1. Produkcja rekombinowanego HBV (wirusa zapalenia wątroby typu B) kodującego białko reporterowe
- Przygotowanie komórek HepG2
- Przygotować pożywkę do hodowli komórkowej (pożywka DMEM (Dulbecco's modified Eagle's medium) uzupełniona o 10% płodowej surowicy bydlęcej (FBS), 100 U/ml penicyliny, 100 µg/ml streptomycyny oraz 100 U/ml niezasadniczych aminokwasów).
- Dzień przed transfekcją wysiać 4 x 106 komórek HepG2 (ludzki rak hepatokomórkowy G2) do 10-cm szalki pokrytej kolagenem w 10 ml pożywki hodowlanej. Inkubować komórki HepG2 w temperaturze 37 °C w inkubatorze z 5% CO2 i zwiększoną wilgotnością.
UWAGA: Gdy około 4 x 106 komórek HepG2 zostanie wysianych do 10-cm szalki pokrytej kolagenem w 10 ml pożywki hodowlanej, następnego dnia osiągną one konfluencję na poziomie 70-90%.
- Transfekcja
- Przeprowadzić transfekcję komórek HepG2 za pomocą 5 µg pUC1.2HBV delta epsilon15 (plazmidu replikacyjnego HBV z delecją w sekwencji epsilon) oraz 5 µg pUC1.2HBV/NL15, stosując odczynnik do transfekcji zgodnie z instrukcjami producenta.
- Następnego dnia usunąć pożywkę hodowlaną i dodać 10 ml świeżej pożywki.
- Tydzień po transfekcji przenieść pożywkę hodowlaną zawierającą rekombinowany HBV do probówki o pojemności 50 ml i przejść do kroku 1.3. Do szalki z transfekowanymi komórkami dodać 10 ml świeżej pożywki hodowlanej.
UWAGA: Produkcja rekombinowanego HBV jest utrzymywana przez 4 tygodnie. Pożywkę hodowlaną zawierającą rekombinowany HBV można przechowywać w temperaturze 4 °C przez 1 miesiąc.
- Oczyszczanie rekombinowanego HBV
- Usunąć zanieczyszczenia komórkowe z pożywki hodowlanej zawierającej rekombinowany HBV poprzez wirowanie (2,300 x g przez 5 min).
- Przepuścić nadsącz przez filtr membranowy 0,45 µm.
- Do pożywki hodowlanej zawierającej rekombinowany HBV dodać taką samą objętość 26% PEG/1,5 M NaCl (glikol polietylenowy 6000: 130 g, NaCl (chlorek sodu): 49 g, 1 ml 0,5 M EDTA (kwas etylenodiaminotetraoctowy) pH 8,0 oraz 5 ml 1 M HEPES (kwas N-2-hydroksyetylopiperazyno-N'-2-etanosulfonowy) pH 7,6 w 500 ml) i delikatnie wymieszać. Inkubować przez noc w temperaturze 4 °C.
- Wirować przy 2,300 x g przez 20 min w temperaturze 4 °C.
- Odlać nadsącz, a osad rozpuścić w 0,5 ml buforu TNE (10 mM Tris, 50 mM NaCl, 1 mM EDTA).
- Usunąć zanieczyszczenia poprzez wirowanie przy 2,300 x g przez 5 min.
- Nanieść 0,5 ml TNE zawierającego rekombinowany HBV na 0,8 ml 20% sacharozy w TNE.
- Wirować przy 100,000 × g przez 3 h w temperaturze 15 °C.
- Odlać jak największą ilość nadsączu i zachować osad. Resuspendować go w 1 ml DMEM bez surowicy na każde 40 ml początkowej pożywki hodowlanej.
- Inkubować przez noc w temperaturze 4 °C.
- Przefiltrować przez filtr 0,45 µm. Przygotować alikwoty o objętości 0,5 ml i przechowywać w temperaturze -80 °C.
UWAGA: W przypadku stwierdzenia zanieczyszczenia pierwotnej próbki wirusa białkiem reporterowym, oczyścić wirusa metodą ultrawirowania w gradiencie gęstości sacharozy 5-30% w TNE przy 100,000 x g przez 2 h lub wirowaniem w gradiencie gęstości CsCl (chlorku cezu) od 1,1-1,6 g/ml przy 150,000 x g przez 50 h.