Artykuł metodologiczny

Produkcja pseudowirusa z wykorzystaniem transfekcji plazmidowej w komórkach ludzkich

60 wyświetleń

31 sierpnia 2026

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Chang, X., et al. Preparation of Pseudo-Typed H5 Avian Influenza Viruses with Calcium Phosphate Transfection Method and Measurement of Antibody Neutralizing Activity. J. Vis. Exp. (2021)

Niniejszy film prezentuje produkcję pseudowirusów grypy w komórkach ludzkich przy użyciu transfekcji plazmidowej za pośrednictwem fosforanu wapnia, co umożliwia bezpieczne generowanie cząstek wirusowych jednego cyklu do dalszych zastosowań, takich jak testy neutralizacji przeciwciał w warunkach 2. poziomu bezpieczeństwa biologicznego.

Protokół

1. Pakowanie pseudowirusów za pomocą transfekcji fosforanem wapnia

  1. Przygotować zawiesiny pojedynczych komórek HEK293FT (9 x 105 na mL) w pełnej pożywce DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium) (Tabela 1). Przenieść 10 mL zawiesiny pojedynczych komórek do kolby T75 i inkubować komórki w inkubatorze w temperaturze 37 °C i przy 5% dwutlenku węgla (CO2) przez 20 h przed transfekcją.
    UWAGA: Zaleca się stosowanie komórek HEK293FT o niskim numerze pasażu (<20 pasaży). Należy upewnić się, że monowarstwa komórkowa osiągnęła 80-90% konfluencji.
  2. Wymienić pożywkę na 10 mL świeżej pełnej pożywki zawierającej chlorochinę (10 µM) na 2 h przed transfekcją.
  3. Zmieszać odczynniki i plazmidowe DNA zgodnie z Tabelą 2 i Rysunkiem 1: ddH2O (wodę dwukrotnie destylowaną), pCMV/R-HA, pCMV/R-NA, pHR-Luc, pCMV Δ8.9, 2,5 M CaCl2 (chlorek wapnia) oraz bufor 2x 4-(2-hydroksyetylo)-1-piperazynoetanosulfonowy (HEPES). Delikatnie pipetować w górę i w dół 5 razy; inkubować mieszaninę w temperaturze pokojowej (RT) przez 20 min.
  4. Przenieść mieszaninę do pożywki nad komórkami i delikatnie kołysać kolbą. Inkubować komórki w inkubatorze przez 15 h.
  5. Wymienić pożywkę na 15 mL świeżej pełnej pożywki DMEM. Inkubować komórki w temperaturze 37 °C i przy 5% CO2 przez 65 h.
    UWAGA: Kolor pożywki będzie jasnopomarańczowy lub lekko żółty, a co najmniej 80% komórek powinno wykazywać efekt cytopatyczny (CPE) w odwróconym mikroskopie świetlnym.
  6. Zebrać nadsącz i wirować go przy 2095 x g przez 20 min w temperaturze 4 °C. Zebrać nadsącz, podzielić go na alikwoty i przechowywać w temperaturze -80 °C.

Tabela 1: Skład pełnej pożywki DMEM.

Skład pełnej pożywki DMEMStężenie
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM)1x
Płóca wołowa (FBS)10%
Penicylina(1 U/mL)/Streptomycyna1 μg/ mL

Tabela 2: System pakowania pseudowirusów.

MateriałyStężenieObjętość
2x HEPES (pH 7.1)--675.0 μL
CaCl2 (2.5 M)--67.5 μL
ddH2O--529.2 μL
pCMV Δ 8.910 ng/μL18.9 μL
pCMV/R-HA10 ng/μL27.0 μL
pCMV/R-NA50 ng/μL13.5 μL
pHR-Luc10 ng/μL18.9 μL

Wyniki

figure-results-1

Rycina 1: Schemat transfekcji za pośrednictwem fosforanu wapnia. Niniejszy schemat służy do opisania głównych etapów transfekcji za pośrednictwem fosforanu wapnia.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Wodny chlorek wapniaAMRESCO1B110-50GOdczynnik
Difosforan chlorochinySelleckS4157Odczynnik
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM)Gibco1210-046Odczynnik
Płodowa surowica bydlęcaGibco1600-04Odczynnik
HEK293FTGibcoR70-07Linia komórkowa
HEPES FREE ACIDAMRESCO051-250GOdczynnik
HIV-1 p24 antigen ELISAZeptoMetrix801Zestaw odczynników
Luciferase assay system freezer packPromegaE4530Zestaw odczynników
Probówki do mikrocentryfugi 1,5 mLThermo fisher scientific509-GRD-QMateriał zużywalny
Nunc stożkowe probówki do wirowania 15 mLThermo fisher scientific39650Materiał zużywalny
Penicylina-streptomycynaGibco15140-12Odczynnik
Końcówki do pipet (10 μL)Thermo fisher scientificTF102-10-QMateriał zużywalny
Końcówki do pipet (10 μL)Thermo fisher scientificTF13-10-QMateriał zużywalny
Końcówki do pipet (10 μL)Thermo fisher scientificTF112-10-QMateriał zużywalny
Pipety serologiczne (5 mL)Thermo fisher scientific17035NMateriał zużywalny
Pipety serologiczne (10 mL)Thermo fisher scientific170356NMateriał zużywalny

Tagi

Produkcja pseudowirus wfosforan wapniapseudowirus grypykom rki HEK 293FTneutralizacja przeciwcia amibia ka rdzenia lentiwirusowegowirus jednocyklowyhodowla kom rkowa