1. Konstrukcja skoncentrowanego systemu pakowania lentiwirusów dla czynników transkrypcyjnych
- Produkcja stężonego wirusa (Rysunek 1A, B)
- Wysiać 1,5 × 106 Komórki HEK (human embryonic kidney)-293T wysiać do szalki 60 mm i hodować w medium podstawowym (patrz Tabela 1) w 37 °C w inkubatorze z nawilżaniem i 5% CO22.
UWAGA: Jeśli wirus ma być pakowany w partiach, można zastosować 100-mm szalkę do hodowli komórkowej (szczegóły w tabeli Tabela 2). - Po 24 h, w dniu transdukcji, należy upewnić się, że komórki HEK-293T osiągnęły 80–90% konfluencji, a następnie zastąpić pożywkę 3,5 ml DMEM (pożywka Eagle’a modyfikowana przez Dulbecco) (150 µL DMEM na 1 cm22). Pozostawić komórki w 37 °C w inkubatorze z nawilżaniem i zawartością 5% CO22 przez 2 h.
UWAGA: Medium zamienny musi być bezzsórkowaty, aby komórki mogły zostać "zagłodzone" w celu lepszej transfekcji plazmidowej. - Przygotować mieszaninę plazmidów (mieszanina A) zawierającą 3 µg plasmidów docelowych Mitf, Sox10, Pax3, Sox2, Sox9 lub Snai2; 1 µg plazmidu pakującego PMD2.G oraz 2 µg plazmidu pakującego PSPAX2. Objętość mieszaniny A uzupełnić do 150 µL z DMEM bez surowicy. Przygotować mieszaninę odczynnika do transfekcji (mieszanina B), dodając 12 µL odczynnika do transfekcji (objętość odpowiada dwukrotności całkowitej masy wszystkich plazmidów), a następnie uzupełnić objętość mieszaniny B do 150 µL bezsurowicznym DMEM.
UWAGA: Podczas przygotowywania mieszanin należy powoli dodawać ciecz, aby uniknąć powstania pęcherzyków powietrza. - Po odstawieniu mieszanin A i B na 5 min w temperaturze pokojowej, należy je połączyć. Mieszaninę inkubować w temperaturze pokojowej przez 20–30 min w celu utworzenia kompleksów transfekcyjnych.
- Wyjąć komórki HEK-293T z inkubatora, wymienić pożywkę na DMEM + 2% FBS (płodowa surowica bydlęca), dodać kroplami mieszaninę z kroku 1.1.4, a następnie delikatnie wymieszać ciecz.
- Po 8 h wymienić pożywkę na 3,5 ml pożywki normalnej. Po wymianie pożywki zbierać nadsącz wirusowy po 24 h oraz 48 h.
- Wymieszać nadsączki wirusa zebrane w dwóch różnych punktach czasowych. Wirować z prędkością 200 × g przez 5 min w temperaturze 4 °CPrzefiltrować nadsącz przez 0.45 µm filtry i zebrać w sterylnej probówce stożkowej o pojemności 50 ml.
UWAGA: Wirus zebrany po 24 h można przechowywać w temperaturze 4 °C i zmieszany z wirusem zebranym po 48 h. - Skoncentrować nadsącz wirusowy poprzez wirowanie przy 6000 × g przy 4 °C przez noc (~16 h). Po wirowaniu należy upewnić się, że na dnie probówki stożkowej widoczny jest osad wirusowy.
- Powoli odlać nadsącz. Rozpuścić pellet wirusa w objętości pożywki normalnej stanowiącej 1/100th objętości nadsączu wirusowego. Za pomocą mikropipety P1000 delikatnie pipetuj ciecz w górę i w dół, aż do uzyskania homogenicznej mieszaniny. Rozdziel skoncentrowanego wirusa do probówek do mikrocentryfugi zgodnie z potrzebami. Przechowywać w temperaturze −80 °C.
UWAGA: Metoda ta pozwala na 100-krotne zagęszczenie wirusa. Zagęszczony wirus (100x) może być przechowywany przez >1 rok w temp. −80 °CNależy unikać wielokrotnego zamrażania i rozmrażania wirusa.
Tabela 1: Składniki pożywek standardowej i do przeprogramowania.
| | Składniki | Dawka (stężenie, objętość) | Stężenie końcowe |
| Pożywka podstawowa (100 mL) | DMEM/HIGH GLUCOSE | 89 mL | |
| FBS inaktywowany ciepłem | 10 mL | |
| Antybiotyki (Pen/Strep) | 10000 U/mL, 1 mL | 100 U/mL |
| Pożywka do reprogramowania (100 mL) | RPMI-1640 | 88 mL | |
| FBS inaktywowany ciepłem | 10 mL | |
| Rekombinowany ludzki SCF | 200 μg/mL, 50 μL | 100 ng/mL |
| Rekombinowany ludzki bFGF | 4 μg/mL, 250 μL | 10 ng/mL |
| Rekombinowana ludzka insulina | 10 mg/mL, 50 μL | 5 μg/mL |
| Ludzki EDN3 | 100 μM, 100 μL | 0.1 μM |
| Toksyna choleryczna | 0.3 mg/mL, 0.56 μL | 20 pM |
| 12-mirystynian 13-octan forbolu (TPA) | 1 mM, 20 μL | 200 nM |
| Hydrokortyzon | 100 μg/mL, 500 μL | 0.5 μg/mL |
| Adenina | 40 mg/mL, 60 μL | 24 μg/mL |
Tabela 2: Szczegóły systemu pakowania lentiwirusów.
| Naczynie hodowlane | Gęstość wysiewu (komórek/naczynie) | Pożywka (mL) | System plazmidowy | Odczynnik do transfekcji (µL) |
| Plazmid docelowy (μg) | PMD2.G (μg) | PSPAX2 (μg) |
| 35 mm | 6 ×105 | 1.5 | 1.5 | 0.5 | 1 | 6 |
| 60 mm | 1.5 × 106 | 3.5 | 3 | 1 | 2 | 12 |
| 100 mm | 4 × 106 | 8 | 8 | 3 | 6 | 34 |