszaj koncentrat soku z roztworem agaru w autoklawie i podawaj 5 ml do 10 × szalek Petriego o średnicy 35 mm.
    5. Po 15 minutach ostygnięcia talerzy przechowuj je w temperaturze 4 °C.
  2. Przygotuj larwy trzeciego stadium.
  3. Umieść pastę drożdżową na talerzu agarowym. Wykonaj drobne cięcie na talerzu agarowym, gdzie larwy mogą migrować, aby uniknąć wysuszenia (Rysunek 1A). Złóż igłę z wolframu o średnicy 0,001 mm z kleszczami trzymającymi za pomocą folii parafinowej (rysunek 1B, C).
  4. Pipeta 50 μL wysokomianowodającej mCherry ekspresyjnie Coxiella burnetii (5,95×109 GE/mL) na folię parafinową pod mikroskopem stereomikroskopowym i umieść larwy w basenie bakterii.
  5. Umieść larwy w kałuży z bakteriami, nakłuj je igłą wolframu (rysunek 3D) i przenieś na płytkę agarową (rysunek 1E).
  6. Przelej pozostałe medium patogenowe na płytkę agarową i uszczelnij ją folią parafinową.
  7. Larwy trzymaj na płytkach w wilgotnym powietrzu aż do pożądanego czasu po zakażeniu (rysunek 1F). W tym eksperymencie larwy zakażone C. burnetii pozostają na płycie przez 24 godziny.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

24519_Figure1.jpg

Rysunek 1: Zakażenie in vivo. A) Do inkubacji larw zakażonych in vivo stosuje się płyty agarowe soku Drosophila oraz pastę drożdżową. Na płytce agarowej wykonuje się cięcia, aby ułatwić larwalne przedłużenie życ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Mikroskop stereoAmscopeSM-1BSZ-L6W 
KleszczeVWR82027-402 
Coxiella burnetii - mCherryDr Heinzen, R.  
Talerze soku owocowego Drosophila Protokoły Cold Spring Harbor http://cshprotocols.cshlp.org/content/2007/9/pdb.rec11113.full
AgarBioreagenty FisheraBP1423-500 
MetylparabenAmresco0572-500G 
Absolutny etanolBioreagenty FisheraBP2818-500 
Welch's 100% sok winogronowy mrożony koncentrat, 340 mlAmazonB0025UJVGM 
Szalki Petriego, 10 x 35 mmFisher Scientific08-757-100A 
Drożdże, suszone piekarnieMP Biomedicals210140001Dodaj 2 części wody do 1 części drożdży (v/v)
Igła wolframowaNarzędzia Nauki Ścisłej10130-20 
Kleszcze przytrzymująceVWRHS8313 
Listeria monocytogenesATCCodkształcenie: 10403SSzczep Listeria monocytogenes 10403S (Bishop i Hinrichs, 1987) był hodowany w bulionie Difco Brain-heart infusion (BHI) (BD Biosciences) zawierającym 50 μg/ml streptomycyny w temperaturze 30 °C.

Tagi

ig a wolframowawprowadzenie hemolimfyelowa p ytka z rowkiemfagocytoza hemocyt woddzia ywanie gospodarz patogeninfekcja mikrobiologicznastereomikroskopfolia parafinowa