1. Immunobarwienie białek: w celu oznakowania białek zainteresowania
- Odlej PBS (bufor fosforanowy) i dodaj do szkiełka podstawowego 200 µL buforu blokującego (1% w/v BSA (albumina surowicy wołowej), 10% v/v FBS (płodowa surowica wołowa) w PBS z 0,1% v/v Tween-20 (PBST)). Inkubuj przez 1 h w RT (temperaturze pokojowej).
- Odlej bufor blokujący i nanieś 200 µL przeciwciała pierwszorzędowego rozcieńczonego w PBST + 1% w/v BSA. Inkubuj przez 1 h w RT.
- Przemyj preparat dwukrotnie PBST przez 10 min w RT przy wstrząsaniu.
- Nanieś wybrane przeciwciało wtórne na 1 h w RT w PBST + 1% w/v BSA.
- Przemyj preparat PBST przez 10 min w RT przy wstrząsaniu.
2. Barwienie jąder: Barwienie kontrastowe jąder po immunobarwieniu
- Odlać PBST i nanieść DAPI (4',6-diamidino-2-phenylindole) lub wybrany barwnik jądrowy na 1 min w RT.
- Przemyć preparat dwukrotnie PBS przez 10 min w RT przy potrząsaniu.