Artykuł metodologiczny

Produkcja cząsteczek wirusopodobnych w zmodyfikowanych E. coli

47 wyświetleń

⸱

30 września 2026

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Chen, Z., et al. Making Conjugation-induced Fluorescent PEGylated Virus-like Particles by Dibromomaleimide-disulfide Chemistry. J. Vis. Exp. (2018)

W niniejszym filmie zaprezentowano metodę kontrolowanej ekspresji białka kapsydu bakteriofaga Qβ w zmodyfikowanych szczepach E. coli. Powstałe białka ulegają samoroskładaniu w cząsteczki przypominające wirusy (VLP), które są następnie pozyskiwane do dalszej biokoniugacji.

Protokół

Ekspresja Qβ

  1. Przetrzeć powierzchnię blatu roztworem wybielacza i etanolu w stosunku 1:1.
  2. Przygotować dwie 3 mL kultury startowe w warunkach aseptycznych, dodając pojedyncze kolonie E. coli BL21(DE3) do 3 mL pożywki Super Optimal Broth (SOB).
  3. Inkubować na wytrząsarce przy 250 rpm w pomieszczeniu o temperaturze 37 °C i 0% wilgotności względnej (rH) przez noc.
  4. Zaszczepić kulturę startową w pożywce SOB:
    1. Zdjąć obie 3 mL kultury startowe z wytrząsarki i w warunkach aseptycznych przelać każdą z nich do jednej z dwóch 2 L kolb Erlenmeyera z przegrodami, zawierających każda 1 L świeżej pożywki SOB.
    2. Umieścić zaszczepione pożywki na wytrząsarce przy 250 rpm w pomieszczeniu o temperaturze 37 °C i 0% rH.
  5. Hoduć bakterie na wytrząsarce przy 250 rpm w pomieszczeniu o temperaturze 37 °C i 0% rH do momentu, aż OD600 osiągnie wartość 0,9–1,0.
  6. Dodać 1 mL 1 M izopropyl-β-D-1-tiogalaktopiranosydy (IPTG) za pomocą pipety P1000, aby indukowć ekspresję białka.
  7. Pozostawić pożywki na wytrząsarce przy 250 rpm w pomieszczeniu o temperaturze 37 °C i 0% rH przez noc.
  8. Zdjąć pożywki z wytrząsarki następnego dnia rano i odwirować je w butelkach 1000 mL przy 20 621 × g przez 1 h w temperaturze 4 °C w celu zebrania komórek.
  9. Odlać nadsącz i zebrać osad komórkowy.
    1. Przelać nadsącz do kolby z około 5 mL wybielacza w celu zneutralizowania bakterii. Stanowi to odpad.
    2. Za pomocą szpachelki zebrać osad komórkowy z dna butelki do wirowania i przenieść go do 50 mL probówki wirówkowej.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
LB Broth (Miller)EMD Millipore1.10285.0500 
Trypton, proszekResearch Products InternationalT60060-1000.0 
Ekstrakt drożdżowy, proszekResearch Products InternationalY20020-1000.0 
Siarczan magnezu bezwodnyP212121CI-06808-1KG 
Chlorek sodu (krystaliczny/certyfikowany ACS)Fisher ScientificS271-10 
Chlorek potasuFisher ScientificBP366-500 
System oczyszczania wody Elga PURELAB Flex 3Fisher Scientific4474524 
Fosforan potasu jednodstawnyFisher ScientificBP362-1 
Fosforan potasu dwudstawny bezwodnyFisher ScientificP288-500 
Izopropyl β-D-1-tiogalaktopyranosyd (IPTG)Sigma AldrichI6758-1G 
Butelki wirówkowe Nalgene z zakrętkami, kopolimer polipropylenuThermo Scientific3141-0250 
Wstrząsarka orbitalna VWR Os-500VWR Scientifc Products14005-830 
Pipetman P1000GilsonF123602 
Stożkowa probówka wirówkowa Falcon 50 mLFisher Scientific14-432-22 

Tagi

Bakteriofag Q Betaekspresja białka otoczkipromotor T7operator lacsamomontaż białekindukcja IPTGoczyszczanie osadu komórkowegowirowanie